朱小長,陶連元,杜瀛瀛,時 云
胰腺癌(pancreatic carcer,PC)是一種常見的消化道腫瘤,其惡化程度高、病程短,具有早期不易確診、手術治愈率低、5年生存率不足1%的特點,是預后效果最差的惡性腫瘤之一[1]。目前PC的化療方案主要以鉑類藥物為基礎,順鉑(cis- dichlorodiamine platinum,DDP)是代表藥物之一。DDP屬于細胞周期非特異性抗腫瘤藥物,與PC腫瘤細胞的DNA結合并抑制其復制轉錄,促進腫瘤細胞凋亡[2]。大量研究[3]表明PC細胞已經(jīng)對DDP產(chǎn)生耐藥性,雷帕霉素哺乳動物靶點(mammalian target of rapamycin,mTOR)信號通路改變是原因之一。雷帕霉素(rapamycin,RAPA)是一種新型高效低毒的大環(huán)內(nèi)酯類免疫抑制劑,能抑制mTOR信號通路,減緩腫瘤細胞對DDP的耐藥性[4]。該研究選取3種PC細胞株,旨在進一步研究RAPA通過mTOR信號通路抑制PC腫瘤細胞作用機制。
1.1 細胞系及主要試劑PANC- 1細胞、BxPC- 3細胞、SW1990細胞購自中國北京細胞系資源庫;RAPA購自海門市碧云天生物技術研究所;DDP、四甲基偶氮唑鹽(methylthio tetrazole,MTT)、二甲基亞砜(DMSO)購自美國Sigma公司;遷移(Transwell)小室、抗磷脂酰肌醇3- 激酶(phosphatidylinositol 3- kinase,PI3K)、磷酸化磷酯酰肌醇- 3激酶(phosphorylated phosphatidylinositol- 3- kinase,p- PI3K)、蛋白激酶B(protein kinase B,AKT)、磷酸化蛋白激酶B(phosphorylated protein kinase B,p- AKT)、mTOR、磷酸化雷帕霉素哺乳動物靶點(phosphorylated mammalian target of rapamycin,p- mTOR)、β- actin、羊抗兔Ig二抗等抗體、胰蛋白酶、青霉素鏈霉素雙抗均購自美國賽默飛世爾科技公司;RPMI- 1640、胎牛血清(FBS)購自美國Gibco公司。
1.2 實驗方法用含10%的胎牛血清的達爾伯克必需培養(yǎng)基(dulbecco minimum essential medium,DMEM)(PANC- 1)或RPMI- 1640(BxPC- 3、SW1990)于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),取對數(shù)期細胞進行實驗。
1.2.1劃痕修復方法 3種細胞接種于6孔板,待細胞融合度80%,劃痕、拍照,去除培養(yǎng)基,加2.5%血清培養(yǎng)基,用含20 mg/L DDP或20 mg/L DDP+10 μmol/L RAPA的血清培養(yǎng)基,培養(yǎng)24 h拍照。劃痕修復率=(0 h劃痕寬度-24 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度×100%。
1.2.2Transwell方法 用胰蛋白酶消化細胞,去除培養(yǎng)液,磷酸鹽緩沖液清洗2次,加無血清培養(yǎng)基調(diào)整細胞密度至15×104個/ml,上室接種200 μl細胞液,下室加600 μl 10%的胎牛血清,用20 mg/L DDP或20 mg/L DDP+10 μmol/L RAPA處理細胞12 h,甲醇固定,結晶紫染色,顯微鏡下觀察并計算穿膜細胞數(shù)。
1.2.3MTT方法 胰蛋白酶消化細胞,接種于96孔板,每孔5×103個細胞,孵育12 h,細胞貼壁后吸去培養(yǎng)基,加入DDP及0、5、10、20 μmol/L RAPA血清培養(yǎng)基200 μl,每24 h換液1次,48 h后加入MTT 20 μl,培養(yǎng)4 h,去除培養(yǎng)基加入DMSO 150 μl,避光搖10 min,取100 μl,490 nm檢測光密度(optical density,OD)值,計算DDP對細胞株的半抑制濃度(50% inhibiting concentration,IC50)。每組6孔,重復3次,取平均值。
1.2.4Western blot方法 取總蛋白,上樣10 μg,SDS- PAGE分離蛋白,轉印PVDF,牛血清白蛋白封閉1 h,加一抗,4 ℃過夜,TBST洗滌3次,加二抗孵育2 h,加ECL發(fā)光液,拍照,分析條帶灰度。
2.1 RAPA抑制胰腺癌細胞株遷移能力劃痕實驗顯示,單用DDP 時,PANC- 1、BxPC- 3、SW1990三種耐DDP細胞株均具有較強的遷移能力,PANC- 1的遷移能力最強,其次為SW1990、BxPC- 3。聯(lián)合RAPA,3株耐藥株的遷移能力均顯著低于未加RAPA(P<0.01),見表1、圖1。
表1 RAPA抑制胰腺癌細胞株遷移能力
2.2 RAPA抑制胰腺癌細胞株侵襲能力Transwell實驗顯示:單用DDP,PANC- 1、BxPC- 3、SW1990三種耐DDP細胞株均具有較強的侵襲能力,聯(lián)合RAPA,3株耐藥株的侵襲能力顯著降低(P<0.01),見表2、圖2。
表2 RAPA抑制胰腺癌細胞株侵襲能力
2.3 RAPA降低胰腺癌細胞株IC50劃痕修復實驗及Transwell實驗顯示:10 μmol/L RAPA能抑制PANC- 1、BxPC- 3、SW1990耐藥株的遷移能力和侵襲能力,故進一步設計DDP聯(lián)合不同濃度梯度的RAPA,考察DDP對3種細胞株的IC50的變化。結果顯示:未加RAPA時,3株細胞株的IC50較高,加入5、10、20 μmol/L RAPA,3株細胞株的IC50顯著降低(P<0.01),見表3。
2.4 RAPA抑制PANC- 1細胞株PI3K/AKT/mTOR通路的蛋白表達Western blot實驗顯示:單用DDP時,PANC- 1耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、mTOR、p- mTOR蛋白表達量較高,聯(lián)合加入5、10、20 μmol/L RAPA后,PANC- 1耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、mTOR、p- mTOR蛋白表達量顯著降低(P<0.01),見圖3。
圖1 劃痕修復實驗結果 ×40
圖2 Transwell實驗結果 ×100
組別DDPDDP+RAPA(5 μmol/L)DDP+RAPA(10 μmol/L)DDP+RAPA(20 μmol/L)t值P值PANC-142.31±4.6834.59±4.22??23.38±4.24??##13.78±3.11??##ΔΔ55.90<0.01BxPC-337.58±4.2430.24±3.52??18.34±4.01??##10.36±3.24??##ΔΔ62.01<0.01SW199033.69±3.5727.21±3.28??18.34±3.21??##12.24±3.14??##ΔΔ49.36<0.01
與對照組比較:**P<0.01;與低劑量組比較:##P<0.01;與中劑量組比較:ΔΔP<0.01
圖3 RAPA對 PANC- 1 細胞蛋白表達的影響
A:DDP;B:DDP+RAPA(5 μmol/L);C:DDP+RAPA(10 μmol/L);D:DDP+RAPA(20 μmol/L);與DDP組比較:**P<0.01;與DDP+RAPA (5 μmol/L)組比較:##P<0.01;與DDP+RAPA(10 μmol/L)組比較:ΔΔP<0.01
2.5 RAPA抑制BxPC- 3細胞株PI3K/AKT/mTOR通路的蛋白表達Western blot實驗結果顯示:僅加入20 mg/L DDP 時,BxPC- 3耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、mTOR、p- mTOR蛋白表達量較高,聯(lián)合加入5、10、20 μmol/LRAPA后,BxPC- 3耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、mTOR、p- mTOR蛋白表達量顯著降低(P<0.01),見圖4。
2.6 RAPA抑制SW1990細胞株PI3K/AKT/mTOR通路的蛋白表達Western blot實驗顯示:僅加入20 mg/L DDP 時,SW1990耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、mTOR、p- mTOR蛋白表達量較高,聯(lián)合加入5、10、20 μmol/L RAPA,SW1990耐藥株的mTOR蛋白表達量降低,三組間差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);SW1990耐藥株的PI3K、p- PI3K、AKT、p- AKT、p- mTOR蛋白表達量顯著降低(P<0.01),見圖5。
研究[5]表明,腫瘤細胞的化藥耐藥是導致化療失敗的重要原因,根據(jù)耐藥性產(chǎn)生的機制,可分為原發(fā)性耐藥(primary drug resistance,PDR)和多藥耐藥(multidrug resistance,MDR),PDR 僅對誘導藥物產(chǎn)生耐藥,MDR不僅對誘導藥物產(chǎn)生耐藥,還對結構不同、作用機制不同的藥物產(chǎn)生耐藥,是腫瘤化療失敗的首要原因,抑制多藥耐藥蛋白,能增加DDP 對耐藥基因DNA的損傷。細胞產(chǎn)生耐藥性的機制最主要有:① 細胞內(nèi)藥物濃度下降:腫瘤細胞膜改變使藥物不易進入細胞內(nèi),或腫瘤細胞增加藥物外排,最終使細胞內(nèi)藥物濃度下降,不能達到最低有效濃度[6];② 腫瘤細胞凋亡程序改變,例如,腫瘤細胞損傷激活細胞PI3K/AKT/mTOR信號通路,增強腫瘤細胞DNA損傷修復機制,改變信號通路相關基因活性[7-8]。
圖4 RAPA對 BxPC- 3 細胞蛋白表達的影響
A:DDP組;B:DDP+RAPA (5 μmol/L);C:DDP+RAPA(10 μmol/L);D:DDP+RAPA (20 μmol/L);與DDP組比較:**P<0.01;與DDP+RAPA (5 μmol/L)組比較:##P<0.01;與DDP+RAPA(10 μmol/L)組比較:ΔΔP<0.01
mTOR信號通路主要由PI3K、AKT、mTOR等組成,影響細胞增殖、凋亡、代謝等生理活動。胰島素樣生長因子作用,激活PI3K,使磷脂酰肌醇4,5- 二磷酸(phosphatidylinositol 4,5- diphosphate,PIP2)磷酸化生成PIP3,PIP3促使AKT在細胞膜表面被脯氨酸依賴性激酶磷酸化形成p- AKT,使處于抑制狀態(tài)的mTOR被激活。磷酸化的p- mTOR激活下游相關分子,促進細胞翻譯、合成,調(diào)節(jié)細胞代謝等生理功能[9]。有研究[10]證實mTOR信號通路可以影響腫瘤細胞的生長代謝、促進細胞增殖、抑制細胞凋亡、增強細胞的侵襲能力。有學者從DDP 耐藥肺癌細胞株A549/順二氨基二氯鉑中發(fā)現(xiàn)AKT1呈高表達,抑制AKT1表達可以逆轉肺癌細胞對DDP 的耐藥[11]。Wang et al[12]和Zhang et al[13]研究表明,CA916798基因編碼的蛋白存在于mTOR信號通路的3個磷酸化位點,mTOR通路可在轉錄水平上調(diào)控該基因的表達,誘導DDP耐藥。
圖5 RAPA對SW1990細胞蛋白表達的影響
A:DDP組;B:DDP+RAPA (5 μmol/L);C:DDP+RAPA(10 μmol/L);D:DDP+RAPA (20 μmol/L);與DDP組比較:**P<0.01;與DDP+RAPA (5 μmol/L)組比較:##P<0.01;與DDP+RAPA(10 μmol/L)組比較:ΔΔP<0.01
本研究顯示:PANC- 1、BxPC- 3、SW1990 3種PC細胞株均對DDP耐藥,單用DDP時,3種細胞株均具有很強的細胞遷移能力和侵襲能力,IC50較高;聯(lián)用RAPA后,3種細胞株的遷移能力和侵襲能力顯著下降(P<0.01),這與朱方 等[14]的研究結果一致。當加入不同濃度的RAPA后,3種細胞株的生存率均明顯降低,其IC50顯著下降(P<0.01),這提示RAPA可以增強耐藥株對DDP的敏感性。進一步的Western blot 實驗檢測顯示:RAPA可下調(diào)PANC- 1及BxPC- 3細胞中PI3K、AKT、mTOR蛋白的表達,抑制PI3K、AKT、mTOR磷酸化,雖然對SW1990的mTOR表達的影響較弱,但仍可顯著抑制相關蛋白磷酸化,表明RAPA可能是通過抑制mTOR通路逆轉PC細胞株DDP 耐藥機制。mTOR有mTORC1和mTORC2兩種復合體,均對腫瘤細胞的增殖、分化、生長、轉移等有不同的效應。蔡鵬濤 等[15]研究表明,mTORC2在耐藥細胞中的表達明顯高于敏感株,mTORC1在敏感細胞中的活性更高,但是在兩種細胞中,mTOR信號通路均處于高度活化狀態(tài),提示mTORC1和mTORC2之間可能存在動態(tài)平衡,當上游信號發(fā)生改變時,將使mTORC1向mTORC2轉化,產(chǎn)生耐藥性,這也可能是本研究中RAPA對SW1990耐藥株的mTOR蛋白抑制不明顯的原因,表明可能還存在其他通路影響mTOR蛋白的表達,其對DDP 產(chǎn)生耐藥的具體機制還值得進一步研究。