高靜,李曉嵐,王敏哲,劉貫英,楊雪松
作者單位:新疆醫(yī)科大學(xué)第五附屬醫(yī)院內(nèi)分泌科,新疆維吾爾自治區(qū) 烏魯木齊 830054
近年較多動物模型在研究分析糖尿病視網(wǎng)膜病變發(fā)生、發(fā)展機制時,發(fā)現(xiàn)一些細(xì)胞因子參與調(diào)控了此過程[1-2],其中對新生血管生成有重要作用的血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)已成為學(xué)者們的研究熱點。目前實驗資料結(jié)果已經(jīng)推測VEGF可能調(diào)控了視網(wǎng)膜病變的形成,可能與VEGF具有提高血管通透性、促內(nèi)皮細(xì)胞遷移、增殖等功能密切相關(guān)[3],且最新研究發(fā)現(xiàn)在大鼠糖尿病模型實驗中,一旦抑制VEGF的表達(dá),大鼠視網(wǎng)膜病變會出現(xiàn)顯著改善[4]?;|(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(stromal cell derived factor-1,SDF-1)是最近發(fā)現(xiàn)的一種由骨髓基質(zhì)細(xì)胞及其他組織基質(zhì)細(xì)胞分泌的細(xì)胞因子,它具有趨化活性的功能。前有研究認(rèn)為,SDF-1和VEGF一樣,也參與了糖尿病大血管病變和微血管病變過程[5-7],但其在調(diào)控的作用機制目前尚不明確,而SDF-1和VEGF之間是否存在相互調(diào)節(jié)的作用以及其相互作用機制也尚無定論。本研究自2017年1—5月對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1進(jìn)行體外培養(yǎng),分別以siRNA介導(dǎo)低表達(dá)VEGF、SDF-1處理細(xì)胞,觀察處理后細(xì)胞增殖、凋亡、遷移狀況的變化情況,從而為進(jìn)一步探討VEGF和SDF-1在糖尿病視網(wǎng)膜血管病變中的可能作用機制提供理論依據(jù)。
1.1材料人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1購自上海信裕生物技術(shù)有限公司。從GenBank中獲得已知的人VEGF和mRNA的序列VEGF、SDF-1,VEGF165、SDF-1 siRNA由上海吉瑪公司合成,非特異隨機序列由上海吉瑪公司贈送。DMEM培養(yǎng)基和10%胎牛血清購自北京方程生物公司,脂質(zhì)體lipofectamineTM 2000購自美國Santa Cruz公司。BCA法蛋白定量測定試劑盒、VEGF、SDF-1兔抗人抗體均購自福建邁新生物工程公司、β-actin鼠單克隆抗體購自Anbo公司。
1.2方法
1.2.1細(xì)胞培養(yǎng) 人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1培養(yǎng)于DMEM培養(yǎng)基內(nèi),其中含10%FBS,細(xì)胞傳代至對數(shù)生長期開始實驗。
1.2.2實驗分組和轉(zhuǎn)染 實驗分成4組,分別為空白對照組(Ⅰ組),轉(zhuǎn)染非特異性對照組(Ⅱ組),轉(zhuǎn)染si VEGF165組(Ⅲ組),轉(zhuǎn)染si SDF-1組(Ⅳ組)。對各組的轉(zhuǎn)染操作過程如下:①在各組的6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中加入生長狀態(tài)良好的HMEC-1細(xì)胞;②對Ⅱ組,Ⅲ組和Ⅳ組分別加入Scramble RNA 20 nmol/L、si VEGF165 20 nmol/L、si SDF-1 20 nmol/L,三組均加入適量Lipofect 2000TM;③24 h后收集細(xì)胞;④對Ⅰ組的人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1不作任何處理。
1.2.3Western印跡法 采用Western印跡法檢測穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞株中VEGF165、SDF-1蛋白表達(dá)變化。操作過程:(1)提取蛋白:將各組細(xì)胞接種于6孔細(xì)胞培養(yǎng)板,加3 mL 4℃預(yù)冷的PBS洗滌細(xì)胞,加入400 μL含PMSF的裂解液,使細(xì)胞充分裂解,于4℃下12 000 r/min離心5 min,吸取上清,放于-80℃保存。(2)Bradford法測定蛋白濃度:首先把不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品加進(jìn)96孔板中,并將待測樣品2.5 μL加進(jìn)測試孔,均稀釋10倍后在測定總蛋白濃度,計算出標(biāo)準(zhǔn)曲線方程。(3)Western Blot檢測:緩慢地在樣孔中加入樣品,經(jīng)過兩種不同的SDS-PAGE電泳(濃縮膠60 V;分離膠100 V),分別為5%和10%各2 h;轉(zhuǎn)印在Bio-Rad電轉(zhuǎn)儀中進(jìn)行,之后封閉硝酸纖維素膜,取出漂洗3次,保存于雜交袋中,內(nèi)含有1∶1 000的一抗,保持溫度4℃下,持續(xù)緩慢地?fù)u動過夜。第二天先進(jìn)行漂洗3次后將硝酸纖維素膜取出放進(jìn)另外一個雜交袋中,內(nèi)含有1∶2 000的二抗,溫度為室溫,緩慢地繼續(xù)搖動1 h。取出漂洗3次后以actin為內(nèi)參對照,進(jìn)一步顯影,感光,定影,均在暗室內(nèi)操作;用Quatity One軟件對得到的圖片進(jìn)行分析其條帶灰度值。
1.2.4MTT增殖檢測 取各組轉(zhuǎn)染后細(xì)胞,調(diào)制成1×105/mL細(xì)胞懸液接種在96孔培養(yǎng)板內(nèi),每孔加入200 μL培養(yǎng)基,培養(yǎng)的48 h后去除培養(yǎng)基,加入含l mg/mLMTT的培養(yǎng)基,37℃繼續(xù)培養(yǎng)4 h后,小心棄去孔內(nèi)培養(yǎng)上清液,每孔加入150 μL二甲基亞砜(DMSO)液,室溫下將平板在微孔板上震蕩,使結(jié)晶物溶解后用酶聯(lián)免疫檢測儀檢測波長490 nm處測吸光度OD值,取4個復(fù)孔的平均值。抑制率=(1-實驗孔OD值/對照孔OD值)×100%。
1.2.5流式細(xì)胞儀(FCM)檢測細(xì)胞凋亡變化 收集轉(zhuǎn)染后各組細(xì)胞,調(diào)制濃度為2×105/mL的細(xì)胞懸液,500~1 000 r/min離心5 min,棄去培養(yǎng)液。PBS洗滌1次,離心去PBS,加入冰預(yù)冷的70%的乙醇固定 1~2 h,離心棄去固定液,PBS 重懸 5 min。400目的篩網(wǎng)過濾1次,500~1 000 r/min離心5 min,棄去PBS,收集懸浮細(xì)胞。加入1 mL PI染液染色,4℃避光30 min。細(xì)胞經(jīng)過PI染色后,上流式細(xì)胞儀,熒光被PI激發(fā)氬離子而產(chǎn)生,激光光波波長為488 nm,發(fā)射光波波長大于630 nm,產(chǎn)生紅色熒光分析PI熒光強度的直方圖,用Cellquest軟件分析處理熒光強度,得出各組細(xì)胞凋亡百分比。細(xì)胞凋亡指數(shù)(AI)=亞二倍體峰細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%。
1.2.6劃痕愈合實驗 收集轉(zhuǎn)染后各組細(xì)胞,在24孔板每孔接種1×105個細(xì)胞,在37℃5%CO2環(huán)境下培養(yǎng)24 h,在孔板中央劃一條寬度為0.8 mm的橫線,并在橫線等距離間隔作5個標(biāo)記以為下一步測量做準(zhǔn)備。繼續(xù)置于37℃5%CO2環(huán)境下培養(yǎng)48 h,在培養(yǎng)前(0 h)和培養(yǎng)后(48 h)均采用相差顯微鏡觀察,沿橫線邊緣作為數(shù)據(jù)測定點,測量橫線兩側(cè)的細(xì)胞間距離(μm)變化,測量時取平均值。HMEC-1的遷移距離(遷移能力)=0 h橫線邊沿的距離-48 h后細(xì)胞遷移邊沿的距離。
1.3統(tǒng)計學(xué)方法數(shù)據(jù)采用SPSS18.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行整理分析,以±s來表示計量資料,多組間數(shù)據(jù)資料采用單因素方差分析(Anova),組間資料采用lsd-t檢驗。計數(shù)資料采用χ2檢驗。
2.1Western印跡法檢測VEGF165、SDF-1蛋白的表達(dá)轉(zhuǎn)染了VEGF165-siRNA后,Ⅲ組VEGF165、SDF-1蛋白的表達(dá)強度均明顯弱于Ⅰ組和Ⅱ組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=9.836,8.279,7.846,8.045,P<0.05);轉(zhuǎn)染了SDF-1-siRNA后,Ⅳ組SDF-1蛋白的表達(dá)強度均明顯弱于Ⅰ組和Ⅱ組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=7.381,7.984,P<0.05),而VEGF165蛋白表達(dá)變化差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。Ⅰ組與Ⅱ組比較,VEGF165、SDF-1蛋白表達(dá)水平差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。見圖1,表1。
圖1 si VEGF165和si SDF-1處理HMEC-1細(xì)胞24 h下調(diào)VEGF165、SDF-1的蛋白表達(dá)水平:I為空白對照組;Ⅱ為轉(zhuǎn)染非特異性對照組;Ⅲ為轉(zhuǎn)染si VEGF165;IV:轉(zhuǎn)染si SDF-1
表1 轉(zhuǎn)染后HMEC-1細(xì)胞中VEGF165、SDF-1蛋白的相對表達(dá)比較/±s
表1 轉(zhuǎn)染后HMEC-1細(xì)胞中VEGF165、SDF-1蛋白的相對表達(dá)比較/±s
注:與Ⅰ組比較,aP<0.05;與Ⅱ組比較,bP<0.05
組別Ⅰ組Ⅱ組Ⅲ組Ⅳ組F值P值VEGF165 1.92±0.42 1.87±0.35 0.48±0.07ab 1.76±0.09 6.067 0.018 SDF-1 1.29±0.38 1.32±0.47 0.62±0.08ab 0.37±0.05ab 4.589 0.038
2.2VEGF165-siRNA、SDF-1-siRNA對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1增殖、凋亡的影響經(jīng)siRNA轉(zhuǎn)染后,Ⅲ組和Ⅳ組細(xì)胞均出現(xiàn)增殖抑制率和凋亡率明顯增高,與Ⅰ組和Ⅱ組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。但Ⅲ組和Ⅳ組之間比較,Ⅲ組細(xì)胞增殖抑制率和凋亡率增高更顯著(t=6.217,5.487,P<0.05),差異有統(tǒng)計學(xué)意義。Ⅰ組與Ⅱ組比較,細(xì)胞增殖抑制率和凋亡率均差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。表明經(jīng)VEGF165 siRNA和SDF-1siRNA轉(zhuǎn)染均對HMEC-1細(xì)胞增殖能力具有抑制作用,對細(xì)胞發(fā)生凋亡具有明顯的促進(jìn)作用,但VEGF165 siRNA轉(zhuǎn)染的作用更顯著。見表2,圖2。
2.3VEGF165-siRNA、SDF-1-siRNA對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1體外遷移力的影響細(xì)胞遷移實驗中,Ⅰ組、Ⅱ組、Ⅲ組、Ⅳ組遷移距離分別為(579.65±11.59)μm、(553.76±9.47)μm、(234.72±10.28)μm、(318.36±9.95)μm,Ⅲ組和Ⅳ組細(xì)胞明顯 少 于 Ⅰ 組 和 Ⅱ 組(t=10.972,9.894,8.426,7.904,P<0.05),差異有統(tǒng)計學(xué)意義,而Ⅰ組與Ⅱ組之間,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),其中Ⅲ組和Ⅳ組之間比較,Ⅲ組細(xì)胞明顯少于Ⅳ組(t=5.907,P<0.05),差異有統(tǒng)計學(xué) 意 義 。說明VEGF165、SDF-1表達(dá)的下調(diào)抑制了人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1的遷移能力,且經(jīng)轉(zhuǎn)染VEGF165 siRNA后的人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1的遷移能力下降更顯著。見圖3,表3。
表2 轉(zhuǎn)染后各組HMEC-1細(xì)胞的增殖能力、凋亡情況比較/xˉ± s
表3 VEGF165-siRNA、SDF-1-siRNA對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1體外遷移力的影響
圖2 各組人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1凋亡率的檢測結(jié)果:A為Ⅰ組,B為Ⅱ組,C為Ⅲ組,D為Ⅳ組
圖3 VEGF165-siRNA、SDF-1-siRNA對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1體外遷移力的影響檢測:A為Ⅰ組,B為Ⅱ組,C為Ⅲ組,D為Ⅳ組
VEGF的促血管新生作用最初是1989年由研究者發(fā)現(xiàn)的,之后它一直是人們的研究熱點。越來越多的動物實驗以及體外實驗均已經(jīng)證明了,VEGF具有促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的生長增殖、促血管通透及誘導(dǎo)血管形成的作用。VEGF家族包括VEGF-A、B、C、D和PIGF,其中VEGF-A與生理/病理情況下的血管生成、血管形成密切相關(guān)[8]。VEGF基因根據(jù)不同剪接分為5種異構(gòu)體:VEGF121、145、165、189及206,其中VEGF165是最為常見的形式,因其在生理病理反應(yīng)中的重要作用被定義為優(yōu)勢異構(gòu)體。目前實驗結(jié)果推測VEGF對內(nèi)皮細(xì)胞作用及新生血管形成的影響可能是糖尿病視網(wǎng)膜病變的發(fā)生、發(fā)展過程的機制之一[9]。SDF-1是CXC家族的趨化因子蛋白,也屬于重要的血管生成蛋白之一,主要在低氧條件下由基質(zhì)細(xì)胞分泌表達(dá),對腫瘤的生長轉(zhuǎn)移以及血管生成的調(diào)節(jié)起著重要作用[10-11]。以往研究表明[12]SDF-1能夠促進(jìn)血管新生部位鄰近的血管內(nèi)皮細(xì)胞遷移、增殖、形成管樣結(jié)構(gòu),并通過動員募集血管前體細(xì)胞參與血管的生成,在修復(fù)損傷的過程中起到重要作用。最新研究發(fā)生,SDF-1能夠誘導(dǎo)內(nèi)皮祖細(xì)胞,促使它從骨髓向缺血的視網(wǎng)膜組織集聚,從而參與糖尿病病人視網(wǎng)膜血管病變發(fā)生[13-14]?,F(xiàn)研究認(rèn)為,SDF-1和VEGF的表達(dá)均參與了糖尿病大血管病變和微血管病變過程[4],但目前對于二者之間的關(guān)系以及作用機制尚無定論。
在基因研究領(lǐng)域中,將外源性或內(nèi)源性雙鏈RNA(dsRNA)導(dǎo)入細(xì)胞后,調(diào)節(jié)和關(guān)閉相應(yīng)基因的表達(dá),進(jìn)而調(diào)控細(xì)胞的各種高級生命活動,這種發(fā)生在轉(zhuǎn)錄后的基因靜寂現(xiàn)象被稱之為RNA干擾[15-16]。本研究為探討VEGF、SDF-1基因?qū)θ宋⒀軆?nèi)皮細(xì)胞HMEC-1增殖、遷移、凋亡中的作用,根據(jù)VEGF、SDF-1基因mRNA特點,設(shè)計了siRNA序列,分別轉(zhuǎn)染了人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1后,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組和轉(zhuǎn)染SDF-1-siRNA組細(xì)胞均出現(xiàn)增殖抑制率和凋亡率明顯增高,與空白對照組和轉(zhuǎn)染非特異性對照組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。但轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組和轉(zhuǎn)染SDF-1-siRNA組之間比較,轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組細(xì)胞增殖抑制率和凋亡率增高更顯著。表明經(jīng)VEGF165 siRNA和SDF-1siRNA轉(zhuǎn)染均對HMEC-1細(xì)胞增殖能力具有抑制作用,對HMEC-1細(xì)胞發(fā)生凋亡具有明顯的促進(jìn)作用,但其中VEGF165 siRNA轉(zhuǎn)染的作用更顯著。推測VEGF、SDF-1基因均能促進(jìn)HMEC-1的增殖能力,并抑制HMEC-1的凋亡,從而在糖尿病血管病變發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮作用,而通過轉(zhuǎn)染siRNA阻斷它們的表達(dá),能降低微血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖,促進(jìn)細(xì)胞凋亡,可推測兩者對微血管內(nèi)皮細(xì)胞的作用可能為糖尿病視網(wǎng)膜血病變治療提供新的靶點[17-18]。
本研究采用Western Blot方法檢測VEGF、SDF-1蛋白表達(dá)水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染了VEGF165-siRNA后,Ⅲ組VEGF、SDF-1蛋白的表達(dá)強度均明顯弱于空白對照組和轉(zhuǎn)染非特異性對照組(P<0.05);轉(zhuǎn)染了SDF-1-siRNA后,Ⅳ組SDF-1蛋白的表達(dá)強度均明顯弱于空白對照組和轉(zhuǎn)染非特異性對照組(P<0.05),而VEGF蛋白表達(dá)變化差異無統(tǒng)計學(xué)意義。表明人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1轉(zhuǎn)染siRNA后,均出現(xiàn)相應(yīng)基因表達(dá)的蛋白水平下降,而轉(zhuǎn)染了VEGF165-siRNA后,不僅VEGF蛋白表達(dá)水平降低明顯,同時伴隨SDF-1蛋白表達(dá)下降。這與前面提到VEGF165 siRNA轉(zhuǎn)染對HMEC-1細(xì)胞增殖、凋亡能力的作用更顯著是相符的,證明了抑制VEGF表達(dá)可以下調(diào)SDF-1表達(dá)水平,兩者之間可能存在密切聯(lián)系,VEGF對SDF-1的表達(dá)具有調(diào)節(jié)機制。
本研究細(xì)胞遷移實驗結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組和轉(zhuǎn)染SDF-1-siRNA組細(xì)胞遷移距離明顯少于空白對照組和轉(zhuǎn)染非特異性對照組(P<0.05),而轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組和轉(zhuǎn)染SDF-1-siRNA組之間比較,轉(zhuǎn)染VEGF165-siRNA組細(xì)胞遷移距離明顯少于轉(zhuǎn)染SDF-1-siRNA組(P<0.05)。說明VEGF、SDF-1表達(dá)的下調(diào)抑制了人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1的遷移能力,且經(jīng)轉(zhuǎn)染VEGF165 siRNA后的人微血管內(nèi)皮細(xì)胞HMEC-1的遷移能力下降更顯著[19-20]。提示兩者在對微血管內(nèi)皮細(xì)胞遷移能力的調(diào)節(jié)過程中,VEGF對SDF-1表達(dá)具有調(diào)節(jié)機制,這可能為尋找預(yù)防及治療糖尿病視網(wǎng)膜血管病變提供了新的策略[21-23]。