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        TRIM21調(diào)控人結(jié)直腸癌細胞增殖分子機制研究*

        2019-06-10 08:51:56柯東平毛俊倩郭甲民馬龍安
        陜西醫(yī)學雜志 2019年6期
        關鍵詞:結(jié)構(gòu)域直腸癌陰性

        柯東平,毛俊倩,劉 琪,郭甲民,馬龍安△

        1.陜西省腫瘤醫(yī)院普外科 (西安710061);2.陜西省楊凌示范區(qū)醫(yī)院普外科(楊凌712100)

        結(jié)直腸癌(Colorectal cancer, CRC)具有高發(fā)病率、高病死率等特點。國際癌癥研究中心(IARC)在2018年9月發(fā)布的全球癌癥統(tǒng)計數(shù)據(jù)顯示,結(jié)直腸癌在所有癌癥中發(fā)病率排在第三位,癌癥相關病死率排名第二位。腫瘤細胞的增殖、生長、浸潤與許多基因的突變、異常表達密切相關,研究CRC中相關分子機制并找尋有效分子標記有利于CRC的及早診斷和治療。TRIM21是三元基序蛋白(Tripartite motif-containing protein, TRIM)家族成員,該家族一般含有RING結(jié)構(gòu)域,具有E3泛素連接酶活性。人類的TRIM21位于第11號染色體上11p15.4區(qū)域,共475個氨基酸,包含四個結(jié)構(gòu)域:RING結(jié)構(gòu)域、B-box結(jié)構(gòu)域、Coiled-coil結(jié)構(gòu)域和PRYSPRY結(jié)構(gòu)域。TRIM21最早在系統(tǒng)性紅斑狼瘡中被鑒定。后來的研究表明TRIM21與多種腫瘤的發(fā)生也密切相關[1-3]。研究發(fā)現(xiàn),TRIM21在人腸癌中表達顯著降低,TRIM21缺失小鼠結(jié)腸癌的發(fā)生更明顯[5]。本研究將進一步探討TRIM21在結(jié)直腸癌中的作用機制,通過干擾結(jié)直腸癌細胞中的TRIM21表達,明確TRIM21對結(jié)直腸癌細胞增殖、凋亡及TGF-β1-Smad2/3信號通路活化的影響。

        材料與方法

        1 試劑與材料 RPMI-1640培養(yǎng)基(Gibco,31800-014);胎牛血清(BI,04-001-1ACS);MTT檢測試劑盒(萬類生物,WLA021a);細胞凋亡檢測試劑盒(萬類生物,WLA001c);Super M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶(BioTeke,PR6502);2×Power Taq PCR MasterMix(BioTeke,PR1702);SYBR Green(Solarbio,SY1020);TRIM21抗體(Bioss,bs-0635R);TGF-β1抗體(萬類生物,WL01076R);p-Smad2/3抗體(萬類生物,WL02305);Smad2/3抗體(萬類生物,WL01520)CyclinD1抗體(萬類生物,WL01435a);羊抗兔IgG-HRP(萬類生物,WLA023);β-actin抗體(萬類生物,WL01845)。

        2 實驗方法

        2.1 細胞培養(yǎng):人結(jié)直腸癌細胞HCT116細胞株用含有10 %胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基,在37 ℃、5 % CO2、飽和濕度條件下的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

        2.2 TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染:HCT116細胞常規(guī)培養(yǎng)至細胞密度為70 %進行轉(zhuǎn)染。在室溫下混合無血清培養(yǎng)基稀釋的Lipofectamine 2000和siRNA干擾片段或陰性對照,靜置15 min。將上述溶液緩慢滴入培養(yǎng)的HCT116細胞中,不斷輕輕振蕩,置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后換液繼續(xù)培養(yǎng)。細胞共分三組:未轉(zhuǎn)染組、陰性對照(NC)組、TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組。

        2.3 MTT檢測細胞增殖:分別于轉(zhuǎn)染后24 h、48 h、72 h和96 h收集各組細胞,棄去培養(yǎng)基,每孔加入20 μl MTT染色液,置于37 ℃、5 % CO2培養(yǎng)箱中孵育4 h。4 h后小心吸去上清,加入150 μl DMSO,避光靜置10 min后用酶標儀測定570 nm處OD值。

        2.4 Annexin V-FITC/PI法檢測細胞凋亡:轉(zhuǎn)染后48 h收集各組細胞,離心收集細胞沉淀,用PBS洗滌兩次,每管細胞用500 μl Binding Buffer重懸,依次加入5 μl Annexin V-FITC/PI和 10 μl PI混勻,室溫避光孵育15 min后上流式細胞儀檢測。

        2.5 實時熒光定量PCR:分別于轉(zhuǎn)染后24 h、48 h收集細胞,加入TRIpure裂解液提取總RNA,Nano 2000測定RNA濃度。上述RNA樣本進行反轉(zhuǎn)錄得到對應的cDNA進行后續(xù)實驗。本實驗利用ERxicycler TM96熒光定量儀進行熒光定量分析,引物序列如下:TRIM21-F:5’- GCTCCAGGTGGCATTAGG-3’;TRIM21-R:5’-TGCACAAACTCTGCGTGA-3’;TGF-β1-F:5’-CCTGCCTCCGCTCCTAGT-3’;TGF-β1-R:5’-CATGGAAGATGGCAAATTAC-3’;Smad2-F:5’-CAGTGTTAGATACCCTCTTCGT-3’;Smad2-R:5’-TTGTTCATGTCCACAGACTAGATA-3’;Smad3-F:5’-AGAGGAGTGCTGGTGACTGGAT-3’;Smad3-R:5’-GGAAGGTGCTGAAGACAAGGAT-3’;Cyclin D1-F:5’-GAACACGGCTCACGCTTAC-3’;Cyclin D1-F:5’-CGATACACACAACATCCAGG-3’;β-actin-F:5’-CACTGTGCCCATCTACGAGG-3’;β-actin-R:5’-TAATGTCACGCACGATTTCC-3’。

        2.6 Western blot:轉(zhuǎn)染后48 h收集細胞加入裂解液抽提總蛋白,BCA法對蛋白進行定量。取40 μg蛋白進行SDS-PAGE,電泳結(jié)束后轉(zhuǎn)膜、封閉;加入相應一抗4 ℃孵育過夜,二抗37 ℃孵育45 min,之后進行ECL底物顯色反應,暗室曝光,膠片用Gel-Pro-Analyzer軟件分析光密度值。

        結(jié) 果

        1 TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染效果驗證 在轉(zhuǎn)染后24 h和48 h分別通過實時熒光定量PCR和Western blot檢測HCT116細胞中的TRIM21在mRNA和蛋白水平上的表達,結(jié)果顯示,與陰性對照組相比,TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組中TRIM21在mRNA水平和蛋白水平上的表達均顯著下降,差異具有統(tǒng)計學意義(圖1)。

        圖1轉(zhuǎn)染后細胞中的TRIM21表達(A:Real-time PCR檢測TRIM21在mRNA水平上的相對表達量;B、C:Western blot檢測TRIM21在蛋白水平上的相對表達量與陰性對照組比,**P<0.01)

        2 TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染后的細胞增殖 分別于轉(zhuǎn)染24 h、48 h、72 h和96 h后采用MTT檢測HCT116細胞的增殖情況,結(jié)果顯示(圖2),24 h、48 h、72 h和96 h時TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組細胞活力均高于陰性對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。Real-time PCR檢測細胞中增殖相關蛋白Cyclin D1表達,結(jié)果顯示(圖3),與陰性對照組比,TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組Cyclin D1的相對表達量明顯升高,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

        3 TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染后的細胞凋亡 細胞轉(zhuǎn)染48 h后采用Annexin-V/PI法檢測細胞凋亡情況,結(jié)果顯示(圖4),TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組細胞凋亡比例為(6.27±0.05)%,顯著低于陰性對照組的(7.76±0.12)%,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),見表1。

        圖2MTT檢測轉(zhuǎn)染后的細胞增殖 (與陰性對照組比較,*P<0.05,**P<0.01)

        圖3Cyclin D1的相對表達量 (A:Real-time PCR檢測Cyclin D1在mRNA水平上的相對表達量;B、C:Western blot檢測Cyclin D1在蛋白水平上的相對表達量;與陰性對照組比,**P<0.01)

        表1 轉(zhuǎn)染后的細胞凋亡比例

        注:與陰性對照組比,*P<0.01

        4 TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染后細胞TGF-β1-Smad2/3通路活化情況 在轉(zhuǎn)染后48 h,采用實時熒光定量PCR和Western blot檢測TGF-β1、Smad2、Smad3的表達量,結(jié)果顯示(圖5),與陰性對照組相比TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組的TGF-β1在mRNA和蛋白水平的表達量均有所下降,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01);各組間Smad2/3在mRNA和蛋白水平的表達沒有差異,但采用Western blot檢測Smad2/3的磷酸化,結(jié)果顯示TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組的p-Smad2/3水平低于陰性對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

        圖4 流式細胞術檢測轉(zhuǎn)染后的細胞凋亡(A:未轉(zhuǎn)染組;B:陰性對照組;C:TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染組)

        圖5TRIM21 siRNA轉(zhuǎn)染后HCT116細胞TGF-β1-Smad2/3通路相關蛋白表達 (A:Real-time PCR檢測TGF-β1、Smad2和Smad3在mRNA水平上的相對表達量;B、C:Western blot檢測TGF-β1、Smad2/3、p-Smad2/3在蛋白水平上的相對表達量;與陰性對照組比,**P<0.01)

        討 論

        目前的研究已經(jīng)證實,TRIM21在多種癌癥中存在異常表達,在不同的癌癥中扮演不同的角色。在CRC中,有研究曾報道了TRIM21與結(jié)腸炎相關結(jié)腸癌的發(fā)生[4]、CRC細胞順鉑敏感性[3]相關。本研究在此基礎上探討了TRIM21與CRC細胞增殖、凋亡的相關性,結(jié)果顯示在HCT116細胞中干擾TRIM21的表達使HCT116細胞增殖能力增強,同時凋亡細胞比例下降,說明TRIM21在CRC中可能發(fā)揮類似抑癌基因的作用,沉默TRIM21的表達使腫瘤細胞增殖能力進一步增強。此外,轉(zhuǎn)染TRIM21 siRNA的細胞中增殖相關蛋白Cyclin D1的表達也顯著升高。

        TGF-β是一類多功能的細胞因子,通過與受體結(jié)合發(fā)揮功能。通常TGF-β1首先與TGF-βRⅡ結(jié)合,然后再與TGF-βRⅠ結(jié)合,形成的具有活性的復合物可以磷酸化Smads蛋白,如Samd1、Smad2、Smad3、Smad5、Smad8等,它們與co-Smad(Smad4)結(jié)合形成復合體,該復合體轉(zhuǎn)位至細胞核可以調(diào)控下游靶基因的轉(zhuǎn)錄[5]。TGF-β1-Smads通路是腫瘤中較為經(jīng)典的信號通路,在不同類型、不同發(fā)展階段的腫瘤中功能不同,與腫瘤細胞的增殖、轉(zhuǎn)移能力密切相關。一方面,TGF-β1誘導周期依賴性激酶(Cycle dependent kinase, CDK)抑制劑p15的合成,阻止CDK和Cyclin的作用,抑制細胞增殖[6];另一方面,在腫瘤的發(fā)展晚期,TGF-β1信號通路誘導上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化,促進腫瘤的侵襲和遷移[7]。在CRC發(fā)展期間,TGF-β1的功能也存在類似的變化[8]。

        有文獻曾報道,TRIM21正調(diào)控TGF-β信號通路[9]。本研究主要探討TRIM21通過TGF-β1通路影響CRC增殖的機制。研究表明,在CRC早期,BAG-1通過抑制TGF-β1促進腫瘤細胞存活[10];阿司匹林通過誘導TGF-β1抑制CRC細胞增殖[11]。本研究中,在HCT116細胞中轉(zhuǎn)染TRIM21 siRNA后,細胞中的TGF-β1表達量顯著下降,同時Smad2/3的磷酸化水平降低,說明干擾TRIM21的表達可以抑制TGF-β1—Smad2/3通路的活化,同時Western blot結(jié)果顯示細胞增殖相關蛋白Cyclin D1的表達水平也明顯下降,Cyclin D1是由p-Smad2/3調(diào)控的下游基因之一,提示TRIM21可能通過調(diào)控TGF-β1—Smad2/3通路的活化水平進而影響增殖相關蛋白的表達,從而影響CRC細胞增殖和凋亡,參與CRC發(fā)展進程。

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