王 蕊,付維來,陳 思,陳 晶,易敢峰
( 1.福建大北農水產科技有限公司,福建 漳州 363500;2.北京大北農科技集團股份有限公司,飼用微生物工程國家重點實驗室,北京 100080 )
2016年全國羅非魚(Oreochromis)養(yǎng)殖量為1.866×106t,比2015年提高了4.88%,穩(wěn)居世界首位。羅非魚生長快、產量高、抗病力強,是淡水養(yǎng)殖優(yōu)秀品種。但是近年來,全球性羅非魚鏈球菌病的暴發(fā)給羅非魚養(yǎng)殖業(yè)造成了巨大的經濟損失[1-2]??股豙3]一直是防控該病的首選,但是抗生素的殘留及病原菌耐藥性等問題突顯,威脅養(yǎng)殖環(huán)境和人類的健康。
益生菌以安全、有效的特性受到廣泛的研究與應用。據已有研究報道,對羅非魚鏈球菌有抑制作用的菌株涉及枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)、地衣芽孢桿菌(B.licheniformis)、蘇云金芽孢桿菌(B.thuringiensis)、解淀粉芽孢桿菌(B.amyloliquefaciens)、蠟樣芽孢桿菌(B.cereus)、凝結芽孢桿菌(B.coagulans)、諾卡氏菌(Nocardiasp.)及植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)等[4-8]。諸多研究表明,芽孢桿菌具有拮抗致病菌、凈化池塘水質、提高水產動物生長性能的效果[9-11]。因此,芽孢桿菌以其適應性強、耐加工、生長快、分布廣,且具有較多的生物學特性,如分泌多種生物酶、降解亞硝酸鹽和氨態(tài)氮、產生抑制有害菌生長的代謝產物等,被廣泛用于飼料添加劑及水質改良中。
筆者在點種法和牛津杯法的基礎上進行拮抗株篩選方法的改進,從吉富羅非魚(O.niloticusGIFT)腸道中分離篩選出一株安全、顯著抑制無乳鏈球菌(Streptococcusagalactiae)的土著芽孢桿菌,進行亞硝酸鹽降解能力、產酶能力、藥敏性等生物學特性檢測以及最佳抑菌活性與發(fā)酵時間的關系研究,旨在為當地羅非魚鏈球菌病防治提供良好的菌種資源及該菌株的發(fā)酵生產提供理論依據。
1.1.1 菌種
指示菌為本實驗室分離的無乳鏈球菌S-2,來自福建鏈球菌發(fā)病癥狀典型的瀕死羅非魚魚體。待分離樣品來自福建漳州,主要針對第1年羅非魚鏈球菌病高發(fā),第2年仍然養(yǎng)殖羅非魚品種的養(yǎng)殖池塘。共采集6口池塘的底泥、水樣及健康羅非魚腸道樣品共計18份,采集地點為漳州市區(qū)、漳浦縣、云霄縣、長泰縣、南靖縣。
1.1.2 培養(yǎng)基
LB培養(yǎng)基、新鮮一次性兔血瓊脂平板、蛋白酶檢測培養(yǎng)基、纖維素酶檢測培養(yǎng)基、淀粉酶檢測培養(yǎng)基[12]、發(fā)酵培養(yǎng)基。
發(fā)酵培養(yǎng)基:玉米面5 g/L,蛋白胨10 g/L,蔗糖4 g/L,磷酸二氫鉀1 g/L,七水合硫酸亞鐵0.25 g/L,七水合硫酸鎂0.5 g/L,一水合硫酸錳0.25 g/L,碳酸鈣1 g/L,消泡劑0.5 mL/L;pH 7.0~7.5。
1.2.1 菌株的分離
(1)底泥樣:取約1 g池塘泥樣溶解在10 mL無菌水中振蕩均勻,85 ℃水浴加熱15 min。
(2)水樣:取20 mL池塘水樣,85 ℃水浴加熱15 min。
(3)羅非魚腸道樣品:用鑷子將生理鹽水中的羅非魚腸道取出至10 mL無菌水中充分研磨,85 ℃水浴加熱15 min。
各樣品均梯度稀釋后涂平板,37 ℃培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)。將平板生長的菌株分離純化作為供試菌株。
1.2.2 溶血性檢測
溶血試驗是檢測供試菌株是否對動物紅細胞產生溶解反應,是益生菌安全性評價的一部分。將供試菌株接種到新鮮的兔血瓊脂平板上,放于37 ℃培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng),篩選無溶血性的菌株進行下一步檢測。
1.2.3 拮抗株的篩選
(1)指示菌涂布平板法:無乳鏈球菌接種于LB液體培養(yǎng)基中。37 ℃,180 r/min搖床培養(yǎng)24 h,取100 μL無乳鏈球菌菌液按10-2稀釋度稀釋并涂板,將供試菌株點于平板上,37 ℃培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)。觀察抑菌圈,初步篩選出有抑菌效果的菌株。
(2)指示菌倒平板法:將無乳鏈球菌及初步篩選的菌株分別接種于LB液體培養(yǎng)基,37 ℃,180 r/min搖床培養(yǎng)24 h。為了找到無乳鏈球菌菌液最適接種密度及培養(yǎng)基最適澆注量,設置接種密度為106、107cfu/mL和108cfu/mL,接種量均為50 μL,分別加入到還未凝固的LB固體培養(yǎng)基中(20、25 mL和30 mL),搖勻,傾倒至已放有牛津杯的平板中,待培養(yǎng)基凝固取出牛津杯。向孔中加入過濾除菌的發(fā)酵上清液100 μL,37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h觀察抑菌圈大小。
(3)拮抗株抑菌物質的抑菌活性對溫度的耐受性:取發(fā)酵液10 mL,過濾除菌保留上清液,分別于60、80、100、120 ℃處理30 min,自然冷卻后指示菌倒平板法測抑菌活性。以37 ℃培養(yǎng)不做任何處理的發(fā)酵上清液做對照。
1.2.4 菌種鑒定
1.2.4.1 菌體形態(tài)觀察
革蘭氏染色法觀察菌體形態(tài)。
1.2.4.2 生理生化鑒定
方法參照伯杰氏細菌鑒定手冊[13]進行。
1.2.4.3 16S rRNA 基因測序
利用細菌通用引物27F/1492R進行靶基因的擴增,16S rRNA基因PCR引物:正向引物27F,5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′,對應于大腸桿菌(Escherichiacoli)第8~27堿基位置;反向引物P6,5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′,對應于大腸桿菌第1492~1510堿基位置。目的條帶為1.5 kb,0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物并測序,在美國國立生物技術信息中心數據庫對序列進行比對,得到未知菌與基因庫中已知菌的相似度,用鄰接法進化樹分析該菌的系統(tǒng)發(fā)育地位。
1.2.5 最佳抑菌活性與發(fā)酵時間關系的測定
將待測菌株進行30 L發(fā)酵罐發(fā)酵培養(yǎng),每隔4 h取發(fā)酵液鏡檢芽孢產生情況并檢測抑菌活性,分析發(fā)酵時間與抑菌活性的關系。
1.2.5.1 種子液制備
一級種子液:挑取菌株單菌落接種于5 mL LB液體培養(yǎng)基,37 ℃,180 r/min搖床培養(yǎng)24 h。
二級種子液:吸取1 mL一級種子液于100 mL LB液體培養(yǎng)基,37 ℃,180 r/min培養(yǎng)24 h。
1.2.5.2 發(fā)酵罐發(fā)酵
將上述制備的二級種子液以1%的接入量接入發(fā)酵罐進行發(fā)酵,發(fā)酵溫度37 ℃,轉速70~100 r/min,灌壓0.5 Mpa,通風比1∶0.6~1∶0.4,pH5.5~7.5,發(fā)酵時間16~20 h。
1.2.6 生物酶檢測
將待測菌點種于蛋白酶檢測平板上,以透明圈大小顯示該菌株產蛋白酶活力。
將待測菌點種于纖維素酶檢測平板上,培養(yǎng)24 h后,在培養(yǎng)基中倒入剛果紅溶液(1 mg/mL)染色10~15 min,倒掉剛果紅溶液,加入1 mol/L的NaCl溶液,15 min后倒掉NaCl溶液。根據透明圈大小判斷纖維素酶活力。
將待測菌點種于淀粉酶檢測平板上,培養(yǎng)24 h后固體碘熏蒸著色。具體方法:取1 g固體碘均勻平鋪在白紙上,將培養(yǎng)好的平皿倒置在固體碘上熏蒸30 s,并均勻轉動。淀粉遇碘變?yōu)樗{色,根據透明圈大小判斷淀粉酶活力大小。
1.2.7 亞硝酸鹽降解試驗
1.2.7.1 亞硝酸鹽標準曲線
配制不同質量濃度的亞硝酸鹽溶液(0~4 mg/L),置于酶標儀下測量550 nm處吸光值(OD550),作亞硝酸鹽質量濃度與OD550的對應性標準曲線。
1.2.7.2 亞硝酸鹽檢測培養(yǎng)基
蒸餾水50 mL,魚料0.05 g,2.5 mg/L的亞硝酸鈉溶液50 μL。121 ℃,高壓蒸汽滅菌20 min。試驗組接種50 μL菌液(終密度為105cfu/mL),對照組加50 μL生理鹽水,每組3個平行置于37 ℃,180 r/min搖床培養(yǎng),格里斯試劑法測定OD550,用標準曲線計算對應亞硝酸鹽質量濃度。
1.2.8 藥敏試驗及安全性試驗
1.2.8.1 藥敏試驗
采用紙片擴散法對待測菌株進行藥物敏感性測定。待測菌株接種于LB液體培養(yǎng)基,37 ℃,180 r/min培養(yǎng)24 h,菌液密度約108cfu/mL,取10-2稀釋度100 μL菌液涂布平板,取藥敏片均勻放于平板中,37 ℃培養(yǎng)16~18 h,觀察抑菌圈。
1.2.8.2 安全性檢測
參考文獻[14],采用背部肌肉注射法進行菌種安全性檢測。設對照組和試驗組,每組3個平行。每個平行組10尾羅非魚,平均質量為(8.3±1.4) g。試驗組每尾羅非魚分別注射1×109、1×108、1×107cfu/mL的菌液200 μL,對照組注射同等量的生理鹽水,正常飼喂7 d,觀察羅非魚的死亡情況。
1.2.9 菌株LT3-1對無乳鏈球菌的影響
試驗用魚為吉富羅非魚,采用循環(huán)水養(yǎng)殖,規(guī)格一致的羅非魚120尾,分成對照組和試驗組,每組3個平行,每組平行20尾,初始體質量(46.91±0.17) g。對照組只飼喂飼料,試驗組飼喂添加菌株LT3-1的飼料,菌粉活菌含量1010cfu/g,添加量0.05%。養(yǎng)殖4周后采取攻毒試驗,腹腔注射密度為1×108cfu/mL的無乳鏈球菌S-2菌液0.2 mL,每日觀察并統(tǒng)計試驗魚的發(fā)病情況,記錄攻毒后14 d內的死亡率。
經過分離純化18份樣品,初步得到77株芽孢菌。池水、底泥及健康羅非魚腸道中各得到20、29、28株芽孢菌(表1)。
表1 樣品的菌株分離數量
經過血瓊脂板培養(yǎng),共篩選到30株無溶血性芽孢菌,并用于抑菌能力檢測。
試驗發(fā)現,指示菌的接種密度以及平板培養(yǎng)基的薄厚影響抑菌圈的大小。因此本試驗進行了指示菌的接種密度及平板培養(yǎng)基澆注量(20、25、30 mL)的探索。最終確定25 mL培養(yǎng)基與1×107cfu/mL指示菌50 μL混勻制板,得到的抑菌圈最清晰。經篩選,5株芽孢菌具有抑制無乳鏈球菌的能力,其中菌株LT3-1抑菌效果最強且穩(wěn)定,抑菌圈平均直徑可達(25.30±0.57) mm(圖1),因此,對菌株LT3-1進行進一步研究。試驗發(fā)現,菌株LT3-1抑菌物質活性隨著溫度的升高(60、80、100、120 ℃)逐漸減弱,與不做任何處理的發(fā)酵上清液對照比較,抑菌圈直徑自26.65 mm降至10.10 mm,但依然存在抑菌活性(圖2)。說明菌株LT3-1抑菌物質在一定程度上可以耐受較高的溫度,此特點使該菌在發(fā)酵液后處理工藝上具有明顯優(yōu)勢。
圖1 菌株LT3-1發(fā)酵上清液抑菌活性使用SCAN 1200,6.1.3.0版分析的樣品.
圖2 溫度對菌株LT3-1抑菌物質活性的影響
2.4.1 形態(tài)觀察
菌株LT3-1在37 ℃,LB平板上生長為扁平、邊緣不整齊的白色菌落。革蘭氏染色陽性,長桿狀(圖3a)。芽孢形態(tài)見圖3b,菌體膨大,中間呈現空心狀。
2.4.2 生理生化測定及16S rRNA基因序列鑒定
菌株LT3-1與枯草芽孢桿菌模式菌株DSM10T[13]的生理生化指標測定結果見表2。由表2可見,菌株LT3-1與枯草芽孢桿菌模式菌株DSM10T的測定結果相同。
菌株LT3-1 16S rRNA基因測序后,得到的序列長度為1420 bp,比對結果表明,該菌與枯草芽孢桿菌BGSC 3A28最近,相似性為99%。采用Mega 4.0軟件鄰接法構建16S rRNA基因系統(tǒng)發(fā)育樹(圖4),菌株LT3-1與枯草芽孢桿菌模式種DSM10T聚在同一分支,結合生理生化結果,菌株LT3-1鑒定為枯草芽孢桿菌,16S rRNA基因GenBank序列號為MG719524。
表2 菌株LT3-1生理生化特征
圖3 菌株LT3-1鏡下形態(tài)示意a.普通狀態(tài)下的菌體; b.產生芽孢的菌體.
圖4 16S rRNA基因系統(tǒng)發(fā)育分析
枯草芽孢桿菌LT3-1隨著發(fā)酵時間的增加抑菌活性增加,發(fā)酵4 h后,上清液出現較弱抑菌活性(圖5)。16~20 h時抑菌活性較強,雖有上升,但是上升程度較小,基本保持穩(wěn)定。經顯微鏡觀察,枯草芽孢桿菌LT3-1發(fā)酵16 h出孢完全,因此,出孢率與抑菌活性存在一定的正相關性。
試驗表明,枯草芽孢桿菌LT3-1可以水解酪蛋白,形成直徑為9 mm的透明圈(圖6a),說明該菌具有分泌蛋白酶的能力;淀粉平板遇碘顯藍色,而菌落周圍出現直徑9 mm透明圈(圖6b),說明該菌具有分泌淀粉酶的能力;纖維素酶平板經剛果紅染色,菌落周圍形成直徑12 mm的透明圈(圖6c),說明該菌具有水解羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)的能力,可以分泌纖維素酶。
圖5 枯草芽孢桿菌LT3-1抑菌活性及出孢率隨發(fā)酵時間的變化
圖6 枯草芽孢桿菌LT3-1水解酪蛋白(a)、淀粉(b)及羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)(c)結果
經檢測,密度為105 cfu/mL的枯草芽孢桿菌LT3-1可以顯著降低亞硝酸鹽水平,6 h即可將亞硝酸鹽質量濃度由2.5 mg/L降至0.03 mg/L(圖7),亞硝酸鹽降解率可以達98.8%,凈水效果顯著(P<0.05)。
2.8.1 藥敏試驗
試驗檢測了枯草芽孢桿菌LT3-1對7個類型9種抗生素的敏感性。檢測結果表明,枯草芽孢桿菌LT3-1對所檢測的9種抗生素紅霉素、青霉素、氨芐西林、頭孢噻肟、四環(huán)素、氧氟沙星、萬古霉素、氯霉素、利福平均表現為敏感(表3)。
圖7 枯草芽孢桿菌LT3-1對亞硝酸鹽的降解效果
表3 枯草芽孢桿菌LT3-1藥物敏感試驗結果
2.8.2 安全性試驗
經過1周的安全性試驗,結果表明,肌肉注射密度為1×107cfu/mL的枯草芽孢桿菌LT3-1菌液后,羅非魚可以正常存活,無異?,F象。
攻毒試驗第6 d后出現死亡情況,死亡高峰期出現在攻毒后的第7~9 d(圖8)。對照組的成活率為(73.33±6.67)%,顯著低于試驗組(93.33±3.33)%,(P<0.05)。表明枯草芽孢桿菌LT3-1對無乳鏈球菌感染吉富羅非魚的拮抗效果顯著。
圖8 攻毒14 d內試驗魚的存活率
3討 論
羅非魚鏈球菌病病原主要為海豚鏈球菌(S.iniae)和無乳鏈球菌,2009年后主要流行病原為無乳鏈球菌,有新的株型和克隆系出現[15-17],但并未發(fā)現有菌種變化。因此本研究以羅非魚無乳鏈球菌為指示菌株進行拮抗菌的篩選。
劉觀斌等[9]篩選出1株拮抗菌——蠟樣芽孢桿菌NY5,對無乳鏈球菌的抑制圈直徑達26.67 mm,對50 mg/L的亞硝酸鹽氮12 h去除效率達到100%。李仕成[5]篩選到1株解淀粉芽孢桿菌J4,對無乳鏈球菌的抑制圈直徑達16 mm,并且發(fā)現,飼料中添加107cfu/g和108cfu/g的解淀粉芽孢桿菌J4,可顯著降低餌料系數,提高羅非魚的質量增加率、生長性能、非特異性免疫力及抗氧化能力。由此可見,芽孢桿菌可同時具備拮抗無乳鏈球菌和凈水、促生長、提高免疫力的功能。本研究通過體內和體外兩種方式對篩選到的枯草芽孢桿菌LT3-1的拮抗無乳鏈球菌效果進行了分析,體外抑菌圈直徑達(25.30±0.57) mm;體內動物試驗表明,添加枯草芽孢桿菌LT3-1的試驗組羅非魚攻毒后存活率達93.33%,顯著高于對照組(73.33%)(P<0.05)。枯草芽孢桿菌LT3-1具備快速降解水體亞硝酸鹽的能力,2.5 mg/L的亞硝酸鹽氮6 h降解率達98.8%,高于枯草芽孢桿菌HAINUP40[18]的降亞硝酸鹽能力(12 h亞硝酸鹽去除率94.12%)。枯草芽孢桿菌LT3-1對水產動物的生長性能、免疫力及抗氧化能力方面的研究還有待開展。
益生菌對病原菌的拮抗作用方式并不相同。乳酸菌可通過分泌有機酸降低周圍環(huán)境pH或分泌過氧化氫、雙乙酰、細菌素等代謝產物達到抑制病原菌的效果[19-20]。有些芽孢桿菌也可以通過分泌有機酸抑制病原菌如凝結芽孢桿菌。但是大多數芽孢桿菌一般通過分泌脂肽類、聚酮類、蛋白類抑菌物質發(fā)揮對病原菌的抑菌作用。連燕萍[21]研究表明,解淀粉芽孢桿菌MG-3的抑菌物質L-1為脂肽類抗生素IturinA。分離自海參腸道的枯草芽孢桿菌HS-A38分泌的抑菌物質為直鏈抗菌脂肽,主要組分為桿菌霉素Bacillomycin D[22-24]。陳輝[7]發(fā)現1株諾卡氏菌可以顯著抑制海豚鏈球菌的生長,其抑菌物質耐高溫,對蛋白酶敏感,具有酸堿穩(wěn)定性,硫酸銨沉淀試驗證明為蛋白質類物質。本研究中篩選得到的枯草芽孢桿菌LT3-1的抑菌物質可以耐受較高溫度。其過濾除菌后的發(fā)酵上清液具有顯著的抑菌活性,說明枯草芽孢桿菌LT3-1對無乳鏈球菌的抑制作用并不是通過營養(yǎng)競爭而是通過分泌抑菌物質實現的,其抑菌物質的主要組分需進一步研究。其次,該菌發(fā)酵0~4 h時,發(fā)酵上清液抑菌活性雖然有提高但是處于較弱的水平,發(fā)酵4~16 h為對數期,其上清液抑菌活性明顯增強,在發(fā)酵16 h時芽孢產生完全,達到穩(wěn)定期,其抑菌活性也達到最大,推測該菌的抑菌物質可能為次級代謝產物,可進行發(fā)酵生產獲取代謝產物,建議發(fā)酵終點為16 h。
溶血是致病菌的致病機理之一,與動物安全性共同被認為是益生菌安全性評價的重要方面[25-27]。諸多學者把溶血性、常見抗生素敏感性及對宿主的安全性納為安全性評估指標中。王曉琳等[28]研究表明,芽孢桿菌BZ5株和溶藻弧菌(Vibrioalginolyticus)VZ5株均未表現出溶血特征,且對多數常見抗生素敏感或中度敏感。在106cfu/mL菌液密度下,兩株菌未對凡納濱對蝦(Litopenaeusvannamei)表現出明顯的毒害作用。本研究篩選到的枯草芽孢桿菌LT3-1亦無溶血現象,對檢測的9種抗生素均敏感,在107cfu/mL菌液注射密度下對羅非魚安全。因此,該菌株可以應用在水產養(yǎng)殖中。
綜上所述,篩選自吉富羅非魚腸道的枯草芽孢桿菌LT3-1對無乳鏈球菌的抑菌圈直徑達(25.30±0.57) mm,攻毒后,飼喂含枯草芽孢桿菌LT3-1飼料的羅非魚存活率顯著高于對照組(P<0.05)。該菌發(fā)酵16 h抑菌活性最強,其抑菌物質可以耐受較高溫度??莶菅挎邨U菌LT3-1具有分泌蛋白酶、淀粉酶、纖維素酶的能力,可以在提高餌料利用率、維護腸道消化健康方面發(fā)揮作用;該菌具有快速降低水體亞硝酸鹽水平的能力;該菌分離自健康羅非魚腸道,無溶血,對羅非魚安全可靠,可以作為當地羅非魚無乳鏈球菌防控及凈化水質方面的良好材料。