張博偉,王海靜,宋茂勇,謝慧君,*,張 建
(1.山東大學 環(huán)境研究院,山東 濟南 250100; 2.山東大學 環(huán)境科學與工程學院,山東 濟南 250100; 3.中國科學院 生態(tài)環(huán)境研究中心,北京 100085)
四溴雙酚A(TBBPA)是一種溴系阻燃劑,廣泛應用于印刷電路板、電子產(chǎn)品、塑料、紡織等工業(yè)產(chǎn)品中[1]。隨著TBBPA的廣泛應用,目前它已經(jīng)成為全球范圍內(nèi)的新興污染物之一。TBBPA在環(huán)境中可以長期存在,并能長距離遷移[2],在不同環(huán)境中均有檢出[3-4]。由于它和甲狀腺激素具有相似的化學結(jié)構(gòu),很容易與甲狀腺激素運載蛋白結(jié)合,因此也被視作一種潛在的內(nèi)分泌干擾物[5],一旦隨生物鏈進入人體,會造成人體正常代謝活動的紊亂。TBBPA具有親脂性和疏水性,一旦進入環(huán)境,最終會積聚到土壤中。Xu等[6]檢測到北京農(nóng)田土壤中TBBPA濃度為0~5.6 μg·kg-1,電子廢物回收地區(qū)土壤中TBBPA濃度高達26~104 μg·kg-1;研究人員在以色列的一個污染場地的表層土壤中,檢測到TBBPA的最高濃度達450 mg·kg-1[7]。
土壤微生物是土壤的重要組成部分,在土壤物質(zhì)循環(huán)中發(fā)揮重要作用[8]。氮元素是土壤中重要的養(yǎng)分元素之一[9]。土壤生態(tài)系統(tǒng)主要依靠氮轉(zhuǎn)化,如硝化、反硝化、厭氧氨氧化,來維持土壤生產(chǎn)力和土壤微生物活性。土壤中的微生物硝化、反硝化、厭氧氨氧化過程,主要以微生物酶的活性決定反應的轉(zhuǎn)化速率[10]。有研究表明,As、Be、Br、Cd、Cr、Pb、Hg等重金屬,對土壤硝化均有不同程度的抑制作用[11]。當有機污染物菲的濃度達到250 mg·kg-1時同樣也能抑制土壤硝化作用[10]。雖然土壤微生物在厭氧或者好氧條件下對TBBPA均有一定的降解作用[12-13],但當TBBPA進入土壤后,是否會對土壤中無機氮循環(huán)相關的微生物群落結(jié)構(gòu)和功能造成一定影響,從而影響土壤物質(zhì)循環(huán),尤其是無機氮循環(huán),在本研究范圍內(nèi)檢索還未見報道。
實驗土壤選取山東省濟南市百花公園(117.07°E,36.68°N)的表層土壤(0—20 cm),設置3個5 m×10 m的樣方,用直徑7 cm的螺旋鉆隨機取10份樣品,將取得的樣品充分混合,去除土壤中的植物殘渣、樹枝殘骸和大塊石頭。處理好的土壤樣品置于陰涼處風干后過10目篩(2 mm)。將過篩土壤樣品的含水率調(diào)節(jié)為土壤干重的40%,放在托盤中用保鮮膜包好,放進28 °C恒溫培養(yǎng)箱中避光孵化7 d,以增強土壤中微生物的活性。測得土樣pH值為8.0,總氮(TN)含量為169 mg·kg-1,總碳(TC)含量為2.43 g·kg-1,陽離子交換量(CEC)為21.03 cmol·kg-1。
實驗共設置4個TBBPA濃度(4、10、20、40 mg·kg-1)的污染土壤作為實驗組,以不添加TBBPA的土壤樣品作為空白組。配制實驗組土壤時,首先將TBBPA溶解到甲醇中,配制不同濃度的TBBPA母液,然后按其所需添加量加入土壤中,攪拌均勻后在通風櫥放置30 min,以保證甲醇溶劑揮發(fā)完全[14]。所有實驗組和空白組均添加相同體積的甲醇。將溶劑揮發(fā)后的土壤分成30份,每份200 g,加入500 mL的錐形瓶中。
為了更好地了解不同氧氣環(huán)境下TBBPA對土壤無機氮循環(huán)微生物的影響,將每個TBBPA濃度處理平均分為厭氧組和好氧組。好氧組分別命名為A-4、A-10、A-20、A-40,厭氧組分別命名為AN-4、AN-10、AN-20和AN-40。此外,好氧組和厭氧組各設一個空白對照,分別命名為A-CK和AN-CK。好氧組使用棉花塞封口,厭氧組通入氮氣后用橡膠塞封口。將30個錐形瓶置于恒溫培養(yǎng)箱中,28 °C條件下培養(yǎng)45 d。
取培養(yǎng)45 d后干燥的土壤0.3 g,使用PowerSoil?DNA Isolation kit DNA(MOBIO)試劑盒提取土壤中微生物的DNA。DNA的純度和濃度利用Nanodrops ND-1000 紫外分光光度計檢測,合格的DNA樣品保存在-20 ℃冰箱內(nèi)。采用Illumina高通量測序檢測TBBPA對無機氮循環(huán)相關微生物群落結(jié)構(gòu)的影響。每個樣品做3個平行。選擇F338和R806引物,對微生物的16S rRNA基因中V3~V4段進行擴增,并利用Illumina MiSeq測序儀器對16S rRNA基因的擴增子進行250 bp的末端測序,測序后的數(shù)據(jù)處理方法如Kang等[15]所述。
對不同處理下的土壤無機氮含量數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0軟件進行單因素方差分析,對有顯著差異(P<0.05)的處理做最小顯著差異性檢驗。利用Origin 9.1軟件繪圖。
高通量數(shù)據(jù)經(jīng)過篩選后,使用PICRUSt標準化16S rRNA的拷貝數(shù),并根據(jù)KEGG通路數(shù)據(jù)庫預測微生物群組的功能[16],然后篩選出與氮轉(zhuǎn)化相關的功能基因,包括參與硝化、反硝化、厭氧氨氧化過程的功能基因。
表1好氧和厭氧條件下不同濃度TBBPA對土壤無機氮的影響
Table1Effect of different concentrations of TBBPA on inorganic nitrogen in aerobic or anaerobic conditions
條件Condition樣品SampleNH+4-N/(mg·kg-1)NO-2-N/(mg·kg-1)NO-3-N/(mg·kg-1)好氧A-CK0.19±0.03 a0.79±0.15 a0.48±0.01 aAerobicA-40.18±0.00 ab 0.72±0.02 a0.47±0.01 aA-100.17±0.01 ab0.87±0.06 a0.48±0.02 aA-200.17±0.01 ab0.68±0.07 a0.48±0.02 aA-400.11±0.04 b0.65±0.08 a0.27±0.02 b厭氧AN-CK0.39±0.09 a0.87±0.18 a0.41±0.02 bAnaerobicAN-40.41±0.01 a0.65±0.04 a0.44±0.02 bAN-100.43±0.02 a0.65±0.08 a0.49±0.02 bAN-200.43±0.05 a0.76±0.09 a0.42±0.03 bAN-400.44±0.06 a0.65±0.06 a0.55±0.07 a
同列數(shù)據(jù)后無相同小寫字母的表示差異顯著(P<0.05)。
Values within a column followed by different lowercase letters indicated significant difference atP<0.05.
微生物硝化、反硝化、厭氧氨氧化是土壤中無機氮循環(huán)最重要的轉(zhuǎn)化過程,這些過程主要受土壤微生物相關代謝活動的調(diào)控[17]。如2.1節(jié)結(jié)果所示,在本實驗條件下,只有當TBBPA濃度為40 mg·kg-1時才對土壤無機氮循環(huán)有顯著影響,因此僅在該濃度下分別針對好氧和厭氧條件下無機氮循環(huán)相關微生物的豐度進行分析,結(jié)果如表2所示??偟膩碚f,不同處理條件下的土壤群落結(jié)構(gòu)相似,在所有測試樣品中,變形菌門(Proteobacteria)、酸桿菌門(Acidobacteria)、綠彎菌門(Chloroflexi)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、放線菌門(Actinobacteria)是豐度最高的5大門類。區(qū)別在于,在40 mg·kg-1TBBPA處理下,無論好氧還是厭氧條件,變形菌門的豐度都增大,而綠彎菌門和放線菌門的豐度都降低。
表2不同條件下土壤微生物群落結(jié)構(gòu)門水平的組成
Table2Taxonomic classification of soil microorganism on different conditions at phylum level %
類別PhylumA-CKA-40AN-CKAN-40酸桿菌門Acidobacteria19.0317.8012.4115.60放線菌門Actinobacteria8.726.709.608.04裝甲菌門Armatimonadetes0.750.310.420.31擬桿菌門Bacteroidetes4.836.369.6810.54綠彎菌門Chloroflexi6.873.4713.508.07硬壁菌門Firmicutes0.911.394.755.03芽單胞菌門Gemmatimonadetes1.672.001.491.35硝化螺旋菌門Nitrospirae0.691.050.510.79浮霉菌門Planctomycetes0.600.450.460.39變形菌門Proteobacteria29.4141.0129.9635.74其他Others25.2018.3116.1813.03
表3不同條件下土壤硝化細菌在屬水平的群落組成
Table3Taxonomic classification of soil nitrobacteria on different conditions at genus level %
類別GenusA-CKA-40AN-CKAN-40Sphingomonas1.352.001.560.86Nitrospira0.691.050.510.79Burkholderiales(unclassified)0.400.530.310.37Comamonadaceae(unclassified)0.360.650.450.44Rhodocyclaceae(unclassified)0.330.440.851.52Spartobacteria(unclassified)0.140.060.050.02Ramlibacter0.130.240.200.20Bacillus0.130.120.310.29Spartobacteria_genera_incertae_sedis0.120.080.070.06Methyloversatilis0.100.090.070.02總計Total3.745.274.384.57
表4不同條件下土壤反硝化細菌在屬水平的群落組成
Table4Taxonomic classification of soil denitrobacteria on different conditions at genus level %
類別GenusA-controlA-40AN-controlAN-40Chitinophagaceae(unclassified)0.791.27 1.08 0.77Rhodocyclaceae(unclassified)0.33 0.44 2.12 1.52Sphingobacteriales(unclassified)0.31 0.11 0.09 0.08Arthrobacter0.28 0.14 0.28 0.32Flavisolibacter0.27 0.68 0.62 1.09Terrimonas0.19 0.32 0.24 0.20Hyphomicrobium0.17 0.18 0.11 0.21Parasegetibacter0.13 0.18 0.17 0.26Bacillus0.13 0.12 0.31 0.29Methyloversatilis0.10 0.09 0.07 0.02總計Total2.743.535.094.76
近年來,根據(jù)高通量測序結(jié)果來推測微生物功能得到了廣泛應用[20]。為了更好地說明40 mg·kg-1TBBPA對無機氮轉(zhuǎn)化途徑的影響,利用PICRUSt軟件預估了無機氮轉(zhuǎn)化過程中的基因變化。圖1展示了對照組(A-CK、AN-CK)和40 mg·kg-1TBBPA處理條件下厭氧和好氧組內(nèi)所有有顯著性差異(P<0.05)的無機氮轉(zhuǎn)化相關基因。好氧條件下,A-CK和A-40組有6個氮相關基因都顯示出了顯著差異。TBBPA暴露使得其中2種功能基因,即亞硝酸鹽還原酶K00368(nirK)和硝酸鹽還原酶K00370(narG)的表達被誘導,另外4個基因,即參與硝酸鹽還原的K00360(nasB)、K00371(narH)和K02567(napA)及氧化亞氮還原酶K00376(nosZ)的表達受到抑制。厭氧條件下,硝酸鹽還原酶K00360(nasB)的表達同好氧條件下一樣受到抑制,而亞硝氮還原酶K00363(nirD)和一氧化氮還原酶K04561(norB)的表達則受到誘導。
圖1 好氧(a)和厭氧(b)條件下40 mg·kg-1 TBBPA對土壤無機氮循環(huán)相關基因的作用Fig.1 Effect of 40 mg·kg-1 TBBPA on functional genes related to inorganic nitrogen transformation in aerobic (a) or anaerobic (b) conditions
圖2 TBBPA對土壤無機氮循環(huán)途徑的可能影響Fig.2 Possible effect of TBBPA on soil inorganic nitrogen transformation pathway