馬珂,徐會友,趙飛,張健,江繼鵬,代晨,王仁杰,陳旭義△
新生兒缺血缺氧性腦?。℉IE)是圍生期常見的神經(jīng)系統(tǒng)疾病,嚴重影響嬰兒的神經(jīng)發(fā)育,也是全球新生兒死亡的重要原因之一[1]。流行病學顯示,HIE在發(fā)達國家的發(fā)病率約為活產(chǎn)兒的1‰~3‰,在發(fā)展中國家則高達活產(chǎn)兒的26‰,約有20%~25%的患兒在新生兒期死亡,25%的患兒伴有永久性的神經(jīng)系統(tǒng)后遺癥[2],給社會和家庭帶來了沉重的負擔。HIE 病理改變主要是大腦血流動力學紊亂,進而引起原發(fā)性損傷和缺血再灌注損傷[3]。世界范圍內(nèi)對HIE 的醫(yī)學研究聚焦于開發(fā)新的有效的治療途徑,但當前仍以支持性對癥治療為主[4]。
胰島素樣生長因子-1(Insulin-like growth factor-1,IGF-1)是一種促生長肽類激素,是由70 多個氨基酸構(gòu)成的單鏈多肽。IGF-1 受體分布廣泛,IGF-1 與其特異性受體結(jié)合發(fā)揮促進細胞活性,增殖分化等作用[5]。已有研究表明,IGF-1在神經(jīng)再生與修復領(lǐng)域的研究初顯成效,可誘導神經(jīng)細胞增殖分化,在神經(jīng)營養(yǎng)、代謝調(diào)控、胚胎發(fā)育等方面具有廣闊的臨床應用前景[6-7]。本研究利用氯化鈷(Cobalt chloride,CoCl2)干預鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤PC12 細胞系,制備神經(jīng)細胞缺氧損傷模型,初步研究IGF-1對低氧所致PC12細胞凋亡的保護作用。
1.1 實驗材料 PC12細胞系購自北京北納創(chuàng)聯(lián)生物技術(shù)研究院,RPMI 1640培養(yǎng)基、胰蛋白酶、青霉素-鏈霉素、胎牛血清均購自Gibco,兔抗大鼠Bax、Bcl-2、Caspase-3、GAPDH、HIF-1α 多克隆抗體,HRP 標記山羊抗兔IgG 二抗均購自Proteintech,HIF-1α 抑制劑2-MeOE 購自Selleck,CoCl2購自Aladin,CCK-8 檢測試劑盒、TUNEL 細胞凋亡試劑盒購自Roche。
1.2 方法
1.2.1 PC12細胞的培養(yǎng) PC12細胞培養(yǎng)于RPMI 1640培養(yǎng)基(含10%胎牛血清,100 U/mL 青霉素和100 mg/L 鏈霉素)中,于37 ℃、5%CO2條件下進行培養(yǎng)傳代,2~3 d傳代1次。
1.2.2 IGF-1和CoCl2干預濃度篩選 取對數(shù)生長期的PC12細胞,以5×104/mL 的密度鋪于96 孔板中,37 ℃、5%CO2培養(yǎng)24 h 后,分別加入10、20、40、80μmol/L 的CoCl2溶液10μL,37 ℃、5%CO2條件下孵育8、16、24、32 h,向每個加樣孔中加入10μL CCK-8溶液,將培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4 h,用酶標儀測定在450 nm處的吸光度(A),計算細胞活力。細胞活力(%)=[A(加藥)-A(空白)]/[A(0 加藥)-A(空白)]×100%,得出干預最佳濃度。分別加入100、200、400μg/L 的IGF-1溶液10μL,再次放入37 ℃5%CO2條件下孵育24 h,參照上述方法檢測細胞活力,得出干預最佳濃度。
1.2.3 實驗分組 實驗分為對照組(未經(jīng)任何處理的PC12細胞)、CoCl2組(加入CoCl2干預)、CoCl2+IGF-1 組(用IGF-1預處理24 h后,再加入CoCl2)。
1.2.3.1 CCK-8 法檢測細胞活力 按上述分組進行干預,37 ℃、5%CO2條件下孵育24 h 后按照1.2.2 中的步驟計算各組細胞活力。
1.2.3.2 TUNEL 法檢測細胞凋亡 取對數(shù)生長期的PC12細胞接種于酪氨酸包被的玻片上,按上述分組對細胞進行干預24 h,4%的多聚甲醛溶液浸泡30 min。PBS 沖洗3 次,0.1%Triton X-100 透化2 min,PBS 洗滌2 次,加入TUNEL 混合液于37 ℃避光孵育60 min,Streptavidin-HRP 標記30 min,DAB 顯色后封片固定,光學顯微鏡下隨機取3 個視野進行觀察并計數(shù),計算凋亡指數(shù)。凋亡指數(shù)(%)=TUNEL 陽性細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%。
1.2.3.3 Western blot檢測凋亡相關(guān)蛋白Bax、Bcl-2、Caspase-3的表達 取各組干預后24 h的細胞,預冷PBS清洗3次,細胞刮刀刮脫細胞,收集至離心管,1 000 r/min 離心5 min,冰上按照1×107個細胞/mL加入配制好的細胞裂解液,反復吹打至蛋白析出,4 ℃、14 000 r/min離心10 min,取上清即為蛋白提取物。BCA法進行蛋白定量,10%SDS-PAGE凝膠電泳,轉(zhuǎn)NC 膜。雜交步驟如下:5%脫脂牛奶封閉NC 膜1 h,PBST 洗滌10 min×3 次,然后室溫下與兔抗鼠一抗Bcl-2(1∶1 000)、Bax(1∶500)、Caspase-3(1∶1 000)、GAPDH(1∶2 000)雜交反應1 h,PBST洗滌10 min×3次。再將NC膜與山羊抗兔IgG二抗(1∶5 000)雜交反應1 h,PBST洗滌10 min×3 次。NC 膜滴加等量A、B混合顯影液,凝膠成像系統(tǒng)進行顯影,使用Image J 軟件進行目的蛋白和內(nèi)參的灰度值測定,得出目的蛋白相對灰度值。
1.2.4 IGF-1對HIF-1α表達的影響 此部分實驗設CoCl2處理組、IGF-1+CoCl2處理組、2-MeOE2組(2-MeOE2 10μmol/L預孵化24 h后,再加入CoCl2)、2-MeOE2+IGF-1組(用IGF-1和2-MeOE2 10μmol/L預孵化24 h后,再加入CoCl2)。上述4組細胞處理結(jié)束后提取蛋白,參照1.2.3.3中的步驟,Western blot法檢測HIF-1α和Bax的表達。
1.3 統(tǒng)計學方法 數(shù)據(jù)用SPSS 22.0 及GraphPad 5.0 軟件分析。符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,2組間比較采用獨立樣本t 檢驗,多組間計量資料比較采用單因素方差分析或2×2析因設計方差分析,組間多重比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義
2.1 CoCl2及IGF-1對PC12細胞活力的影響 選用不同濃度的CoCl2對PC12 細胞進行不同時長的干預,CCK-8 結(jié)果顯示,同一作用時間,隨著干預濃度的增加,PC12的細胞活力逐漸下降;同一濃度下,隨著時間的延長,細胞活力仍是下降的。當40μmol/L作用24 h 時,細胞活力約下降至50%(圖1A),因此選用此濃度和作用時長制備細胞低氧模型進行后續(xù)研究。同樣,選取不同濃度的IGF-1對PC12細胞進行24 h 的預孵化,CCK-8 結(jié)果顯示,與對照組相比,200μg/L 的IGF-1 可明顯提高細胞活力,而當濃度達到400μg/L 時,細胞活力與200μg/L 差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖1B。因此,后續(xù)實驗選用200 μg/L 的IGF-1 作為干預濃度,對細胞進行預孵化。
2.2 IGF-1對PC12缺氧模型細胞存活的影響 3組細胞存活率差異有統(tǒng)計學意義(F=89.70,P<0.01),與對照組相比,CoCl2組細胞存活率下降;而經(jīng)IGF-1預處理后,CoCl2+IGF-1 組細胞存活率較CoCl2組明顯升高(P<0.01),見圖2A。光鏡下可見對照組細胞生長良好,CoCl2組細胞數(shù)量明顯減少,胞體變小,軸突縮短;而經(jīng)IGF-1 預處理后,CoCl2+IGF-1 組細胞數(shù)量較CoCl2組顯著增加,且軸突延長,見圖2B。
2.3 IGF-1 對PC12 細胞CoCl2誘導的凋亡的影響 TUNEL 染色結(jié)果示,CoCl2+IGF-1 組較CoCl2組TUNEL(+)細胞數(shù)顯著減少,TUNEL(+)細胞比例明顯降低,差異均有統(tǒng)計學意義,見圖3。
2.4 IGF-1對CoCl2誘導的PC12細胞凋亡相關(guān)蛋白表達的影響 Western blot 結(jié)果顯示,與對照組相比,CoCl2組抗凋亡蛋白Bcl-2 表達下調(diào)(P<0.05),促凋亡蛋白Bax、Caspase-3 表達上調(diào)(P<0.05);經(jīng)過IGF-1預處理后,CoCl2+IGF-1組較CoCl2組Bcl-2表達上調(diào),Bax、Caspase-3 表達下調(diào)(P<0.05)。見圖4、表1。
2.5 IGF-1 對HIF-1α 表達的抑制作用 Western blot 結(jié)果顯示,與CoCl2組相比,CoCl2+IGF-1 組和CoCl2+2-MeOE2 組HIF-1α 和Bax 蛋 白 表 達 降 低(P<0.05),兩者聯(lián)合應用時HIF-1α 蛋白表達降低(P<0.01);兩者具有交互作用;而CoCl2+2-MeOE2+IGF-1組與CoCl2+2-MeOE2組HIF-1α和Bax蛋白的表達差異無統(tǒng)計學意義。見圖5、表2。
Fig.2 The effect of IGF-1 on cell survival in PC12 hypoxic model圖2 IGF-1對PC12缺氧模型細胞存活的影響
Fig.3 The inhibitory effect of IGF-1 on the apoptosis of PC12 cells induced by CoCl2 observed by TUNEL staining圖3 TUNEL染色觀察IGF-1對CoCl2誘導的PC12細胞凋亡的抑制作用
Fig.4 The effect of IGF-1 on the expression of CoCl2-induced apoptosis-related proteins in PC12 cells detected by Western blot assay圖4 Western blot檢測IGF-1對CoCl2誘導的PC12細胞凋亡相關(guān)蛋白表達的影響
Tab.1 Comparison of relative expression levels of Bax,Bcl-2 and Caspase-3 proteins between three groups表1 各組相關(guān)蛋白相對表達量的比較 (n=3,±s)
Tab.1 Comparison of relative expression levels of Bax,Bcl-2 and Caspase-3 proteins between three groups表1 各組相關(guān)蛋白相對表達量的比較 (n=3,±s)
**P<0.01;a與對照組比較,b與CoCl2組比較,P<0.05
組別對照組CoCl2組CoCl2+IGF-1組F Bcl-2/GAPDH 0.844±0.027 0.283±0.004a 0.723±0.031ab 153.80**Bax/GAPDH 0.284±0.046 0.950±0.227a 0.546±0.046ab 70.67**Caspase-3/GAPDH 0.464±0.034 0.913±0.142a 0.768±0.022ab 83.88**
HIE 是圍生期常見的小兒神經(jīng)系統(tǒng)疾病,具有高致死率和高致殘率的特點,在HIE的治療方面,目前臨床并無療效顯著的治療方法,主流的治療方法包括神經(jīng)營養(yǎng)性藥物[8]、亞低溫療法[9]、干細胞移植[10]等多種途徑的聯(lián)合治療,單一的治療方法對該病治療效果非常有限,很難徹底治愈。因此,探索HIE 確切的致病機制,以此為依據(jù)研究一種安全有效的治療方法顯得尤為迫切。
Fig.5 Western blot assay showing HIF-1α and Bax expressions in four groups圖5 Western blot 檢測各組HIF-1α、Bax表達
Tab.2 Variance analysis of factorial design of relative expression levels of HIF-1α and Bax proteins between four groups表2 各組HIF-1α及Bax蛋白相對表達量的析因設計方差分析 (n=3,±s)
Tab.2 Variance analysis of factorial design of relative expression levels of HIF-1α and Bax proteins between four groups表2 各組HIF-1α及Bax蛋白相對表達量的析因設計方差分析 (n=3,±s)
*P<0.05,**P<0.01;a與CoCl2組比較,b與CoCl2+IGF-1 組比較,P<0.05
組別CoCl2組CoCl2+IGF-1組CoCl2+2-MeOE2組CoCl2+2-MeOE2+IGF-1組FIGF-1 F2-MeOE2 F交互HIF-1α/GAPDH 0.973±0.037 0.814±0.011a 0.206±0.014ab 0.250±0.025ab 6.942*932.048**21.890**Bax/GAPDH 1.007±0.059 0.804±0.008a 0.318±0.013ab 0.343±0.021ab 7.535*316.498**12.383**
筆者利用CoCl2干預PC12細胞系制造缺氧神經(jīng)損傷模型。CoCl2作為一種常用的缺氧誘導劑,已在多個領(lǐng)域成熟應用[11-12],例如肝癌細胞缺氧模型[13],神經(jīng)干細胞缺氧模型[14]等。通過對CoCl2不同作用濃度不同作用時長對細胞活力的影響分析,40μmol/L 作用24 h會使細胞活力降至50%左右,以上結(jié)果表明,40μmol/L CoCl2作用24 h 能夠較準確地模擬新生兒缺血缺氧性腦病時神經(jīng)損傷的程度,建立新生兒缺血缺氧性腦病細胞模型。IGF-1受體及受體后信號傳遞因子分布于整個大腦,IGF-1 通過作用于這些特異性受體來調(diào)節(jié)腦內(nèi)代謝以及神經(jīng)活性、線粒體功能等[15]。已有研究表明,IGF-1可促進神經(jīng)元的生成以及突觸的連接,但其具體作用機制仍需探索[16-17]。本研究利用IGF-1 干預CoCl2誘導的缺氧細胞模型,結(jié)果表明IGF-1能夠抑制CoCl2的毒性作用,增強PC12 細胞活力,并且上調(diào)Bcl-2,下調(diào)Bax,抑制低氧所致的細胞凋亡作用,并且應用2-MeOE2競爭性抑制HIF-1α,證實IGF-1是通過下調(diào)上游蛋白HIF-1 的轉(zhuǎn)錄活性來發(fā)揮其凋亡抑制作用的。
已有研究表明CoCl2可以通過穩(wěn)定HIF-1α誘導缺氧[18]。然而,CoCl2誘導缺氧條件下活性氧生成機制尚不清楚,但近些年有研究證實CoCl2可以增加細胞HIF-1α的表達[19-20],從而誘導細胞缺氧損傷。本次實驗發(fā)現(xiàn),CoCl2可以增加PC12 細胞HIF-1α 和Bax的表達,而當HIF-1α受到抑制時,Bax的表達也顯著下調(diào)。這些結(jié)果表明,CoCl2是通過HIF-1信號通路誘導缺氧條件下細胞凋亡的。進一步分析發(fā)現(xiàn),CoCl2+2-MeOE2+IGF-1 組與CoCl2+2-MeOE2 組HIF-1α 和Bax 蛋白的表達無明顯差異,提示2-MeOE2通過競爭性抑制HIF-1α的表達,而使IGF-1的干預對HIF-1α 的表達無影響。進一步證實了IGF-1通過抑制HIF-1α的表達,抑制缺氧條件的細胞凋亡,從而發(fā)揮其對PC12細胞的神經(jīng)保護作用。
綜上所述,本研究結(jié)果顯示IGF-1 可抑制CoCl2誘導的PC12 細胞凋亡,其神經(jīng)保護作用與HIF-1α/Bax 信號通路相關(guān)聯(lián)。HIE 發(fā)生發(fā)展過程中,IGF-1與HIF-1α等蛋白的表達與神經(jīng)元變性密切相關(guān),其中具體的作用位點及關(guān)聯(lián)模式將成為下一步探索的目標,這些都為HIE的臨床治療提供了新的思路,為新的藥物研發(fā)提供了理論依據(jù)。