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        麻痹性貝類毒素體外生物毒性檢測方法的建立

        2019-08-06 08:29:06于志強陳小青劉漢偉馬中春
        癌變·畸變·突變 2019年4期
        關(guān)鍵詞:貝類毒素干細(xì)胞

        于志強,孫 運,陳小青,劉漢偉,馬中春*

        (寧波中盛產(chǎn)品檢測有限公司/寧波海關(guān)技術(shù)中心,浙江 寧波 315000)

        貝類毒素是由海洋中的有毒藻類通過食物鏈傳遞給藻食性的貝類,并在其體內(nèi)蓄積、放大、轉(zhuǎn)化形成的有毒高分子化合物[1]。進食含有貝類毒素的貝類海洋食品可能造成食物中毒。在所有的貝類產(chǎn)品食物中毒事件中,麻痹性貝類毒素(paralyticshellfish poisoning,PSP)中毒占87%,被公認(rèn)為是對健康危害最嚴(yán)重的之一[2]。我國海洋赤潮毒素中最常見的主要也是麻痹性貝類毒素[3]。因此,對海洋性貝類食品的檢測中麻痹性貝類毒素基本上為必檢項目。目前對于麻痹性貝類毒素的檢測方法主要為小鼠生物法、高效液相色譜法和酶聯(lián)免疫測定法[4]。其中小鼠生物法為大多數(shù)檢測機構(gòu)的常用方法。而小鼠生物法不滿足“3R”原則(replacement,reductionandrefinement)的要求,因此尋找一種更加簡便、靈敏、高效、準(zhǔn)確的麻痹性貝類毒素檢測方法已經(jīng)成為我國各個檢測機構(gòu)的研究重點。

        石房蛤毒素(saxitoxin,STX)是麻痹性貝類毒素主要成員之一[5],具有麻痹性貝類毒素的典型結(jié)構(gòu)與特征,是《GB5009.213-2016食品安全國家標(biāo)準(zhǔn):貝類中麻痹性貝類毒素的測定》中明確規(guī)定的陽性標(biāo)準(zhǔn)品,現(xiàn)階段對麻痹性貝類毒素的檢測方法均是應(yīng)用石房蛤毒素作為陽性標(biāo)準(zhǔn)品建立的,因此,本研究也采用STX為陽性標(biāo)準(zhǔn)品建立新的體外細(xì)胞檢測方法。

        神經(jīng)干細(xì)胞(neuralstemcell,NSC)是一類具有自我更新和多向分化潛能的特殊細(xì)胞,利用它不僅可以探討神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育的分子機制,也可作為一種替代手段用于中樞神經(jīng)損傷、退行性疾病和神經(jīng)性腫瘤等的治療和研究[6]。本研究應(yīng)用小鼠神經(jīng)干細(xì)胞建立麻痹性貝類毒素體外生物毒性檢測方法,利用其自我更新和分化潛能的特性,其更加接近生物體內(nèi)神經(jīng)細(xì)胞對麻痹性貝類毒素的反應(yīng),檢測結(jié)果更準(zhǔn)確、靈敏、高效,并且符合“3R”原則,為貝類毒素的檢測提供了研究的新思路、新方向。

        1 材料與方法

        1.1 實驗材料

        1.1.1 毒素和細(xì)胞 石房蛤毒素(CRM-STX-f),購于加拿大自然研究委員會;小鼠神經(jīng)干細(xì)胞,購于上海素爾生物科技有限公司。

        1.1.2 主要試劑和儀器 DMEM/F12培養(yǎng)基、胎牛血清均購于Gibco公司;B27、L-谷氨酰胺、丙酮酸鈉均購于ThermoFisherScientific公司;堿性成纖維細(xì)胞生長因子(basicfibroblastgrowthfactor,b-FGF)和表皮生長因子(epidermalgrowthfactor,EGF)均購于PeproTech公司;胰蛋白酶購于HyClone公司;Cell CountingKit-8(CCK-8)細(xì)胞增殖-毒性檢測試劑盒購于上海同仁化學(xué)研究所;烏本苷、藜蘆堿均購自Sigma公司;96孔板購自Costar公司。

        CO2培養(yǎng)箱購于德國Binder公司;倒置顯微鏡購于日本Olympus公司;超凈工作臺購于Biox公司;超速離心機購于德國Hermle公司;多功能酶標(biāo)儀購于美國MolecularDevices(MD)公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 NSC細(xì)胞培養(yǎng) 將凍存的NSC于37℃的水浴中迅速融化,在超凈臺中轉(zhuǎn)移至裝有已預(yù)熱完全培養(yǎng)基的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,放入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)12 h后,將NSC轉(zhuǎn)移至離心管中,800r/min離心3 min,棄上清,更換新的完全培養(yǎng)基繼續(xù)于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2d。于培養(yǎng)的第4天進行傳代:將NSC球轉(zhuǎn)移至離心管中,800r/min離心3min,棄上清;用1 mL0.05%的胰酶37℃消化5min(中間輕輕搖動幾次,以保證消化效果更充分);加入1mL培養(yǎng)基(或PBS)終止消化,輕輕吹打,將細(xì)胞球打散,1000r/min離心3min,棄上清重懸后進行傳代。

        1.2.2 細(xì)胞毒性檢測 NSC接種于96孔培養(yǎng)板中,培養(yǎng)至對數(shù)生長期進行標(biāo)準(zhǔn)品的毒性檢測。每孔分別加入170μL培養(yǎng)液和10μL標(biāo)準(zhǔn)品(劑量分別為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4ng),各劑量設(shè)5個重復(fù)孔,每孔再加10mmol/L的烏本苷10μL及1mmol/L的藜蘆堿10μL。同時設(shè)置5個烏本苷及藜蘆堿對照孔,以培養(yǎng)液替代STX陽性劑。另設(shè)5孔為只加30 μL的培養(yǎng)基的空白對照孔。將培養(yǎng)板放入細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h,倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)。每孔加20 μLCCK-8溶液(注意不要產(chǎn)生氣泡),輕搖混勻,將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱內(nèi)孵育2h。用酶標(biāo)儀在450nm處測定各孔D(450)值。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

        采用SPSS17.0軟件進行數(shù)據(jù)處理,計算出各組數(shù)據(jù)的平均數(shù)和方差,在Excel中輸入數(shù)據(jù),以D(450)值為縱坐標(biāo),STX含量為橫坐標(biāo)建立直角坐標(biāo)系,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,通過散點相關(guān)性分析得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程,并得到直線相關(guān)系數(shù)R2以判斷線性關(guān)系。

        2 結(jié)果

        2.1 顯微鏡觀察NSC生長情況

        顯微鏡下觀察正常NSC生長情況,結(jié)果見圖1。NSC培養(yǎng)第1天,為單細(xì)胞懸液;于培養(yǎng)第2~3天,NSC聚集成為小神經(jīng)球;培養(yǎng)第4天,由于NSC克隆增殖,小神經(jīng)球逐漸增大為大神經(jīng)球。

        2.2 加入STX后各組NSC生長情況

        空白對照組NSC生長活躍,形態(tài)為正常圓球狀;烏本苷及藜蘆堿對照組可見較多細(xì)胞出現(xiàn)腫脹破裂,STX組可見腫脹或破裂死亡的細(xì)胞,但細(xì)胞形態(tài)多為正常(見圖 2)。

        2.3 STX各劑量組D(450)值測定

        通過酶標(biāo)儀測定的空白對照組、烏本苷及藜蘆堿對照組以及各STX劑量組平均D(450)值及標(biāo)準(zhǔn)差見表1。

        圖1 顯微鏡下觀察神經(jīng)干細(xì)胞生長情況

        圖2 顯微鏡下觀察加入STX后各組神經(jīng)干細(xì)胞生長情況

        表1 各組D(450)值測量結(jié)果

        2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        STX的含量在0.2~1.0ng范圍內(nèi)與D(450)值呈劑量反應(yīng)關(guān)系,而在1.0~1.4ng范圍內(nèi)不具有劑量反應(yīng)關(guān)系,其在0.2~1.0ng范圍內(nèi)得可得到直線回歸方程:y=1.252+0.495x(r=0.9980,P<0.01)。根據(jù)此結(jié)果制作出標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖3。

        3 討論

        圖3 STX細(xì)胞毒性試驗標(biāo)準(zhǔn)曲線

        現(xiàn)階段,對于麻痹性貝類毒素的檢測方法主要為小鼠生物法、高效液相色譜法和ELISA檢測法,這3種方法都是國家標(biāo)準(zhǔn)GB5009.213-2016中明確提到的檢測方法,并且已被廣大檢測機構(gòu)所采用,同時小鼠生物法更是由于其檢測結(jié)果更接近人體對毒素的反應(yīng)以及不需要特殊儀器設(shè)備等優(yōu)點,而成為了檢測麻痹性貝類毒素的首選方法[7]。但是該方法也暴露出了很多問題,如小鼠之間存在個體差異,對毒素的敏感性不盡相同,因此,造成了檢測靈敏度不高,結(jié)果偏差較大[8]。高效液相色譜法由于麻痹性毒素的標(biāo)準(zhǔn)品較少、儀器設(shè)備昂貴、需要專業(yè)的技術(shù)人員等問題限制了其廣泛的應(yīng)用于各個檢測機構(gòu)[9-10]。于兵[11]、羅輝武等[12]一致認(rèn)為ELISA是快速篩選麻痹性貝類毒素的首選技術(shù),但ELISA檢測法需要應(yīng)用麻痹性貝類毒素的相關(guān)抗體,由于難以獲得大量抗體,造成麻痹性貝類毒素的ELISA檢測試劑盒價格居高不下,使其檢測成本過高,推廣難度較大。綜上,目前急需一種新型檢測方法滿足檢測需要。體外細(xì)胞檢測方法由此應(yīng)運而生,其具有上述3種方法中不可替代的優(yōu)點:減少動物的使用,檢測成本低,操作簡便。因此,此方法可成為一種新型麻痹性貝類毒素的檢測手段。

        本研究應(yīng)用STX等麻痹性貝類毒素能夠抑制烏本苷和藜蘆堿引起的Na+內(nèi)流造成的細(xì)胞腫脹破裂,減少細(xì)胞死亡的原理,建立檢測麻痹性貝類毒素方法。應(yīng)用96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,對細(xì)胞的需求量不大,應(yīng)用小鼠神經(jīng)干細(xì)胞,由于其具有自我更新和多向分化的特性,其生理特點更接近于原代細(xì)胞,其檢測結(jié)果較致瘤化的細(xì)胞系更能體現(xiàn)動物體內(nèi)細(xì)胞對毒素的真實反映。同時本方法操作簡便,靈敏度高,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的陽性劑只需納克級,對待檢樣品的需求量較小。并且在一定范圍內(nèi)測量的吸光度值與STX的含量具有正相關(guān)關(guān)系,以此初步建立了麻痹性貝類毒的細(xì)胞檢測方法。

        本研究建立的檢測方法對細(xì)胞狀態(tài)要求較高,細(xì)胞生長活躍可以提高檢測的靈敏度,其后續(xù)研究將進一步優(yōu)化條件并應(yīng)用建立的細(xì)胞檢測方法對待檢樣品進行檢測。

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