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        青蒿琥酯通過誘導抗氧化酶活性抑制PC12細胞氧化損傷

        2019-04-29 06:51:10沈先敏
        天津中醫(yī)藥 2019年4期
        關(guān)鍵詞:琥酯青蒿培養(yǎng)液

        沈先敏,劉 恒

        (襄陽市中心醫(yī)院藥學部,湖北文理學院附屬醫(yī)院,襄陽 441021)

        隨著全球人口老齡化的加重,帕金森病、阿爾茨海默癥等神經(jīng)退行性疾病的發(fā)生風險升高。研究認為,線粒體功能障礙[1]、細胞凋亡[2]、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激[3]、氧化損傷[4-5]均介導了神經(jīng)退行性疾病的發(fā)生發(fā)展,然而,其中氧化應(yīng)激在該類疾病發(fā)生中關(guān)系最為密切。活性氧(ROS)為引起細胞內(nèi)氧化損傷的主要因素之一,包含超氧離子、羥自由基等[6]。ROS可通過氧化損傷脫氧核糖核酸(DNA)、膜脂及蛋白質(zhì)多種生物分子,引起細胞功能異常;而過氧化氫酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-PX)等抗氧化酶可以清除氧自由基,起到保護細胞氧化損傷的作用[7-8]。青蒿琥酯與青蒿素一樣對瘧疾的治療效果較顯著,而且還具有抗炎、免疫調(diào)節(jié)及抗氧化應(yīng)激的作用[9]。因此,本研究利用過氧化氫(H2O2)誘導神經(jīng)元細胞系PC12細胞氧化損傷模型,檢測青蒿琥酯對PC12細胞的保護作用并初步分析其作用機制。

        1 材料及方法

        1.1 腎上腺嗜鉻細胞瘤 PC12細胞由上海名勁生物科技有限公司提供(來源于美國ATCC細胞庫)。

        1.2 試劑及儀器 青蒿琥酯(百靈威科技有限公司,批號:88495-63-0,≥98%),達爾伯克改良伊格爾(DMEM)培養(yǎng)基及胎牛血清均購自美國Gibco公司,胰蛋白酶購自美國Thermo scientific公司(批號:R001100),CCK8試劑盒購自北京智杰方遠科技有限公司(批號:CK04),H2O2溶液(分析純)購自北京斯百匯生物科技有限責任公司,乳酸脫氫酶(LDH)、SOD、丙二醛(MDA)、CAT、GSH-PX 測定試劑盒均購自南京建成生物有限公司,2,7-二氯熒光素二乙酸酯(DCFH-DA)購自英國Abcam公司。BIORAD-550型酶標儀(美國伯樂公司),BBS-V800型單人超凈臺(山東鑫貝西公司),SPX-250型細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo公司),IN Cell Analyzer 2000高內(nèi)涵活細胞成像系統(tǒng)購自美國TFS公司。

        1.3 PC12細胞培養(yǎng) 采用完全DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)箱條件為37℃、5%CO2濃度,待細胞長滿至95%左右時用磷酸緩沖鹽溶液(PBS)清洗后加入胰酶消化,顯微鏡下觀察待細胞變圓后加入培養(yǎng)基終止消化,分裝于3個培養(yǎng)瓶進行傳代培養(yǎng)。

        1.4 青蒿琥酯對PC12細胞相對存活率的影響 取對數(shù)生長期細胞消化、離心、重懸后,以每毫升1×105個的細胞濃度接種于96孔板,每孔加入200 μL的細胞懸液,每組設(shè)置5個復孔。培養(yǎng)過夜待細胞貼壁后,每孔加入200 μL青蒿琥酯溶液,使其終濃度分別為 0.1、0.2、0.4、0.8、1.2、1.6 mmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,吸去舊培養(yǎng)液,每孔加入10 μL CCK8試劑,孵育1 h后采用酶標儀450 nm波長下測定OD值。實驗重復3次,細胞相對存活率(%)=(實驗組平均OD值/對照組平均OD值)×100%。

        1.5 CCK8法檢測青蒿琥酯對PC12細胞的保護 按照“1.4”項下接種細胞,細胞培養(yǎng)過夜后用于后續(xù)實驗。實驗分為6組:正常對照組、H2O2(200 μmol/L)誘導組、青蒿琥酯保護組(0.2、0.4、0.8、1.2 mmol/L),首先在保護組中加入相應(yīng)濃度青蒿琥酯溶液,2 h后再加入H2O2。培養(yǎng)24 h,吸去舊培養(yǎng)液,每孔加入10 μL CCK8試劑,孵育1 h后采用酶標儀450 nm波長下測定OD值。實驗重復3次,計算細胞相對存活率。

        1.6 LDH法檢測青蒿琥酯對PC12細胞的保護 取對數(shù)生長期細胞消化、離心、重懸后,以每毫升1×106個的細胞濃度接種于6孔板,每孔加入2 mL的細胞懸液。按照“1.5”項分組處理細胞后,收集各組細胞上清用于LDH含量測定,其操作步驟嚴格按照說明書進行。

        1.7 PC12細胞內(nèi)ROS及MDA水平檢測 按對數(shù)生長期細胞以每毫升1×105個濃度接種于經(jīng)多聚賴氨酸處理過的96孔板中,細胞分為正常對照組、H2O2(200 μmol/L)誘導組、青蒿琥酯保護組(0.2、0.4、0.8、1.2 mmol/L),細胞經(jīng)上述處理 24 h 后除去舊培養(yǎng)液,用無菌PBS清洗3次,加入1 mg/L的Hoechst33342避光染色30 min后,再加入10 μmol/L的DCFH-DA溶液繼續(xù)染色30 min。經(jīng)PBS清洗3次后,采用高內(nèi)涵活細胞成像系統(tǒng)在激發(fā)光為485 nm和發(fā)射光為525 nm的條件下檢測熒光值。另按“1.6”項培養(yǎng)并處理細胞后,收集細胞超聲破碎后按照MDA試劑盒步驟在530 nm波長下測定OD值,并計算含量,實驗重復3次。

        1.8 PC12細胞中SOD、CAT及GSH-PX活力測定按“1.6”項培養(yǎng)并處理細胞后,收集細胞超聲破碎后離心,吸取上清分別在550、240、412 nm波長下測定SOD、CAT及GSH-PX的OD值,并計算活力,實驗重復3次。

        1.9 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 20.0軟件進行統(tǒng)計分析,實驗數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(x±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 不同濃度青蒿琥酯對PC12細胞相對存活率的影響 青蒿琥酯對PC12細胞相對存活率影響結(jié)果見圖1,提示青蒿琥酯在0.1~1.6 mmol/L濃度范圍內(nèi)對PC12細胞相對存活率沒有明顯影響,雖然細胞的相對存活率稍有變化,但與對照組相比差異沒有統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

        圖1 青蒿琥酯對PC12細胞活力的影響(n=6)Fig.1 Effects of artesunate on the vitality of PC12 cells(n=6)

        2.2 CCK8法檢測青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞損傷的保護作用 結(jié)果見圖2。與對照組相比,H2O2誘導組PC12細胞相對存活率顯著降低(P<0.05);而經(jīng)過不同劑量青蒿琥酯干預后,細胞相對存活率顯著升高,與H2O2誘導組相比差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),并且表現(xiàn)出濃度依賴性。

        圖2 青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞相對存活率的影響(n=6)Fig.2 Effects of artesunate on the relative survival rate of PC12 cells induced by H2O2(n=6)

        2.3 青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞上清LDH水平的影響 各組細胞培養(yǎng)液中LDH含量檢測結(jié)果見圖3所示。對照組中LDH水平降低,而H2O2誘導組中LDH水平較高,兩組比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);經(jīng)過不同濃度青蒿琥酯干預后,上清中LDH水平隨著劑量升高而明顯降低,與H2O2誘導組相比差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

        圖3 青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞上清LDH含量的影響(n=6)Fig.3 Effects of artesunate on the levels of LDH in PC12 cells induced by H2O2(n=6)

        2.4 青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞內(nèi)ROS及MDA水平的影響 H2O2誘導PC12細胞中ROS及MDA水平變化見表1。與對照組比較,H2O2誘導組中ROS的相對熒光強度(RFU)及MDA水平顯著升高(P<0.05);與 H2O2誘導組比較,經(jīng)不同劑量青蒿琥酯干預后,PC12細胞內(nèi)ROS及MDA水平均隨著藥物濃度升高而降低(P<0.05)。

        表1 不同組間ROS及MDA水平比較(x±s)Tab.1 Comparison of the levels of ROS and MDA in different groups(x±s)

        2.5 青蒿琥酯對PC12細胞內(nèi)SOD、CAT及GSHPX活力的影響 H2O2誘導PC12細胞中SOD、CAT及GSH-PX活力變化見表2。與對照組比較,H2O2誘導組中SOD、CAT及GSH-PX活力降低(P<0.05);與H2O2誘導組比較,經(jīng)不同劑量青蒿琥酯干預后,細胞內(nèi)SOD、CAT及GSH-PX活力均隨著藥物濃度升高而上升(P<0.05)。

        3 討論

        早前研究報道青蒿琥酯能夠改善蛛網(wǎng)膜下腔出血后模型大鼠早期腦損傷,其作用機制可能與調(diào)節(jié)內(nèi)皮細胞緊密連接蛋白Occludin和緊密連接蛋白-1(ZO-1)的表達相關(guān)[10],而且青蒿琥酯能促使視網(wǎng)膜下區(qū)神經(jīng)干細胞的增殖,其作用機制與激活PI3K/Akt信號通路有關(guān)[11],還發(fā)現(xiàn)青蒿琥酯能抑制脂多糖誘導的小神經(jīng)膠質(zhì)細胞系(BV-2細胞)炎性反應(yīng)[12]。相關(guān)報道證實青蒿琥酯可明顯降低人結(jié)腸上皮細胞氧化應(yīng)激損傷,其作用機制可能與抑制Jak2/Stat3信號通路的激活相關(guān)[13],本研究探討了青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞氧化損傷的保護作用,初步研究了青蒿琥酯保護PC12細胞免受氧化損傷的效果與機制。

        表2 不同組間SOD、CAT及GSH-PX活力的比較(x±s)Tab.2 Comparison of the activity of SOD,CAT and GSHPX in different groups(x±s)kU/g protein

        藥物毒性實驗發(fā)現(xiàn)青蒿琥酯在0.1~1.6 mmol/L濃度范圍內(nèi)對PC12細胞的相對存活率沒有明顯影響,說明所選濃度的藥物對PC12細胞的相對存活率沒有影響。進一步研究不同濃度青蒿琥酯對PC12細胞免受H2O2損傷的實驗,發(fā)現(xiàn)該藥物能顯著增加PC12細胞的相對存活率,并且表現(xiàn)出濃度依賴性。當細胞受到損傷時,胞內(nèi)LDH會釋放到培養(yǎng)液中,LDH水平能夠直接反映細胞凋亡的狀態(tài)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)H2O2誘導組中細胞培養(yǎng)液中LDH含量顯著升高,然而經(jīng)過不同濃度青蒿琥酯干預細胞后LDH含量明顯降低,且表現(xiàn)出劑量依賴性。ROS可以使細胞膜上的脂質(zhì)類物質(zhì)氧化,產(chǎn)生MDA引發(fā)細胞氧化損傷或凋亡,早期報道很多中藥成分如生物黃酮類、類胡蘿卜素等都有清除氧自由基的作用[14-16]。研究發(fā)現(xiàn)H2O2誘導組PC12細胞內(nèi)ROS的水平明顯升高,MDA含量也相應(yīng)增加,采用不同濃度青蒿琥酯干預后,細胞內(nèi)ROS、MDA含量均明顯降低,提示青蒿琥酯可以減輕H2O2誘導的PC12細胞氧化損傷。SOD、CAT及GSH-PX都是內(nèi)源性的抗氧化酶,可以直接清除自由基,降低細胞的氧化損傷[17]。實驗最后檢測了青蒿琥酯對PC12細胞內(nèi)SOD、CAT及GSH-PX活性的影響,發(fā)現(xiàn)H2O2能誘導PC12細胞中抗氧化酶SOD、CAT及GSH-PX活性減弱,而青蒿琥酯則能顯著升高SOD、CAT及GSH-PX的活性,從而達到清除細胞內(nèi)氧自由基、減輕氧化損傷的作用。

        胞內(nèi)氧化/抗氧化系統(tǒng)的平衡在細胞增殖及生理功能中起著關(guān)鍵的作用,一旦平衡被打破便會出現(xiàn)ROS的過量產(chǎn)生,后者會誘導相關(guān)信號通路的激活,引發(fā)細胞損傷[18]。綜上所述,青蒿琥酯對H2O2誘導PC12細胞的保護作用預示著其可能對一些神經(jīng)病變性疾病有一定療效,值得后期更深入研究。

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