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        T-2毒素快速定量檢測試紙條的研究

        2019-10-12 02:49:58許會(huì)靜李玉杰張馨月王弘瑞苗茁柳玉李艷王會(huì)巖董媛
        食品研究與開發(fā) 2019年19期
        關(guān)鍵詞:膠體金單克隆紙條

        許會(huì)靜,李玉杰,張馨月,王弘瑞,苗茁,柳玉,李艷,王會(huì)巖,董媛,*

        (1.吉林醫(yī)藥學(xué)院檢驗(yàn)學(xué)院,黑龍江吉林132013;2.吉林醫(yī)藥學(xué)院抗體中心,黑龍江吉林132013)

        T-2 毒素屬于A 型單端孢霉烯族化合物,主要由三線鐮刀菌、枝孢鐮刀菌、擬枝孢鐮刀菌、梨孢鐮刀菌、硫色鐮刀菌等真菌代謝產(chǎn)生[1]。在寒冷或潮濕的儲(chǔ)存條件下,燕麥、玉米、大麥、小麥和動(dòng)物飼料等易被污染。T-2 毒素可以抑制蛋白質(zhì)[2]和核酸[3]的合成,人類誤食污染的谷物后,表現(xiàn)出一系列急性和慢性的中毒癥狀,如嘔吐、腹瀉、昏睡、體重減輕、出血、免疫抑制,甚至死亡[4-5]。目前研究表明,人類食物中毒性白細(xì)胞缺乏癥和大骨節(jié)病[6]也與該毒素相關(guān)。T-2 毒素性質(zhì)穩(wěn)定,可在動(dòng)物體內(nèi)代謝和消除,產(chǎn)生比其本身毒性更強(qiáng)的代謝產(chǎn)物[7]。目前仍沒有有效的解毒方法進(jìn)行治療。因此,為避免T-2 毒素的污染,減少其對人類和畜牧業(yè)的危害,建立快速、靈敏、準(zhǔn)確地檢測T-2 毒素的方法已成為近年來研究的熱點(diǎn)。

        目前,氣相色譜法(gas chromatography,GC)[8]、氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(gas chromatography mass spectrometry,GC-MS)[9],高效液相色譜法(high-performance liquid chromatography,HPLC)[10]、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(liquid chromatography mass spectrometry,LC-MS)[11]、酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)[12-13]等技術(shù)已經(jīng)廣泛應(yīng)用到T-2 毒素的檢測中。但是,這些傳統(tǒng)的檢測方法操作繁瑣,需要昂貴的儀器,專業(yè)的技術(shù)人員等,不但成本高,而且分析速度慢,難以達(dá)到快速、簡便和現(xiàn)場檢測要求。膠體金免疫層析技術(shù)(colloidal gold immunochromatography,GICA)具有高靈敏度、低成本、操作簡便、結(jié)果判斷直觀等優(yōu)點(diǎn),已廣泛應(yīng)用于T-2 毒素的快速檢測、臨場檢測等領(lǐng)域,但目前該試紙條只能做定性檢測[14-15]。本試驗(yàn)制備出T-2 毒素單克隆抗體,根據(jù)膠體金免疫層析試驗(yàn)原理,結(jié)合定量讀卡儀,建立一種快速定量檢測T-2 毒素的膠體金試紙條,并在玉米檢測中進(jìn)行應(yīng)用,為真菌毒素的快速檢測奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        Balb/c 小鼠(6 周~8 周雌性):吉林大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心;T-2 毒素、HT-2 毒素、新石房蛤毒素(neosaxitoxin,NEO)、蛇形霉素(diacetoxyscirpenol,DAS)、脫氧雪腐鐮刀菌烯醇毒素(deoxynivalenol,DON)、雪腐鐮刀菌烯醇毒素(nivalenol,NIV)標(biāo)準(zhǔn)溶液:普瑞邦生物工程有限公司;卵清蛋白(ovalbumin,OVA)、牛血清白蛋白(bovine serum albumin,BSA):合肥博美生物科技有限責(zé)任公司;30 nm 膠體金、NC 膜、玻璃纖維膜、PVC底板:上海杰一生物科技有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        點(diǎn)膜儀(XYZ3000):Bio-Dot 公司;數(shù)控切條機(jī)(CT-300):上海金標(biāo)生物科技有限公司;分析型高效液相色譜儀(2695 分析型):美國waters 公司;酶標(biāo)分析儀(SM-3 型):北京天石天力醫(yī)療器械技術(shù)開發(fā)中心;紫外-可見分光光度計(jì)(Nanodrop2000):美國 Thermo 公司;膠體金定量讀數(shù)儀(TND09MJ):深圳拓能達(dá)科技有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 T-2 毒素單克隆抗體的制備

        參考Chu 等[16-17]的方法合成T-2-HG-BSA 和 T-2-HS-OVA 抗原,以 T-2-HG-BSA 為抗原對 6 周~8 周的雌性Balb/c 小鼠進(jìn)行免疫,4 次免疫后取小鼠免疫血清ELISA 測定效價(jià),選擇血清效價(jià)高的小鼠脾細(xì)胞與骨髓瘤細(xì)胞(SP2/0)進(jìn)行融合,獲得T-2 毒素單克隆抗體雜交瘤細(xì)胞株,將其接種到Balb/c 小鼠腹腔內(nèi)采集腹水,得到T-2 毒素單克隆抗體,并采用間接ELISA法對抗體的效價(jià)進(jìn)行測定。

        1.3.2 T-2 毒素單克隆抗體的純化鑒定

        將小鼠腹水與20 mmol/L 磷酸鈉溶液混合,平衡8 h 后過protein G 純化柱純化,最后用甘氨酸鹽酸洗脫液沖洗柱子,收集洗脫液并在PBS(0.01 mmol/L,pH 7.2)中透析24 h,得到純化后的T-2 毒素單克隆抗體。將純化后的抗體進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)電泳鑒定。

        1.3.3 膠體金標(biāo)記抗體最適pH 值的確定

        取酶標(biāo)板,加入100 μL 膠體金后,用0.1 mol/L HCl和 K2CO3溶液,調(diào)節(jié) pH 值分別為 6.0、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0 和 9.5,混勻后加入 4 μL T-2 毒素抗體(1 mg/mL,混勻后加入 10 % NaCl 20 μL,30 min 后觀察標(biāo)記結(jié)果,測定 OD520值。

        1.3.4 金標(biāo)抗體的制備

        取膠體金溶液1 mL,用0.1 mol/L K2CO3溶液調(diào)節(jié)膠體金溶液(30 nm)至最佳pH 值,在溫和攪拌條件下,向其中逐滴加入20 μL T-2 毒素單克隆抗體(1.0 mg/mL),充分混勻 30 min 后,加入 40 μL 濃度為10%BSA 封閉15 min,加入終濃度為0.1%PEG20000混勻15 min。將上述標(biāo)記后的膠體金溶液1 500 r/min低速離心20 min;取上清再12 000 r/min 高速離心20 min;重懸沉淀于儲(chǔ)存液中,4 ℃保存?zhèn)溆谩W贤鈼l件下全波長掃描標(biāo)記抗體的膠體金溶液和未標(biāo)記的膠體金溶液,觀察掃描圖譜波形變化,判斷標(biāo)記是否成功。

        1.3.5 抗體最佳標(biāo)記濃度和抗原最佳包被濃度

        在確定最佳pH 值條件下,單抗分別按照5、10、20、30 μg/mL 標(biāo)記,均勻噴涂在玻璃纖維膜上制成膠體金結(jié)合墊,T-2-HS-OVA 抗原按照 0.125、0.25、0.5、0.75 mg/mL 分別包被在 NC 膜上的檢測線(T 線),羊抗鼠二抗按 1.0 mg/mL 包被到 NC 膜的質(zhì)控線(C 線),將膠體金結(jié)合墊、樣品墊和吸水墊按順序組裝在底板上,進(jìn)行正交試驗(yàn),檢測T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液(0、2、5、10、20、50 μg/kg)濃度,選擇 0 μg/kg 顯色明顯且靈敏度高的組合為最佳條件。在此條件下,羊抗鼠二抗按0.5、0.75、1.0、1.5 mg/mL 包被到 NC 膜的 C 線,選擇檢測10 μg/kg 標(biāo)準(zhǔn)溶液時(shí)C 線顯色強(qiáng)度與T 線相當(dāng)?shù)陌粷舛葹闉樽罴褩l件。

        1.3.6 快速檢測卡的組裝與檢測

        用PBS 配置5%蔗糖、0.05%tween-20 溶液的處理液,玻璃纖維塑膜浸入處理液,10 min 后25 ℃室溫晾干。將最佳標(biāo)記量的金標(biāo)抗體均勻噴涂在玻璃纖維膜上制成膠體金結(jié)合墊,37 ℃干燥1 h。將T-2-HSOVA 抗原和二抗,分別用包被于NC 膜上的T 線和C線,37 ℃干燥2 h。將膠體金結(jié)合墊、樣品墊和吸水墊按順序組裝在底板上,并切割裝入塑料卡殼中,制成檢測卡。在檢測卡的加樣孔中滴加50 μL 待檢樣品溶液,2 min 后,放入膠體金定量讀數(shù)儀中,讀取濃度值。

        1.3.7 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        配制不同濃度(0、5、10、20、50、100 μg/kg)的 T-2毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別取50 μL 加到檢測卡的加樣孔中,25 ℃室溫反應(yīng)2 min,放入膠體金定量讀數(shù)儀中,讀取T 線光密度/C 線光密度比值(T/C),T-2 標(biāo)準(zhǔn)品濃度為0 μg/kg 時(shí) T/C 記為 B0,不同濃度 T-2 標(biāo)準(zhǔn)溶液 T/C 記為B,以T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的對數(shù)為橫坐標(biāo)、B/B0值為縱坐標(biāo),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.3.8 樣品前處理方法的確定

        稱取粉碎的玉米樣品5 g,加入25 mL70%甲醇水溶液,漩渦震蕩提取3 min,提取液用雙層濾紙過濾,取1 mL 濾液加入到 4 mLPBS(0.01 mol/L)溶液中進(jìn)行5倍稀釋,樣品稀釋液用有機(jī)相濾膜(0.45 μm)過濾,取出該濾液50 μL 滴入檢測孔進(jìn)行檢測,2 min 后放入膠體金定量讀數(shù)儀中,讀取濃度值。

        1.3.9 回收試驗(yàn)

        取玉米樣品,檢測其中T-2 毒素含量,向其中添加不同濃度的(5、10、20、50、100 μg/kg)T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,再次進(jìn)行檢測,計(jì)算回收率。

        1.3.10 特異性檢測

        用 PBS 稀釋 T-2 毒素、HT-2 毒素、NEO、DAS、DON、NIV 標(biāo)準(zhǔn)溶液至終濃度為 200、400、800、1 600、3 200 μg/L,用T-2 毒素快速檢測試紙條進(jìn)行檢測,每個(gè)濃度設(shè)6 個(gè)重復(fù),檢測試紙條的特異性。

        1.3.11 重復(fù)性檢測

        隨機(jī)抽取3 個(gè)不同批次及同一批次的試紙條,檢測不同質(zhì)量濃度的(5、10、20、50、100 μg/kg)T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個(gè)樣本濃度重復(fù)測定5 次,檢查試紙條的重復(fù)性。

        1.3.12 樣品檢測

        取10 份玉米樣品,向其中隨機(jī)添加不同濃度的T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,制備T-2 毒素含量在5 μg/kg~100 μg/kg 之間的玉米樣品,分別用試紙條和高效液相色譜法[18]進(jìn)行檢測,每個(gè)樣品重復(fù)3 次,并將檢測結(jié)果進(jìn)行對比。

        1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)利用Excel 2007 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析和標(biāo)準(zhǔn)曲線制作,數(shù)據(jù)以平均值表示。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 T-2單克隆抗體效價(jià)的測定

        采用間接ELISA 方法測定T-2 單克隆抗體效價(jià),單克隆抗體的效價(jià)為1 ∶256 000。

        2.2 T-2毒素單克隆抗體的純化鑒定

        T-2 毒素單克隆抗體經(jīng)protein G 純化后通過SDS-PAGE 電泳進(jìn)行鑒定,結(jié)果顯示(如圖1),50 kDa和25 kDa 位置有清晰條帶,且未見雜蛋白,表明純化得到純度較高的T-2 毒素單克隆抗體。

        2.3 膠體金標(biāo)記抗體最適pH的確定

        物理吸附是膠體金與蛋白質(zhì)結(jié)合的主要機(jī)制。膠體金顆粒表面的負(fù)電荷與蛋白表面正電荷通過靜電作用相互吸附,因此標(biāo)記溶液的pH 值對蛋白標(biāo)記成功與否有重要作用。如圖2 所示。

        圖1 T-2 抗體純化后的SDS-PAGE 電泳鑒定結(jié)果Fig.1 Identification of T-2 antibody purification by SDS-PAGE

        圖2 T-2 毒素金標(biāo)抗體最佳pH 的確定Fig.2 Optimal pH of T-2 toxin colloidal antibody

        由圖2 可知,當(dāng)pH 值為8.5 時(shí),膠體金標(biāo)記抗體蛋白結(jié)合物在520 nm 處的吸光值較高,且曲線趨于平坦,標(biāo)記抗體未發(fā)生死金現(xiàn)象,表明膠體金記抗體的最佳pH 值為8.5。

        2.4 金標(biāo)抗體的質(zhì)量鑒定

        紫外條件下全波長掃描標(biāo)記抗體的膠體金溶液和未標(biāo)記的膠體金溶液,結(jié)果見圖3。

        圖3 膠體金掃描圖譜Fig.3 Colloidal gold scanned pattern

        由圖3 可見,標(biāo)記T-2 毒素單克隆抗體的膠體金溶液最大吸收峰出現(xiàn)了明顯的位移,因此可判斷抗體被膠體金成功標(biāo)記。

        2.5 抗體最佳標(biāo)記濃度和抗原最佳包被濃度

        通過正交試驗(yàn),單抗的最佳標(biāo)記濃度為20 μg/mL標(biāo)記,抗原的包被濃度為0.5 mg/mL,羊抗鼠IgG 的包被濃度為1.0 mg/mL,為最佳組合條件,此時(shí)試紙條的最低檢測限為5 μg/kg。

        2.6 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        通過檢測不同濃度的T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,膠體金讀數(shù)儀讀取T 線光密度/C 線光密度比值(T/C),以T-2毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的對數(shù)為橫坐標(biāo)、B/B0值為縱坐標(biāo),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度在10 μg/kg~100 μg/kg 時(shí),線性范圍較好。其線性方程和回歸系數(shù)見圖4。

        圖4 膠體金試紙條法檢測T-2 毒素的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.4 Standard curve for detection of T-2 toxin by colloidal gold strip method

        2.7 回收試驗(yàn)

        取玉米樣品,檢測其中T-2 毒素含量,向其中添加不同濃度的T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,再次進(jìn)行檢測,計(jì)算回收率,結(jié)果見表1。

        表1 玉米添加T-2 毒素的回收率和變異系數(shù)Table 1 Recoveries and coefficients of variation of T-2 in corn

        結(jié)果顯示,該試紙條檢測玉米樣本的回收率在77 %~117.6%之間,變異系數(shù)小于10%,表明該檢測方法精密度和重現(xiàn)性良好。

        2.8 特異性檢測

        用 PBS 稀釋 T-2 毒素、HT-2 毒素、NEO、DAS、DON、NIV 標(biāo)準(zhǔn)溶液至不同濃度,用T-2 毒素快速檢測試紙條進(jìn)行檢測,評價(jià)試紙條的特異性,結(jié)果見表2。

        表2 T-2 毒素快速檢測試紙條的特異性Table 2 Specificity of T-2 toxin rapid test trip

        由表2 可知,T-2 毒素快速檢測試紙條與其他真菌毒素?zé)o交叉反應(yīng)。說明該試紙條有高度的特異性。

        2.9 重復(fù)性檢測

        隨機(jī)抽取3 個(gè)不同批次及同一批次的試紙條,檢測不同質(zhì)量濃度的T-2 毒素標(biāo)準(zhǔn)溶液,檢查試紙條的重復(fù)性。檢測結(jié)果見表3、表4,結(jié)果表明,T-2 毒素快速定量檢測試紙條的批內(nèi)和批間變異系數(shù)均小于10%,表明該檢測方重復(fù)性良好。

        2.10 方法比對

        隨機(jī)取 10 份 T-2 毒素含量在 5 μg/kg~100 μg/kg之間的玉米樣品,分別用試紙條和高效液相色譜法進(jìn)行檢測,并將檢測結(jié)果進(jìn)行對比。結(jié)果見圖5,GICA 與HPLC 檢測結(jié)果一致。

        表3 T-2 毒素快速檢測試紙條的批內(nèi)重復(fù)性Table 3 Intra repetitiveness of T-2 toxin rapid test trip

        表4 T-2 毒素快速檢測試紙條的批間重復(fù)性Table 4 Inter repetitiveness of T-2 toxin rapid test trip

        圖5 GICA 與HPLC 檢測樣品中T-2 毒素結(jié)果的比較Fig.5 Correlation of quantitative data of T-2 obtained by GICA and HPLC

        3 討論

        玉米是我國重要的糧食作物之一,玉米加工食品也是人們?nèi)粘I畋夭豢缮俚?,比如玉米面、玉米油、速食玉米等。此外,玉米在工業(yè)方面也有重要作用,比如酒精、飼料、制藥等的加工原料。但隨現(xiàn)代化和工業(yè)化進(jìn)程的發(fā)展,T-2 毒素的污染對其造成嚴(yán)重的質(zhì)量安全問題[18-20]。世界各國對T-2 毒素都有嚴(yán)格的限量標(biāo)準(zhǔn)[21],檢測玉米中T-2 毒素的含量對避免T-2 毒素的污染,減少其對人類和畜牧業(yè)的危害有重要意義。由于GICA 具有操作簡便,快速,靈敏度的特點(diǎn),已廣泛應(yīng)用于多種真菌毒素的檢測中[22-23]。目前,朱亮亮等[14-15]建立的飼料和谷物中T-2 毒素檢測試紙條只能定性不能定量。本試驗(yàn)建立的T-2 毒素膠體金定量檢測試紙條可以通過定量讀數(shù)儀獲得T-2 毒素的具體含量,避免了人為因素主觀判斷造成的差異。研究表明[13],半抗原和載體蛋白之間間隔較長碳鏈的免疫原性優(yōu)于間隔較短碳鏈的免疫原性,包被抗原的異質(zhì)性可提高免疫反應(yīng)的特異性。因此本實(shí)驗(yàn)室選用比T-2HS-BSA 碳鏈較長的T-2HG-BSA 為免疫原自主制備出了高特異性的抗T-2 毒素單克隆抗體,并進(jìn)行了膠體金標(biāo)記,提高了檢測結(jié)果的特異性。選用與T-2HS-BSA 具有較高異質(zhì)性的T-2HS-OVA 為包被抗原噴涂在硝酸纖維膜上,提高了檢測結(jié)果的靈敏度。并通過實(shí)驗(yàn)室試紙條檢測參數(shù)的優(yōu)化,把T-2 毒素免疫膠體金快速試紙條檢測限提高到5 μg/kg,明顯高于膠體金標(biāo)記T-2 毒素多克隆抗體的靈敏度[15],玉米添加回收率在77%~117.6%之間,批內(nèi)和批間重復(fù)性檢測變異系數(shù)小于10%,玉米中T-2 毒素的檢測結(jié)果與高效液相法檢測結(jié)果一致。表明本試驗(yàn)研制的快速定量檢測T-2 毒素的方法,可以有效地對食品中T-2 毒素進(jìn)行檢測和監(jiān)控,具有重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值和社會(huì)價(jià)值。

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