張淑青 相叢超 封志明
摘要:以石薯1號(SH1)、中薯3號(Z3)、費烏瑞它(W1)3個二季作區(qū)馬鈴薯主栽品種組培苗為試材,研究矮壯素(CCC)對馬鈴薯組培苗生長的影響及其經(jīng)組培繼代培養(yǎng)后抑制作用解除效應(yīng)。結(jié)果表明,隨CCC濃度的增大,3個馬鈴薯品種的株高、葉片大小及品種Z3莖葉干鮮質(zhì)量總體呈下降趨勢,3個品種的全株干鮮質(zhì)量、根干鮮質(zhì)量及品種SH1、W1的莖葉干鮮質(zhì)量總體呈先增大后減小趨勢,而根長、莖粗變化規(guī)律性不強,根長均大于對照未用CCC處理的;CCC處理的SH1、Z3、W1組培苗經(jīng)不添加CCC的培養(yǎng)基繼代培養(yǎng)3次,CCC對組培苗的抑制作用可完全解除。
關(guān)鍵詞:馬鈴薯;組培苗;矮壯素;抑制作用;解除
中圖分類號:S532.043 ? 文獻標志碼: A ?文章編號:1002-1302(2019)14-0099-05
馬鈴薯(Solanum tuberosum L.)為茄科茄屬多年生草本植物,營養(yǎng)豐富[1],目前已成為世界第四大糧食作物[2]。我國是世界上最大的馬鈴薯生產(chǎn)與消費國,2015年原農(nóng)業(yè)部提出“馬鈴薯主糧化戰(zhàn)略”,這對馬鈴薯產(chǎn)業(yè)發(fā)展提出了更高要求,使馬鈴薯產(chǎn)業(yè)在我國農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中居于重要地位[3-4]。
馬鈴薯獲得豐產(chǎn)的關(guān)鍵是使用優(yōu)良種薯[5],而優(yōu)良種薯的獲得關(guān)鍵是優(yōu)良馬鈴薯種質(zhì)資源的獲得及其種苗莖尖脫毒,這就涉及到馬鈴薯種質(zhì)資源的收集、保存及其組培苗生產(chǎn)、繼代培養(yǎng)等過程。目前,對馬鈴薯種質(zhì)資源的保存主要有田間保存、組培苗離體保存、微型薯保存等方式[6],其中,組培苗通過添加適宜濃度植物的生長調(diào)節(jié)劑進行離體保存是行之有效的方法之一[7],而如何科學合理地安排馬鈴薯組培苗批量生產(chǎn)的銜接,是其保存、繼代培養(yǎng)存在的主要問題。本研究通過研究矮壯素(CCC)對二季作區(qū)馬鈴薯主栽品種組培苗生長的影響及其抑制作用解除效果,探究CCC對馬鈴薯組培苗的生長調(diào)控規(guī)律,以期為馬鈴薯組培苗的保存和生產(chǎn)提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
試驗于2017年5—6月在石家莊市農(nóng)林科學研究院蔬菜研究所馬鈴薯組培室進行,品種石薯1號、中薯3號、費烏瑞它組培苗由石家莊市農(nóng)林科學研究院提供,這3個馬鈴薯品種的特征、特性見表1。試驗中使用到的儀器設(shè)備主要有 101-1AB 型電熱鼓風干燥箱、直尺、游標卡尺、OHAUS GT410型電子秤、上海博泰產(chǎn)SPX-GB-300型光照培養(yǎng)箱。
1.2 試驗設(shè)計
1.2.1 CCC對馬鈴薯組培苗的生長調(diào)控 分別截取3個馬鈴薯品種生長健壯、長勢均一、大小為1 cm的莖段250個,轉(zhuǎn)接于含CCC濃度分別為0、0.03、0.06、0.09、0.12、0.15、0.18、0.21、0.24、0.27 g/L的培養(yǎng)基上,以0 g/L CCC處理為空白對照(CK);隨機擺放于光照培養(yǎng)架上培養(yǎng)45 d,調(diào)查3個馬鈴薯品種組培苗的株高、莖粗、根長、葉片大小、植株鮮質(zhì)量、莖葉鮮質(zhì)量、根鮮質(zhì)量、植株干質(zhì)量、莖葉干質(zhì)量、根干質(zhì)量。每瓶5株,每瓶為1次重復(fù),每處理重復(fù)5次。
1.2.2 CCC對馬鈴薯組培苗抑制作用的解除 分別截取3個馬鈴薯品種生長健壯、長勢均一、大小為1 cm的莖段450個,轉(zhuǎn)接于含CCC濃度分別為0(CK)、0.03、0.06、0.09、0.12、0.15、0.18、0.21、0.24、0.27 g/L的培養(yǎng)基上培養(yǎng)45 d,每個濃度梯度9瓶,每瓶5株;對組培瓶內(nèi)每株組培苗截取大小為1 cm的莖段1個,轉(zhuǎn)接于不添加CCC的培養(yǎng)基中進行第1次繼代培養(yǎng)25 d,并分別從各處理的9個瓶苗中隨機選取3瓶,測量株高并計算其生長抑制率,每瓶為1次重復(fù),重復(fù)3次,剩余6瓶組培苗參照第1次繼代培養(yǎng)的方法,再次轉(zhuǎn)接于不添加CCC的培養(yǎng)基上進行第2次繼代培養(yǎng)25 d,分別隨機選取3瓶,測量株高并計算其生長抑制率;對剩余的3瓶組培苗同樣進行第3次繼代培養(yǎng)25 d,測量株高并計算其生長抑制率。生長抑制率計算公式為:
生長抑制率=(CK株高-處理組株高)/CK株高×100%。
1.3 統(tǒng)計分析
采用Excel 2010、DPS軟件對試驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。
2 結(jié)果與分析
2.1 CCC處理對馬鈴薯組培苗長勢的影響
2.1.1 株高 由表2可見,CCC對3個馬鈴薯品種組培苗株高均有明顯的抑制作用,且隨CCC使用濃度的增大,組培苗株高整體呈下降趨勢;CCC濃度為0 g/L處理(CK)的馬鈴薯品種SH1、W1、Z3組培苗株高相對最高,分別為13.200、19.458、17.058 cm,CCC濃度為0.27 g/L處理的SH1、W1及CCC濃度為0.21 g/L處理的Z3組培苗株高相對最小,分別為3.450、4.733、4.429 cm,分別較對照顯著降低73.86%、75.68%、74.04%(P0.05),而顯著高于其他濃度處理;CCC處理的馬鈴薯品種W1、Z3組培苗株高均顯著低于對照;CCC濃度為0.24、0.27 g/L 處理的3個馬鈴薯品種組培苗株高相互間差異不顯著。
2.1.2 葉片大小 由表2可見,CCC處理對3個馬鈴薯品種組培苗葉長、葉寬也有一定的抑制作用,且隨CCC使用濃度的增大,葉長、葉寬整體呈下降趨勢;對照處理的SH1、Z3、W1組培苗葉長和葉寬相對最大,分別為2.250、1.242、1.583 cm和1.517、1.125、1.367 cm,CCC濃度為0.27 g/L處理的馬鈴薯品種SH1、Z3、W1組培苗葉長和葉寬相對最小,分別為 1.458、0.833、0.950 cm和1.125、0.683、0.675 cm,較對照分別顯著減小35.20%、32.93%、39.99%和25.84%、39.29%、50.62%(P0.05)。
2.1.3 根長、莖粗 由表2可見,CCC對3個馬鈴薯品種組培苗莖粗、根長有一定影響,但沒有明顯的規(guī)律性;除CCC濃度為0.24、0.27 g/L處理的馬鈴薯品種SH1組培苗根長顯著小于對照(P0.05);各處理的Z3、W1組培苗莖粗相互間差異不顯著,CCC濃度為0.03~0.21 g/L處理Z3組培苗及CCC濃度為0.06、0.24 g/L處理W1組培苗,對其根生長有明顯的促進作用,根長顯著高于對照。
2.2 CCC對馬鈴薯組培苗生長量的影響
2.2.1 整株質(zhì)量 由表3可見,隨CCC濃度的增大,馬鈴薯組培苗全株鮮、干質(zhì)量大致呈先增加后降低趨勢,且SH1、Z3組培苗全株鮮、干質(zhì)量在CCC濃度為0.24~0.27 g/L(高濃度)時趨于穩(wěn)定,相互間差異不顯著(P>0.05);SH1組培苗全株鮮質(zhì)量在CCC處理濃度為0.27 g/L時相對最小,為 0.834 g,與對照相比差異不顯著,在CCC處理濃度為 0.06 g/L 時相對最大,為1.195 g,較對照顯著增加35.33%。
2.2.2 莖葉質(zhì)量 由表3可見,CCC對馬鈴薯組培苗莖葉鮮、干質(zhì)量有一定影響,且不同品種呈現(xiàn)出不同的規(guī)律性;SH1組培苗莖葉鮮質(zhì)量在CCC處理濃度為0.27 g/L時相對最小,為0.392 g,較對照顯著降低31.35%(P0.05),顯著低于其他各處理,莖葉干質(zhì)量隨CCC濃度增大總體呈先增大后減小趨勢,在CCC處理濃度為0.27 g/L時相對最小,為0.071 g,較對照顯著降低20.22%,與CCC處理濃度為0.03、0.24 g/L的相比差異不顯著,在CCC處理濃度為0.15 g/L時相對最大,為0.108 g,較對照顯著增加21.35%,與CCC處理濃度為0.09、0.12 g/L的相比差異不顯著;隨CCC使用濃度的增加,Z3組培苗莖葉鮮、干質(zhì)量總體呈下降趨勢,對照處理的相對最大,CCC處理濃度為0.24 g/L的相對最小,鮮、干質(zhì)量分別較對照顯著降低30.50%、30.14%;CCC處理對W1組培苗莖葉鮮、干質(zhì)量表現(xiàn)出低濃度有促進、高濃度有抑制作用的現(xiàn)象,莖葉鮮、干質(zhì)量均在CCC處理濃度為0.03 g/L時相對最大,分別較對照顯著增加32.29%、18.07%,在CCC處理濃度為0.27 g/L時最小,分別較對照顯著減小46.29%、19.28%。
2.2.3 根部質(zhì)量 由表3可見,CCC對馬鈴薯組培苗根鮮、干質(zhì)量有明顯影響;SH1組培苗根鮮、干質(zhì)量對照處理的相對最小,分別為0.312、0.021 g,在CCC處理濃度為0.09 g/L時相對最大,分別為0.614、0.031 g,分別較對照顯著增加 96.79%、47.62%(P
2.3 CCC對馬鈴薯組培苗抑制作用的解除
由圖1可見,將CCC處理后的組培苗經(jīng)第1次繼代培養(yǎng)25 d,SH1組培苗在CCC濃度為0.03~0.09 g/L處理時其生長抑制率與對照相比差異不顯著(P>0.05),說明CCC濃度≤0.09 g/L處理的SH1組培苗經(jīng)第1次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除,而其他CCC濃度處理的抑制作用均未完全解除;Z3、W1組培苗在CCC濃度為0.03 ?g/L處理時其生長抑制率與對照相比差異不顯著,說明CCC濃度0.03 g/L處理的這2個馬鈴薯品種組培苗經(jīng)第1次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除,而其他CCC濃度處理的抑制作用均未完全解除。由圖2可見,SH1組培苗經(jīng)第2次繼代培養(yǎng)25 d,CCC濃度為 0.03~0.15 g/L處理的SH1組培苗其生長抑制率與對照相比差異不顯著,CCC濃度≤0.15 g/L處理的SH1組培苗經(jīng)第2次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除,而其他CCC濃度處理的抑制作用均未完全解除;同理可見,CCC濃度≤0.09 g/L處理的Z3組培苗經(jīng)第2次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除,CCC濃度≤0.12 g/L處理的W1組培苗經(jīng)第2次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除,而其他CCC濃度處理的均未完全解除。試驗結(jié)果表明,CCC處理的3個馬鈴薯組培苗經(jīng)3次繼代培養(yǎng),各處理生長抑制率與對照無差異,說明在試驗最大濃度范圍內(nèi),CCC處理的組培苗經(jīng)3次繼代培養(yǎng)其抑制作用即可解除。
3 結(jié)論與討論
楊喜珍研究認為,適當濃度的矮壯素(CCC)應(yīng)用于春薯5號組培苗生產(chǎn),可以有效降低其生長量[8]。艾辛等研究表明,適宜濃度的CCC可有效延長組培苗的培養(yǎng)時間,可應(yīng)用于馬鈴薯種質(zhì)資源的保存和生長調(diào)控[9-10]。本試驗結(jié)果表明,矮壯素處理可明顯抑制SH1、Z3、W1馬鈴薯組培苗的生長,隨CCC濃度的增大,3個馬鈴薯品種的株高、葉片大小及品種Z3莖葉干鮮質(zhì)量總體呈下降趨勢,而株高的降低可有效提高組培瓶空間利用效率,物質(zhì)積累的降低說明營養(yǎng)消耗減少,進而可以延長組培瓶、培養(yǎng)基的使用時間;CCC處理的SH1、Z3、W1組培苗經(jīng)不添加CCC的培養(yǎng)基繼代培養(yǎng)3次,CCC對組培苗的抑制作用可完全解除,這為馬鈴薯種質(zhì)資源保存期的延長提供了可能。須補充說明的是,3個不同基因型馬鈴薯組培苗生長對CCC的響應(yīng)存在一定差異,可能是由于CCC通過抑制赤霉素的合成來抑制植株的伸長[11],而不同基因型馬鈴薯的赤霉素合成途徑不同[9,12]。
目前,對馬鈴薯應(yīng)用CCC的研究主要集中在對植株、組培苗[11,13-15]的抑制、促壯作用等方面,對CCC處理的組培苗其抑制作用解除研究相對較少。本研究表明,經(jīng)CCC處理的馬鈴薯組培苗,在不添加CCC的培養(yǎng)基上第1次繼代培養(yǎng),CCC濃度≤0.09 g/L處理的SH1組培苗、CCC濃度≤0.03 g/L 處理的Z3、W1組培苗,其抑制作用可解除,組培苗可正常生長;經(jīng)第2次繼代培養(yǎng),CCC濃度≤0.15 g/L處理的SH1組培苗、CCC濃度≤0.09 g/L處理的Z3組培苗及CCC濃度≤0.12 g/L處理的W1組培苗,其抑制作用可解除,組培苗可正常生長;經(jīng)第3次繼代培養(yǎng),在試驗濃度范圍內(nèi),3個馬鈴薯品種組培苗均可恢復(fù)生長。
綜合而言,SH1、Z3、W1這3個馬鈴薯品種在進行組織培養(yǎng)保存時,CCC推薦處理濃度分別為0.09、0.03、0.03 g/L,既可有效控長,又可在不添加CCC的繼代培養(yǎng)中解除抑制,以便更好地銜接生產(chǎn)。參考文獻:
[1]劉素穩(wěn),張澤生,楊海延,等. 馬鈴薯蛋白的營養(yǎng)價值評價[J]. 營養(yǎng)學報,2008,30(2):208-210.
[2]謝從華. 馬鈴薯產(chǎn)業(yè)的現(xiàn)狀與發(fā)展[J]. 華中農(nóng)業(yè)大學學報(社會科學版),2012(1):1-4.
[3]柳 俊. 我國馬鈴薯產(chǎn)業(yè)技術(shù)研究現(xiàn)狀及展望[J]. 中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報,2011,13(5):13-18.
[4]屈冬玉,謝開云,金黎平,等. 中國馬鈴薯產(chǎn)業(yè)發(fā)展與食物安全[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2005,38(2):358-362.
[5]何學功,于光軍,常桂先. 我國馬鈴薯種業(yè)發(fā)展亟待解決的問題[J]. 中國種業(yè),2013(2):9-13.
[6]康 媛. 馬鈴薯莖尖超低溫保存方法研究[D]. 北京:中國農(nóng)業(yè)科學院,2014.
[7]Sarkar D,Chakrabarti S K,Naik P S. Slow-growth conservation of potato microplants:efficacy of ancymidol for long-term storage in vitro[J]. Euphytica,2001,117(2):133-142.
[8]楊喜珍. 不同馬鈴薯品種試管薯苗對植物生長調(diào)節(jié)劑的響應(yīng)及應(yīng)用技術(shù)研究[D]. 楊凌:西北農(nóng)林科技大學,2016.
[9]艾 辛,夏志蘭,劉明月,等. 植物生長調(diào)節(jié)劑對馬鈴薯試管苗生長和保存的影響[J]. 湖南農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學版),2005,31(5):56-59.
[10]劉迎春. 馬鈴薯種質(zhì)資源離體保存的研究[D]. 呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學,2009.
[11]王惠群,蕭浪濤,楊艷麗,等. 矮壯素對中薯3號生理特性的影響研究[J]. 云南農(nóng)業(yè)大學學報,2008,23(2):200-204.
[12]余叔文,湯章城. 植物生理與分子生物學[M]. 北京:科學出版社,1992:439-457.
[13]常立國,范惠玲,劉建超,等. 馬鈴薯試管苗壯苗和生根培養(yǎng)影響因素的研究[J]. 作物雜志,2016(2):129-132,173.
[14]趙光磊,吳凌娟,張雅奎,等. 馬鈴薯脫毒試管苗壯苗培養(yǎng)體系的優(yōu)化[J]. 中國馬鈴薯,2012(4):199-205.
[15]萬 林. 馬鈴薯試管薯壯苗與誘導(dǎo)結(jié)薯培養(yǎng)組合篩選[D]. 雅安:四川農(nóng)業(yè)大學,2012.