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        馬克斯克魯維酵母外切菊粉酶INU1的晶體結構研究

        2019-10-09 01:51:38蘇曉琴方自安周峻崗胡小健
        復旦學報(自然科學版) 2019年4期
        關鍵詞:結構

        李 龍,蘇曉琴,方自安,周峻崗,胡小健,呂 紅

        (1.復旦大學 生命科學學院,上海 200438; 2.上海工業(yè)微生物工程技術研究中心,上海 200438)

        菊粉(Inulin)是一種主要由β-D-呋喃果糖殘基通過β(2→1)鍵連接的多糖聚合物,其末端通常為葡萄糖.它存在于多種植物中,特別是在根或根莖中含量豐富,在植物根的干粉中菊粉的凈含量甚至超過70%[1].由于來源豐富,菊粉作為原材料被廣泛應用于高果糖漿的工業(yè)生產(chǎn),它也可作為碳源生產(chǎn)乙醇等生物燃料以及作為動物飼料添加劑[2-4].

        菊粉酶(Inulinase)又稱為2,1-β-D-果聚糖果糖水解酶,可以將菊粉水解成果糖和低聚果糖,它廣泛存在于酵母菌、曲霉和一些其他微生物中.菊粉酶可作為工業(yè)酶應用于食品工業(yè)中高果糖漿、低聚果糖和多聚果糖的生產(chǎn)[2,5-7],也有一些報道將菊粉酶應用于乙醇的生產(chǎn)[8-10].酵母菌具有繁殖周期短、易于大規(guī)模培養(yǎng)以及生物安全性高等特點,從而成一種工業(yè)化生產(chǎn)菊粉酶的良好來源[11-12].其中,馬克斯克魯維酵母(Kluyveromycesmarxianus)由于耐熱性好、產(chǎn)生的菊粉酶活力高和表達穩(wěn)定等特點而得到了廣泛的使用[12-14].

        按照菊粉酶的反應類型,菊粉酶被分為外切菊粉酶(E.C.3.8.1.80)和內(nèi)切菊粉酶(E.C.3.2.1.7).其中外切菊粉酶水解菊粉末端的果糖單元,內(nèi)切菊粉酶則將菊粉斷裂為菊粉寡糖.前者能夠用于生產(chǎn)高果糖漿,后者用于生產(chǎn)不同聚合長度的菊粉寡糖[13,15].在1991年,Laloux等人克隆和表達了來源于K.marxianusATCC12424菌株的第一個外切菊粉酶基因INU1[16].為了深入研究馬克斯克魯維酵母外切菊粉酶INU1的結構和功能,我們在前期研究[15]的基礎上構建了馬克斯克魯維酵母INU1的表達質(zhì)粒,并在畢赤酵母中進行分泌表達,之后通過陰離子交換層析獲得了純化的INU1菊粉酶,成功結晶后我們解析得到了分辨率為2.8?的INU1晶體結構.對該晶體結構的解析和分析,將幫助我們確定催化反應的關鍵氨基酸以及為后續(xù)的酶學改造提供基礎.

        1 材料與方法

        1.1 表達載體的構建

        以含INU1基因(GenBank: X68479.1)的原始質(zhì)粒CB104為模板,通過PCR擴增DNA并在基因的5’端和3’端分別引入SnaBⅠ和NotⅠ酶切位點,上游引物序列為5’-GACCTACGTAATGAAGTTCG-CATACTCCCTCTTGC-3’,下游引物序列為5’-ATAAGAATGCGGCCGCTCAAACGTTAAATTGG-GTAACGTTAAAT-3’.PCR產(chǎn)物通過1%瓊脂糖核酸電泳進行鑒定,然后通過DNA凝膠回收試劑盒(Axygen公司)純化.純化后的PCR產(chǎn)物以及pPIC9畢赤酵母蛋白表達載體(Invitrogen公司),兩者經(jīng)限制性內(nèi)切酶SnaBⅠ和NotⅠ(TaKaRa公司)雙酶切消化后進行連接反應,得到的重組質(zhì)粒pPIC9-INU1以核酸測序的方法驗證.

        1.2 外切菊粉酶INU1的表達、活性檢測與純化

        測序成功的重組質(zhì)粒pPIC9-INU1使用SalⅠ線性化后,通過電穿孔的方式(Eppendorf,電穿孔儀2510)轉化到畢赤酵母SMD1168(his4,pep4)菌株(Invitrogen,131020sa)中.通過平板篩選后挑取單菌落,于5mL YPD液體培養(yǎng)基中振蕩培養(yǎng)(200r/min、30℃)至OD600為2~6后,3000r/min、5min離心收集菌體.菌體重懸于50mL BMMOL/LY培養(yǎng)基,每24h加入終濃度為1%的無水甲醇誘導72h后,10000×g、15min收集培養(yǎng)上清液,收集的上清液在透析緩沖液(50mmol/L Tris-HCl,10mmol/L NaCl,pH 8.0)中透析4次,每次4h.

        取0.5mL透析后的發(fā)酵上清液,與2.5mL 5%(質(zhì)量濃度)的菊粉混合,在0.05mol/L醋酸緩沖液pH4.7中50℃溫浴5min,反應后釋放的果糖或葡萄糖使用DNS比色法進行定量[17].酶活定義為每分鐘產(chǎn)生1μmol還原糖所需的酶量為1個酶活力單位(U).

        INU1可以使用陰離子交換柱進行純化,首先使用平衡緩沖液(50mmol/L Tris-HCl,10mmol/L NaCl,pH8.0)平衡HiTrap Q HP柱(GE公司),然后將蛋白低速流過結合在Q柱上,最后用洗脫緩沖液A(50mmol/L Tris-HCl,100mmol/L NaCl,pH8.0)和洗脫緩沖液B(50mmol/L Tris-HCl,400mmol/L NaCl,pH8.0)梯度洗脫蛋白.以上各組分,以12%的SDS-PAGE膠鑒定蛋白表達和純化情況.

        以截留分子量為30kDa的超濾管(Millipore公司)將純化后的蛋白洗脫液濃縮,并換液至20mmol/L Hepes pH7.2、200mmol/L KCl、5mmol/L MgCl2、1mmol/L EDTA、1mmol/L DTT和5%甘油的緩沖液中進行結晶篩選.

        1.3 結晶與數(shù)據(jù)收集和結構解析

        在20℃培養(yǎng)條件下,使用Crystal Screen、Crystal Screen 2和PEG/Ion Screen晶體篩選試劑盒(Hampton research公司)進行結晶初篩,之后使用24孔板懸滴法對初篩得到的結晶條件進行重復和優(yōu)化.INU1菊粉酶的晶體衍射數(shù)據(jù)于中國科學院上海同步輻射中心(SSRF)BL17U線站收集[18],衍射數(shù)據(jù)經(jīng)HKL2000[18]進行整合處理,之后使用分子置換方法進行結構解析,結構的解析優(yōu)化使用CCP4、Coot等軟件[19-20],所有結構示意圖通過Pymol軟件(The PyMOL Molecular Graphics System, Version 2.0 Schr?dinger, LLC)制作.INU1的結構數(shù)據(jù)已上傳到蛋白質(zhì)結構數(shù)據(jù)庫(PDB序列號8J0T).

        2 結果與分析

        2.1 外切菊粉酶INU1的純化和結晶

        通過畢赤酵母SMD1168(his4,pep4)分泌表達的INU1顯示出很高的酶活,在pH4.7的緩沖液中50℃條件下,INU1的酶活可以達到1671U/mL,比通過畢赤酵母GS115表達的外切菊粉酶活性要高得多[21-22].經(jīng)陰離子交換層析能獲得高純度的INU1蛋白,在SDS-PAGE膠上的蛋白條帶位置與INU1的理論分子量62kDa一致(圖1(a),@@@484頁).蛋白樣品濃縮至10mg/mL進行結晶篩選,初篩時在18%PEG4000、0.1mol/L二甲胂酸鈉pH 6.0、0.2mol/L MgCl2條件下獲得了INU1晶體.通過24孔板懸滴法進行重復優(yōu)化(1μL蛋白溶液和1μL沉淀劑溶液混合、1mL的池液)并在1周后獲得長條狀三維蛋白晶體,其尺寸為5mm×0.3mm×0.3mm(圖1(b),@@@484頁).晶體浸泡在防凍液(20%PEG4000、0.1mol/L二甲胂酸鈉、0.1mol/L MgCl2和20%甘油,pH6.0)約30s后,速凍于液氮中.

        圖1 菊粉酶INU1的純化和結晶Fig.1 Thepurification and crystallization of inulinase INU1(a)為純化的SDS-PAGE膠圖.其中M條帶為蛋白分子量標準,S為畢赤酵母分泌表達的上清,P為表達后的沉淀,L為HiTrap Q HP的上樣樣品,F(xiàn)為未結合Q柱的流穿液.(b)為優(yōu)化后的INU1晶體.

        2.2 外切菊粉酶INU1的整體結構

        INU1晶體的衍射數(shù)據(jù)于中國科學院上海同步輻射光源(SSRF)BL17U線站收集,使用的X射線波長為1.0082?,曝光時間為1s,溫度為100K,晶體旋轉步長為0.5°,共收集旋轉100°的衍射圖譜數(shù)據(jù).

        INU1晶體空間群為I4122,晶胞參數(shù)a=b=c=172.65?,Matthews系數(shù)為2.61?3/D,溶劑含量為52.82%.用于收集衍射數(shù)據(jù)的INU1晶體質(zhì)量較高,其鑲嵌度為0.62,分辨率達到了2.80?,收集的衍射數(shù)據(jù)有99.86%的完整性,Rmerge為9.8%(表1).

        表1 INU1的晶體學參數(shù)表

        *括號中為最高分辨率外殼層的值.

        以氨基酸序列同一性為52%的釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)轉化酶(PDB ID 4EQV)晶體結構作為模板,使用分子置換法我們完成了INU1的晶體結構解析.完成晶體結構優(yōu)化后的Rcrystal和Rfree值分別為0.20和0.27,平均B因子為50.12?2,拉氏圖(Ramachandran plot)分析顯示最后的結構模型中99.9%的氨基酸的二面角都處于最優(yōu)或允許的區(qū)間.

        晶體結構顯示在每個不對稱單元中有兩個INU1蛋白分子面對面形成一個二聚體的堆積方式(圖2(b)).這兩條鏈的結構基本一致,把兩條鏈根據(jù)二級結構進行疊合時顯示Cα原子的均方根偏差為0.356?.計算兩個分子的表面積為34400?2,相互作用界面包埋的相互作用面積為6585.6?2,標準的解離自由能約為17kcal/mol,提示晶體中顯示的這個二聚體在溶液中也是一個非常穩(wěn)定的聚合狀態(tài),這與GH32家族中其他糖苷水解酶的二聚化一致.在這個晶體結構中,還確定了20個結合的水分子,在每條鏈的Asn226還結合了兩個以β(1→4)糖苷鍵聯(lián)接的N-乙酰氨基葡萄糖(NAG)分子(圖2(a)).

        INU1共有555個氨基酸殘基,其中N端1~16號氨基酸為信號肽,17~23號氨基酸為前肽區(qū).在晶體結構中,除了N端前面的32個氨基酸和第252位到262位的一個環(huán)結構,其他氨基酸都能根據(jù)電子云密度清楚地確定位置.INU1的單體由兩個結構域組成: N端高度保守的β螺旋槳結構域,由5個典型的β折疊葉片(Ⅰ~Ⅴ)組成,而C端較不保守的β夾層結構域包括12個β折疊片層(圖2(c)).

        INU1屬于糖苷水解酶32家族(Glycoside Hydrolase Family 32, GH32)(圖3).根據(jù)氨基酸序列相似性糖苷水解酶的可分為156個家族,GH32家族主要包括轉化酶(EC 3.2.1.26)、內(nèi)切菊粉酶(EC 3.2.1.7)、左旋糖苷酶(EC 3.2.1.65)和外切菊粉酶(EC 3.2.1.80)等.該家族在結構上的主要特點就是具有保守的5葉片β螺旋結構域[23].INU1的晶體結構也與GH32家族成員基本一致,與其他GH32家族成員的二級結構疊合對比顯示Cα原子的均方根偏差范圍為1.35~1.55?(圖2(d)).

        圖2 INU1的晶體結構Fig.2 The crystal structure of inulinase INU1(a)為INU1晶體的衍射圖;(b)非對稱單位中兩個INU1分子形成二聚體,分別為黃色和綠色顯示.圖中N-term和C-term標示了每條鏈的N端和C端.每條鏈的Asn226結合有兩個以β(1→4)糖苷鍵聯(lián)接的N-乙酰氨基葡萄糖(NAG)分子,顯示為青色;(c)為單個INU1分子結構域;(d)為INU1與其他GH32家族蛋白結構的比對.圖中的PDB序列號3U75為西方許旺酵母(Schwanniomyces occidentalis)呋喃果糖苷酶,3KF5為S.occidentalis轉化酶,4EQV為S.cerevisiae轉化酶,1Y9M為泡盛曲霉(Aspergillus awamori)外切菊粉酶,3SC7為無花果曲霉(Aspergillus ficuum)內(nèi)切菊粉酶.

        圖3 INU1與呋喃果糖苷酶底物結合口袋的結構比對立體視圖Fig.3 The cross-eye stereo view of the substrate binding pocket in INU1 and fructofuranosidase from S. occidentalis圖中INU1顯示為黃色,西方許旺酵母來源的呋喃果糖苷酶(PDB序列號3U15)顯示為綠色,由6個果糖形成的菊粉分子顯示為青色.圖中還標示出了底物結合口袋周圍的重要氨基酸,氨基酸位置以INU1序列為參照.

        3 討 論

        我們嘗試在結晶條件中添加果糖和菊粉,但未能獲得INU1與底物的復合物結構.在西方許旺酵母來源的呋喃果糖苷酶中,有結合底物菊粉的復合物晶體結構[24].將INU1與該結構對比顯示,在底物結合口袋中與底物相互作用的氨基酸都是保守的(圖3,@@@486頁).糖苷水解酶32家族的催化反應一般由Blade Ⅰ結構β1上的一個天冬氨酸或谷氨酸作為親核試劑,Blade Ⅲ結構β9上高度保守的Arg-Asp-Pro(RDP)基序起到穩(wěn)定催化過程中間態(tài)的作用,Blade Ⅳ結構β13上的谷氨酸作為質(zhì)子供體(圖4,@@@486頁)[25-27].根據(jù)序列和結構對比結果,外切菊粉酶INU1的Asp53、Asp182和Glu238應為主要的催化氨基酸,還有Asn52、Gln71、Trp79、Phe113、Ser114、Arg181、Asn273、Pro274和Trp335為與底物相互作用的氨基酸,其中Trp79、Phe113、Pro274和Trp335為提供疏水作用的氨基酸(圖3和圖4).

        圖4 INU1與其他GH32家族蛋白氨基酸序列比對Fig.4 The amino acid sequence alignment of INU1 and others GH32 family proteins圖中黑色三角形為催化氨基酸,黑色圓圈為與底物有親水相互作用的氨基酸.

        我們嘗試在結晶時加入菊粉作為底物,但在活性中心位置沒有找到明顯的底物或產(chǎn)物分子的電子云密度信號.另外可能由于構象不固定,在INU1結構靠近糖基化基團Asn226附近的第252到262位的一段環(huán)狀結構沒有清晰的電子云密度.在這一區(qū)域附近,還有一些難以辨認的電子云密度信號,它們可能是較長的糖鏈分子,也可能是非特異結合的菊粉分子.

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