王 雨,李霽昕,李經(jīng)緯,郝蘭蘭,胡妍蕓,王 博,蔣玉梅,*
(1.甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點實驗室,甘肅省葡萄酒產(chǎn)業(yè)技術(shù)研發(fā)中心,甘肅 蘭州 730070;2.甘肅出入境檢驗檢疫局綜合技術(shù)中心,甘肅 蘭州 730070)
‘玉金香’甜瓜是我國西北地區(qū)主要的經(jīng)濟(jì)作物之一,屬于呼吸躍變型果實,采后極易被病原菌侵染而發(fā)生腐爛[1-2]。苯并噻重氮(benzo-(1,2,3)-thiadiazole-7-carbothioic acid S-methyl ester,BTH)是目前常用的一種典型的植物抗病誘導(dǎo)劑[3],能夠誘導(dǎo)甜瓜果實產(chǎn)生抗病性,有效降低甜瓜果實的采后腐爛率[4-5]。香氣物質(zhì)的組成和含量是衡量甜瓜品質(zhì)的重要指標(biāo)[6],已有240多種香氣物質(zhì)被分離檢測[7],根據(jù)合成前體,其代謝途徑可分為脂肪酸途徑、氨基酸途徑和碳水化合物途徑[8]。目前研究顯示采后BTH誘抗處理可提高甜瓜果肉和果皮組織的脂肪氧合酶(lipoxygenase,LOX)活性,進(jìn)而影響脂肪酸途徑香氣組分代謝[9]。同時,采后BTH處理會降低‘玉金香’果實氨基酸含量,抑制相關(guān)代謝酶活性,進(jìn)而改變酯類香氣組分的釋放[10]。關(guān)于采后BTH處理對萜烯類香氣代謝的影響分析及研究目前鮮見報道。
以碳水化合物為前體的萜烯類合成途徑包括甲基磷酸赤蘚糖途徑(methyl-erythritol-4-phosphate pathway,MEP)和甲羥戊酸途徑(mevalonate pathway,MVA)[11]。單萜類香氣物質(zhì)以糖的中間代謝產(chǎn)物3-磷酸甘油醛、丙酮酸為前體,經(jīng)MEP途徑生成香葉基二磷酸(geranyl diphosphate,GPP),再由單萜合成酶催化生成[12-13],其中l(wèi)-脫氧-D-木酮糖-5-磷酸還原異構(gòu)酶(l-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reductoisomerase,DXR)是MEP代謝途徑中的限速酶[14]。
本研究以厚皮甜瓜‘玉金香’為實驗材料,監(jiān)測采后常溫貯藏期間單萜類香氣組分及其代謝酶DXR活力的變化,分析其相關(guān)性,探討采后BTH誘抗處理對DXR活力和單萜類香氣形成的影響,以期為甜瓜果實香氣代謝機(jī)理研究提供參考。
‘玉金香’厚皮甜瓜,2017年6月(花后45 d)采自甘肅省皋蘭縣什川鎮(zhèn),果發(fā)泡網(wǎng)袋包裝,36 個/箱,當(dāng)天運抵實驗室,室溫((22±2)℃、相對濕度55%~65%)貯藏。
BTH(純度98%)、2-辛醇(色譜純) 美國Sigma Aldrich公司。
TRACE1300GC-ISQ300氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀、TG-WAX色譜柱(60 m×0.25 mm,0.5 μm)、Genesis 10S型紫外-可見分光光度儀 美國Thermo Scientific公司;固相微萃取(solid phase microextraction,SPME)裝置、50/30 μm二乙基苯/碳分子篩/聚二甲基硅(divinylbenzene/carboxen/polydimethyl-siloxane,DVB/CAR/PDMS)萃取頭 美國Surpelco公司;CP 214型電子分析天平 上海奧豪斯儀器有限公司;PHS-3C pH計上海雷磁儀器有限公司。
1.3.1 樣品處理
1.3.1.1 BTH誘抗處理
參照Vieira dos Santos等[15]的方法并略作修改。于采收當(dāng)日,選擇成熟度、大小相近、無損傷和蟲咬的果實,分別采用100 mg/L BTH溶液(蒸餾水配制,BTH處理組)、蒸餾水(CC組)浸泡10 min,以未處理果實為對照(CK組)。室溫條件((22±2)℃、相對濕度55%~65%)貯藏。
1.3.1.2 取樣
參照Bi Yang等[16]的方法并略作修改。貯藏第0、2、4、6、8、l0、12、14天隨機(jī)抽取外觀相近、無損傷的‘玉金香’果實樣品,每組10 個,分別取果實“赤道”附近的果皮組織(皮下2~5 mm)、果肉組織(皮下5~8 mm),切小塊混勻,每3.0 g錫箔紙包裹液氮冷凍,-80 ℃保存用于測定酶活力;香氣檢測樣品每5.0 g混勻的小塊置于20 mL頂空瓶中,加入1.0 g NaCl、內(nèi)標(biāo)2-辛醇(8.82 mg/L)20 μL,密封混勻,-20 ℃保存待測。
1.3.2 指標(biāo)測定
1.3.2.1 香氣含量的測定
參照Zhang Bo等[17]的方法并修改。樣品常溫解凍,40 ℃下平衡30 min。插入活化的SPME裝置,40 ℃頂空吸附30 min。GC進(jìn)樣口熱解析10 min。
GC條件:進(jìn)樣口溫度240 ℃,不分流進(jìn)樣,20 min后打開分流閥,分流比30∶1;升溫程序:初溫50 ℃,以3 ℃/min升至170 ℃,保持10 min;載氣(He)流速1.0 mL/min。
MS條件:電子轟擊離子源(electron impact ionization,EI);電子能量70 eV;傳輸線溫度180 ℃;離子源溫度240 ℃;質(zhì)譜掃描范圍m/z 40~350。
1.3.2.2 酶活力的測定
DXR活力的測定參照Hasunuma等[18]的方法并略作修改。取低溫保存樣品3.0 g(冷凍狀態(tài))于-20 ℃預(yù)冷研缽,加6.0 mL提取液(含150 mmol/L pH 7.5 Tris-HCl、5 mmol/L MgCl2、5 mmol/L β-巰基乙醇、1 mmol/L二磷酸硫胺),冰浴條件下研磨勻漿,15 000×g、4 ℃離心15 min,取上清液,為粗酶液。反應(yīng)混合液(含100 mmol/L pH 7.5 Tris-HCl、1 mmol/L MnCl2、0.12 mmol/L NADPH、0.25 mmol/L DXP)3.0 mL,加入1 mL粗酶液,利用紫外-可見分光光度計測定340 nm波長處的吸光度,每隔20 s讀數(shù),連續(xù)測定3 min。以不含粗酶液的反應(yīng)混合液為對照。酶活力單位為U/g,結(jié)果以鮮質(zhì)量計。每個樣品檢測做3 次獨立重復(fù)。
香氣物質(zhì)經(jīng)計算機(jī)檢索NIST Library(11)、Wiley Library,結(jié)合文獻(xiàn)人工圖譜解析定性,內(nèi)標(biāo)法半定量。采用Excel 2010軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析;采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行相關(guān)性分析(相關(guān)系數(shù)法)。
圖 1 BTH處理對貯藏過程中甜瓜DXR活力的影響Fig. 1 Effect of BTH treatment on DXR activity in muskmelon during storage
由圖1A、B可知,采后貯藏期間果皮和果肉試樣中DXR活力均呈單峰型變化,CK和CC組果皮和果肉試樣活力峰值均在第6天出現(xiàn),BTH處理可抑制DXR活力,并使高峰延遲2 d出現(xiàn),條件因子水使DXR活力高峰值增加,貯藏第0~2天,CC組果皮和果肉試樣DXR活力低于CK組,高于BTH處理組;第2~6天,CC組DXR活力急劇上升;貯藏的第10天,CC組的DXR活力比CK組低,CC組果皮和果肉試樣DXR活力分別較CK組低3.41%和4.35%。貯藏期間CC組DXR果皮和果肉試樣活力峰值分別為(4.11±0.14)、(1.81±0.05)U/g,BTH處理組果皮和果肉中DXR活力比CC組分別降低了19.48%和25.49%。果皮試樣DXR活力整體高于果肉試樣,CK、CC組和BTH處理組果皮試樣DXR活力峰值較果肉試樣分別高1.2、1.3、1.4 倍。由圖1A可知,對于果皮,BTH處理組峰值為(3.48±0.11)U/g,分別比CK和CC組峰值低4.85%和15.15%。由圖1B可知,對于果肉,BTH處理組峰值為(1.48±0.11)U/g,比CK和CC組低9.78%和18.23%。
前人報道‘玉金香’厚皮甜瓜貯藏期間乙烯釋放規(guī)律為:常溫貯藏期間CC組果實乙烯于第6天出現(xiàn)釋放高峰,BTH處理后,乙烯釋放高峰提前,釋放量受到顯著抑制[19]。結(jié)合分析發(fā)現(xiàn),本實驗CK和CC組果皮和果肉試樣DXR活力達(dá)到峰值的時間與乙烯躍變的時間相一致,均出現(xiàn)在第6天,BTH處理后DXR活力也被抑制。由此推斷,厚皮甜瓜‘玉金香’DXR活力與乙烯的釋放存在一定的相關(guān)性,具體機(jī)理還有待進(jìn)一步研究。
實驗甜瓜果實共檢出代謝自MEP途徑的單萜類香氣組分9 種。包括1 種無環(huán)單萜(香葉醇)、7 種單環(huán)單萜(α-萜品醇、順-α,α-5-三甲基-5-乙烯基四氫化呋喃-2-甲醇、L-香芹醇、對-薄荷-(7),8(10)-二烯-9-醇、反式-(+)-異檸檬烯、L-薄荷醇、水茴香醛)、1 種三環(huán)單萜(桉葉油醇)。
2.2.1 不同處理對甜瓜果實貯藏過程中無環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響
香葉醇在果皮和果肉樣品中均呈雙峰型變化,各樣品峰值出現(xiàn)時間一致。BTH處理組香葉醇含量始終低于CK和CC組。由圖2A可知,對于果皮,貯藏前期各處理組香葉醇的釋放量均呈上升趨勢,分別于第4天和第8天出現(xiàn)釋放高峰。第8天CC組釋放峰值為(0.432±0.037)ng/g,分別是CK組和BTH處理組的1.27 倍和1.59 倍。由圖2B可知,對于果肉,香葉醇的釋放量分別在第2天和第8天達(dá)到釋放高峰。CK、CC組和BTH處理組第二次釋放高峰值遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于第一次釋放高峰值,分別是第一次釋放高峰值的4.00、3.58、6.03 倍。CK組和BTH處理組第8天釋放峰值分別為(1.872±0.167)ng/g和(1.438±0.216)ng/g,分別是CC組的87.98%和67.57%。
圖 2 BTH處理對貯藏過程中甜瓜MEP途徑代謝無環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響Fig. 2 Effect of BTH treatment on release of aroma-active acyclic monoterpene compounds through methyl-erythritol-4-phosphate pathway from muskmelon during storage
2.2.2 不同處理對甜瓜果實貯藏過程中單環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響
實驗甜瓜果實檢測出單環(huán)單萜類香氣α-萜品醇、L-香芹醇、對-薄荷-(7),8(10)-二烯-9-醇、L-薄荷醇和反式-(+)-異檸檬烯在樣品貯藏期間呈雙峰型變化,順-α,α-5-三甲基-5-乙烯基四氫化呋喃-2-甲醇CK組呈單峰型變化,CC組和BTH處理組呈雙峰型變化,水茴香醛呈單峰型變化。
α-萜品醇在果肉樣中的釋放量是單萜類香氣物質(zhì)中最高的。由圖3A1可知,對于果皮,CC組在第2天和第6天達(dá)到釋放高峰,CK組和BTH處理組第0~2天急速下降,第4天和第10天達(dá)到峰值,兩者變化趨勢一致;CC組第6天釋放峰值為(0.623±0.071)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次(10 d)峰值的1.26 倍和1.70 倍。由圖3A2可知,對于果肉,各處理組α-萜品醇的釋放量均分別在第2天和第8天達(dá)到高峰,CK、CC組和BTH組第二次釋放峰值分別是第一次釋放峰值的5.61、4.21 倍和5.90 倍;BTH處理組釋放量始終低于CC組,BTH處理組第8天釋放峰值為(2.320±0.211)ng/g,分別是CK和CC組釋放峰值的78.31%和70.55%。
順-α,α-5-三甲基-5-乙烯基四氫化呋喃-2-甲醇在果皮和果肉中釋放規(guī)律不同。CC組和BTH處理組釋放高峰出現(xiàn)在第2天和第6天,CK組第4天達(dá)到釋放高峰。由圖3B1可知,對于果皮,貯藏第6天CC組釋放峰值為(0.347±0.043)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次釋放峰值的1.22 倍和1.43 倍。由圖3B2可知,對于果肉,BTH處理組第二次釋放峰值是第一次釋放峰值的5.14 倍,BTH處理組第6天釋放峰值為(0.890±0.143)ng/g,分別是CK組和CC組第二次釋放峰值的81.52%和63.97%。
由圖3C1可知,對于果皮,CC組L-香芹醇在第2天和第6天達(dá)到釋放高峰,釋放量明顯高于CK組和BTH處理組,10 d后含量低于CK組,高于BTH處理組;CK組和BTH處理組第二次釋放高峰較CC組推遲2 d出現(xiàn);第6天CC組釋放峰值為(0.580±0.056)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次峰值的1.23、1.44 倍。由圖3C2可知,對于果肉,CK組和BTH處理組變化趨勢相一致,CC組8 d后含量低于CK組和BTH處理組,BTH處理組第8天釋放峰值為(0.430±0.057)ng/g,分別是CK組和CC組第二次峰值的80.52%和62.41%。
對于果皮和果肉,CC組對-薄荷-(7),8(10)-二烯-9-醇第一次釋放高峰均出現(xiàn)在第2天,含量低于CK組,高于BTH處理組,第二次釋放高峰均出現(xiàn)在第6天。由圖3D1可知,對于果皮,CK組和BTH處理組第二次釋放峰值較CC組推遲2 d出現(xiàn)。第6天CC組釋放峰值為(0.524±0.054)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次釋放峰值的1.19、1.50 倍;由圖3D2可知,對于果肉,CC組和BTH處理組變化趨勢相一致,BTH處理組第6天釋放峰值為(1.280±0.172)ng/g,分別是CK組和CC組第二次釋放峰值的90.67%和59.20%。
由圖3E1可知,對于果皮,CC組L-薄荷醇在第2天和第6天達(dá)到釋放高峰,CK組和BTH處理組在貯藏前2 d釋放量呈下降趨勢,第4天和第8天達(dá)到峰值,貯藏第10~14天,L-薄荷醇釋放量再次升高;第6天CC組釋放峰值為(1.214±0.173)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次釋放峰值的1.22、1.62 倍。由圖3E2可知,對于果肉,BTH處理組第二次釋放高峰較CK和CC組推遲2 d出現(xiàn),BTH處理組第8天釋放峰值為(0.787±0.145)ng/g,分別是CK和CC組第二次釋放峰值的79.82%和55.19%(第6天)。
由圖3F1可知,對于果皮,CK和CC組反式-(+)-異檸檬烯釋放高峰均出現(xiàn)在第2天和第6天,BTH處理組第二次釋放高峰較CC和CK組推遲2 d,貯藏第10~14天,反式-(+)-異檸檬烯釋放量略有上升,第6天CC組釋放峰值為(1.991±0.158)ng/g,分別是CK組和BTH處理組第二次峰值的1.15、1.59 倍。由圖3F2可知,對于果肉,各處理組差異較大,BTH處理組第二次釋放高峰較CC組推遲4 d出現(xiàn),BTH處理組第10天釋放峰值為(2.067±0.280)ng/g,分別是CK和CC組第二次釋放峰值的82.31%和71.99%。
水茴香醛在果肉試樣中未檢出。由圖3G1可知,對于果皮,CK組水茴香醛在第4天達(dá)到釋放高峰,CC組和BTH處理組的釋放高峰則出現(xiàn)在貯藏第6天,釋放高峰后,樣品釋放量急劇下降,CC組釋放峰值為(0.527±0.042)ng/g,分別是CK組和BTH處理組的1.14 倍和1.43 倍。
圖 3 BTH處理對貯藏過程中甜瓜MEP途徑代謝單環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響Fig. 3 Effect of BTH treatment on release of aroma-active monocyclic monoterpene compounds through the methyl-erythritol-4-phosphate pathway from muskmelon during storage
2.2.3 不同處理對甜瓜果實貯藏過程中三環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響
桉葉油醇在果皮樣中未檢測出,果肉樣中呈單峰型變化。由圖4可知,對于果肉,CC組貯藏第0天未檢測出,之后急劇增加,第6天達(dá)到釋放高峰,CK組和BTH處理組貯藏前2 d未檢測出,之后緩慢上升,分別在第8天和第10天達(dá)到釋放高峰。BTH處理組釋放峰值為(1.069±0.198)ng/g,分別是CK組和CC組的69.40%和50.72%。
圖 4 BTH處理對貯藏過程中甜瓜MEP途徑代謝三環(huán)單萜類香氣物質(zhì)釋放量的影響Fig. 4 Effect of BTH treatment on release of aroma-active tricyclic monoterpene compounds through the methyl-erythritol-4-phosphate pathway from muskmelon during storage
由此可見,BTH處理可抑制單萜類香氣物質(zhì)的釋放,改變其釋放峰值出現(xiàn)時間。條件因子水會促進(jìn)釋放高峰前單萜類香氣物質(zhì)的釋放,8 d后則在一定程度上減少了單萜類香氣物質(zhì)的釋放,但無明顯作用規(guī)律。
由表1可知,CK組α-萜品醇含量與DXR活力呈負(fù)相關(guān),其他8 種單萜類香氣物質(zhì)含量都與DXR活力呈正相關(guān),香葉醇、反式-(+)-異檸檬烯、水茴香醛含量與DXR活力呈顯著正相關(guān)(P<0.05)。由表2可知,采后BTH處理,對L-薄荷醇、桉葉油醇含量與DXR活力相關(guān)性無影響;但會提高順-α,α-5-三甲基-5-乙烯基四氫化呋喃-2-甲醇、L-香芹醇、對-薄荷-(7),8(10)-二烯-9-醇、水茴香醛含量與DXR活力的相關(guān)性;BTH處理組的α-萜品醇含量與DXR活力相關(guān)性由CK組的負(fù)相關(guān)變?yōu)檎嚓P(guān)。反式-(+)-異檸檬烯含量與DXR活力的相關(guān)性則會被BTH處理減弱。
表 1 CK組DXR活力與單萜類香氣物質(zhì)釋放量相關(guān)性Table 1 Correlation analysis of DXR activity with release of aroma-active monoterpenes from control samples
表 2 BTH處理組DXR活力與單萜類香氣物質(zhì)釋放量相關(guān)性Table 2 Correlation analysis of DXR activity with release of aroma-active monoterpenes from BTH-treated samples
本實驗研究表明采后BTH處理可抑制‘玉金香’甜瓜DXR活力,延遲其活力峰值的出現(xiàn),改變單萜類香氣物質(zhì)含量與DXR活力的相關(guān)性,進(jìn)而影響單萜類香氣的釋放。已報道的研究顯示糖代謝中的葡萄糖經(jīng)糖酵解途徑產(chǎn)生的產(chǎn)物3-磷酸甘油醛、丙酮酸及乙酰CoA是萜類物質(zhì)合成的前體[20]。以3-磷酸甘油醛和丙酮酸為原料經(jīng)MEP途徑是單萜合成的最主要途徑[21]。DXR是MEP途徑中的關(guān)鍵限速催化酶[22]。DXR催化的反應(yīng)是MEP途徑中“碳流”的分支點,也是調(diào)控萜類化合物合成的有效靶點[23]。研究人員從薄荷中分離得到DXR基因,并將DXR基因連接CaMV 35S啟動子轉(zhuǎn)移到薄荷中,大多數(shù)轉(zhuǎn)基因植株的薄荷精油(多為單萜化合物)含量與對照相比增高,最高增幅可達(dá)50%[24]。姜花萜類代謝途徑以MEP途徑為主,經(jīng)磷甘霉素(可抑制MEP途徑中DXR活力)處理后,姜花萜類揮發(fā)性香氣物質(zhì)含量與對照相比降低了90%以上[25]。這些報道佐證了本實驗的推斷,采后BTH處理可通過抑制MEP途徑DXR活力,進(jìn)而影響厚皮甜瓜‘玉金香’的單萜類香氣的生成和釋放。
從感官品質(zhì)的角度分析,單萜類香氣大都帶有濃郁的果香、花香和木香[26-27],如香葉醇具有橙子花香味[28];α-萜品醇具有帶甜的濃青香和木青香[29];反式-(+)-異檸檬烯具有令人愉快的檸檬香氣[30],采后BTH處理減少了該類物質(zhì)的釋放,進(jìn)而會減弱樣品甜瓜甜香和花香感,影響其香氣品質(zhì),這與消費者對BTH處理甜瓜樣品的感官認(rèn)知基本一致。
‘玉金香’甜瓜果皮和果肉中共檢出9 種單萜類香氣組分,其中8 種單萜類香氣物質(zhì)含量與DXR活力呈正相關(guān);采后BTH處理在一定程度上抑制了甜瓜DXR活力和單萜類香氣物質(zhì)的釋放,延遲了DXR活力峰值出現(xiàn),改變了單萜類香氣釋放規(guī)律及其與DXR活力的相關(guān)性。由此可見,采后BTH處理可通過抑制‘玉金香’甜瓜DXR活力,延遲活力峰值的出現(xiàn),改變單萜類香氣與DXR活力的相關(guān)性,進(jìn)而影響單萜類香氣的釋放。條件因子水對DXR活力及其產(chǎn)物單萜類香氣物質(zhì)釋放均有影響,但其作用規(guī)律和機(jī)理還有待進(jìn)一步研究。