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        番茄不同截短U3啟動(dòng)子的克隆及功能分析

        2019-03-08 05:49:22劉曉東阿爾祖古麗塔什
        華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2019年1期

        蒲 艷,劉曉東,阿爾祖古麗·塔什,魏 倩,劉 超

        (新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 烏魯木齊 830052)

        番茄屬于茄科,在2012年完成了番茄全基因組測(cè)序,其具有較完整的遺傳轉(zhuǎn)化體系,這使得番茄成為一個(gè)可以很好地運(yùn)用于科學(xué)研究的模式之物。然而,由于缺乏有效的突變體遺傳材料,筆者對(duì)這些基因或DNA片段的作用或功能卻知之甚少。為了從大量的數(shù)據(jù)中更好地了解基因的功能,迫切需要新的基因編輯技術(shù)來滿足日益增長的科研需求;同時(shí),通過基因編輯技術(shù)培育具有優(yōu)良性狀的農(nóng)作物可以在一定程度上解決農(nóng)作物的轉(zhuǎn)基因問題。

        近幾年,基因編輯技術(shù)成為生物學(xué)研究的熱點(diǎn),其主要包括鋅指核酸酶(Zinc-finger nucleases, ZFNs)[1]、TALEN核酸酶(Transcription activator like effector nucleases, TALENs)[2]、CRISPR/Cas(規(guī)律成簇間隔短回文重復(fù)序列clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated protein)[3]3種技術(shù)體系。而Type Ⅱ的CRISPR/Cas9系統(tǒng)作為一項(xiàng)新型的基因組編輯技術(shù),是繼ZFNs及TALEN后在作物基因功能組學(xué)研究領(lǐng)域新進(jìn)的一個(gè)基因打靶系統(tǒng),其載體構(gòu)建簡單,特異性高,據(jù)報(bào)道已成功地在許多不同的物種中實(shí)現(xiàn)了基因的定點(diǎn)編輯[4-12]。CRISPR/Cas9系統(tǒng)中,行使向?qū)Чδ艿氖怯蓆racrRNA與crRNA分子間形成的RNA二元復(fù)合體改造的單鏈RNA嵌合體sgRNA,其招募Cas9核酸酶對(duì)靶位點(diǎn)進(jìn)行切割,切割位點(diǎn)于PAM位點(diǎn)上游3~4個(gè)堿基處,PAM序列為緊鄰靶位點(diǎn)的5′-NGG-3′。而U3啟動(dòng)子是CRISPR/Cas9系統(tǒng)中重要的元件之一,能驅(qū)動(dòng)sgRNA的轉(zhuǎn)錄。在植物中,U3和U6啟動(dòng)子由RNA聚合酶Ⅲ轉(zhuǎn)錄,其具有非常明確的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn),并且轉(zhuǎn)錄活性較高,U3啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)為A,U6啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)為G,明確的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)在CRISPR/Cas9系統(tǒng)靶序列的設(shè)計(jì)及構(gòu)建更加精確[13-14],同時(shí)可以保證不會(huì)有多余的序列被轉(zhuǎn)錄出來,在sgRNA靶向基因組模板時(shí),也可以提高特異性,從而減少脫靶的現(xiàn)象[15-16],如Shan等[12]利用水稻內(nèi)源U3啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)sgRNA轉(zhuǎn)錄,成功在水稻中實(shí)現(xiàn)了PDS和DEP1基因的編輯。Liang等[9]克隆了玉米U3啟動(dòng)子,并成功在玉米原生質(zhì)體中實(shí)現(xiàn)了內(nèi)源基因ZmIPK的編輯。雖然目前有關(guān)U3啟動(dòng)子的CRISPR/Cas9系統(tǒng)在許多物種中已經(jīng)得到了應(yīng)用,但相同的U3啟動(dòng)子在同緣關(guān)系較遠(yuǎn)的物種中不一定適用,并且目前未見適用于番茄的內(nèi)源U3啟動(dòng)子的報(bào)道,篩選出在番茄葉片中有功能活性的U3啟動(dòng)子很有必要。USE和TATA框是真核生物中U3啟動(dòng)子發(fā)揮轉(zhuǎn)錄功能的2個(gè)重要元件,本研究通過對(duì)候選的3種U3啟動(dòng)子與擬南芥U3啟動(dòng)子序列比對(duì),發(fā)現(xiàn)番茄的U3啟動(dòng)子內(nèi)也含有非常保守的2個(gè)元件,但它們是否均具有轉(zhuǎn)錄活性還需進(jìn)一步驗(yàn)證。

        本研究從番茄中蔬四號(hào)中克隆了3種6個(gè)不同長度的U3啟動(dòng)子,再利用農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化法侵染番茄葉片,通過GUS染色對(duì)其轉(zhuǎn)錄活性進(jìn)行分析,篩選出活性較高的U3啟動(dòng)子,旨在為構(gòu)建番茄CRISPR/Cas9基因編輯載體提供更多高效的內(nèi)源啟動(dòng)子。

        1 材料和方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        試驗(yàn)所用中蔬四號(hào)番茄品種、農(nóng)桿菌GV3101均由新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室保存。限制性內(nèi)切酶購于Thermo公司;克隆感受態(tài)細(xì)胞Trans5α、Blunt Zero平端載體、T4DNA連接酶、1 kb Plus DNA Ladder、植物基因組DNA提取試劑盒、膠回收試劑盒等均購自北京全式金生物技術(shù)公司;PhusionDNA聚合酶購于北京NEB公司;引物合成和測(cè)序由上海杰李生物科技有限公司完成。

        1.2 番茄SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子的克隆

        將中蔬四號(hào)番茄品種播種于含蛭石和營養(yǎng)土的土壤中,取生長21~28 d番茄幼苗葉片,采用植物基因組DNA提取試劑盒提取番茄基因組DNA,用保守的U3 RNA序列在番茄基因組數(shù)據(jù)庫中搜索候選U3 RNA對(duì)應(yīng)的U3啟動(dòng)子序列。本研究采用2輪PCR的方法,以番茄基因組DNA為模板設(shè)計(jì)引物(表1),第1輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物為SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子全長,用PhusionDNA 聚合酶進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)程序?yàn)?4 ℃ 4 min;98 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 2 min 30 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃ 8 min。反應(yīng)體系為5×Phusion Buffer 4 μL;2.5 mmol/L dNTP 1.6 μL;ddH2O 11 μL;上下游引物各1 μL;Phusion超保真DNA 聚合酶0.4 μL;DNA模板1 μL;共20 μL體系。

        第2輪擴(kuò)增的受體質(zhì)粒為GhU6-5P2::GUS,供體質(zhì)粒為SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子進(jìn)行Transfer PCR[17],根據(jù)第1輪測(cè)序正確的SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子序列和GhU6-5P2::GUS載體序列分別設(shè)計(jì)了2對(duì)引物(表1)。使用超保真DNA 聚合酶進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)程序?yàn)?4 ℃ 1 min;94 ℃ 30 s,60 ℃ 1 min,72 ℃ 90 s,13個(gè)循環(huán);94 ℃ 30 s,67 ℃ 1 min,72 ℃ 4 min,20個(gè)循環(huán);72 ℃ 8 min。反應(yīng)體系為5×Phusion Buffer 10 μL;2.5 mmol/L dNTP 2.5 μL;上下游引物各1 μL;供體質(zhì)粒和受體質(zhì)粒模板各1 μL;ddH2O 32.7 μL;Phusion超保真DNA 聚合酶0.8 μL;共50 μL體系。通過瓊脂糖凝膠電泳對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行分析,對(duì)分析正確的PCR產(chǎn)物用DpnⅠ在37 ℃進(jìn)行酶切處理3 h,取酶切產(chǎn)物10 μL轉(zhuǎn)化Trans5α感受態(tài)細(xì)胞,用BglⅡ和NotⅠ雙酶切鑒定SlU3-1P重組質(zhì)粒,XhoⅠ和NotⅠ雙酶切鑒定SlU3-3P重組質(zhì)粒,NsiⅠ和NotⅠ雙酶切鑒定SlU3-4P重組質(zhì)粒,酶切鑒定后選取正確的質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序正確的質(zhì)粒命名為T-SlU3-Ps。

        表1 引物序列Tab.1 Primer sequences

        注:下劃線部分為受體質(zhì)粒堿基序列。

        Note:Underlined for the acceptor plasmid partial base sequence.

        1.3 SlU3啟動(dòng)子序列分析

        運(yùn)用 DNAMAN 軟件對(duì)候選的番茄U3啟動(dòng)子與擬南芥U3啟動(dòng)子進(jìn)行序列比對(duì),對(duì)候選的U3啟動(dòng)子內(nèi)功能元件進(jìn)行分析。

        1.4 不同截短SlU3Ps∷GUS-sgRNA-P1300融合表達(dá)載體的構(gòu)建

        用KpnⅠ和HindⅢ雙酶切植物表達(dá)載體 pCAM-BIA 1300及SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P后分別回收目標(biāo)片段并用T4連接酶連接、轉(zhuǎn)化后對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,鑒定正確的質(zhì)粒命名為SlU3∷GUS-sgRNA-P1300,轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌感受態(tài)細(xì)胞GV3101后,于28 ℃倒置培養(yǎng)2 d,挑取陽性克隆于LB培養(yǎng)基中(含 Rif 25μg/mL和Kan 50μg/mL)培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長期。不同SlU3Ps∷GUS-sgRNA-P1300 融合表達(dá)載體示意圖如圖1所示。

        1.5 農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)染番茄葉片

        將構(gòu)建成功的不同SlU3-P∷GUS-P1300以及陽性對(duì)照P1301和陰性對(duì)照pCAMBIA1300農(nóng)桿菌,按照1∶100比例接種于LB培養(yǎng)基(含50 μg/mL Kan和25 μg/mL Rif)中180 r/min,28 ℃至菌液OD600=1時(shí),分別吸取菌液到5 mL LB培養(yǎng)基(含50 μg/mL Kan和25 μg/mL Rif)中,每個(gè)菌液的OD值相同后,再次28 ℃, 180 r/min至所有菌液的OD600=1.5,12 000 r/min離心5 min收集菌體于重懸Buffer(50 mmol/L MgCl2、200 mmol/L MES、20 mmol/L乙酰丁香酮)至1 mL,室溫放置3 h后分別注射到生長21 d的番茄子葉中,最后進(jìn)行過夜暗培養(yǎng)。

        圖1 不同截短SlU3-Ps啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)報(bào)告基因GUS的融合表達(dá)載體構(gòu)建Fig.1 Construction of GUS reporter gene fusion expression vector driven by different truncated SlU3-Ps promoter

        1.6 不同截短SlU3-Ps∷GUS在番茄葉片中的瞬時(shí)表達(dá)分析

        剪下暗培養(yǎng)過夜后的番茄葉片浸泡在150 μLGUS染液中(0.5 mol/L EDTA, pH值8.0;0.5 mol/L磷酸緩沖液, pH值7.0;20 mmol/L X-Gluc;10% Triton X-100),-0.05 MPa下抽真空30 min。抽完真空后置于37 ℃,180 r/min振蕩染色6~7 h后100 r/min離心1 min吸取上清GUS染液。為徹底去除殘留的GUS染液,用蒸餾水漂洗染色后的葉片4~5次,100 r/min 離心1 min。染色完成后加入300 μL無水乙醇進(jìn)行脫色處理,每3~4 h更換一次脫色液,直至葉片呈透明狀。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 第1輪SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子擴(kuò)增產(chǎn)物鑒定

        從中蔬四號(hào)番茄中成功擴(kuò)增出SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子片段,長度分別為1 156,1 114,1 147 bp(圖2)。用BglⅡ和NotⅠ雙酶切鑒定SlU3-1P重組質(zhì)粒,XhoⅠ和NotⅠ 雙酶切鑒定SlU3-3P重組質(zhì)粒,NsiⅠ和NotⅠ雙酶切鑒定SlU3-4P重組質(zhì)粒,通過瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果正確,最終測(cè)序比對(duì)后為預(yù)期的SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P啟動(dòng)子。

        M.2 kb PlusⅡ標(biāo)準(zhǔn)分子量;1.SlU3-1P,1 156 bp;2.SlU3-3P,1 114 bp;3.SlU3-4P,1 147 bp。M.2 kb PlusⅡDNA Marker; 1.SlU3-1P,1 156 bp; 2.SlU3-3P,1 114 bp; 3.SlU3-4P,1 147 bp.

        2.2 Transfer PCR擴(kuò)增產(chǎn)物鑒定

        以測(cè)序正確的第1輪SlU3-1P、SlU3-3P、SlU3-4P為供體質(zhì)粒,GhU6-5P2∷GUS受體質(zhì)粒進(jìn)行Transfer PCR,其目的是將受體質(zhì)粒GhU6-5P2∷GUS啟動(dòng)子片段置換為SlU3∷GUS-sgRNA片段。圖3為成功克隆的不同截短的T-SlU3-1P4f、T-SlU3-1P5f、T-SlU3-3P4f、T-SlU3-3P5f、T-SlU3-4P4f、T-SlU3-4P5f啟動(dòng)子電泳圖,其片段大小依次是489,318,450,248,457,248 bp。用MfeⅠ和Hind Ⅲ分別雙酶切鑒定各截短啟動(dòng)子質(zhì)粒,電泳后發(fā)現(xiàn),酶切結(jié)果與預(yù)測(cè)片段大小一致,測(cè)序比對(duì)后為預(yù)期截短的T-SlU3Ps啟動(dòng)子(圖3)。

        A、B、C.Transfer PCR擴(kuò)增;M. 2 kb PlusⅡ DNA標(biāo)準(zhǔn)分子量;A: 1.T-SlU3-1P4f;2.T-SlU3-1P5f; B: 1.T-SlU3-3P4f;2.T-SlU3-3P5f;C: 1.T-SlU3-4P4f;2.T-SlU3-4P5f;圖中小片段為第1階段擴(kuò)增的SlU3啟動(dòng)子,大片段為第2階段擴(kuò)增產(chǎn)物。D.酶切鑒定: 1.T-SlU3-1P5;2.T-SlU3-3P5;3.T-SlU3-3P4;4.T-SlU3-4P5;5.T-SlU3-4P4;6.T-SlU3-1P4.

        A,B,C.Transfer PCR amplificaton;M. 2 kb PlusⅡDNA Marker; A: 1.T-SlU3-1P4f;2.T-SlU3-1P5f;B:1.T-SlU3-3P4f;2.T-SlU3-3P5f; C:1.T-SlU3-4P4f;2.T-SlU3-4P5f;The small fragment in the figure is the first-stage amplifiedSlU3 promoter, and the large fragment is the second-stage amplification product.D. Identification: 1.T-SlU3-1P5; 2.T-SlU3-3P5; 3.T-SlU3-3P4;4.T-SlU3-4P5; 5.T-SlU3-4P4; 6.T-SlU3-1P4.

        圖3三種番茄U3啟動(dòng)子的TransferPCR擴(kuò)增及酶切鑒定
        Fig.3TransferPCRamplificationandidentificationofthreekindsoftomatoU3promoters

        2.3 SlU3啟動(dòng)子序列分析

        對(duì)本研究已克隆的3種番茄U3啟動(dòng)子和擬南芥U3啟動(dòng)子進(jìn)行序列比對(duì),發(fā)現(xiàn)番茄U3啟動(dòng)子區(qū)域包含RNA聚合酶Ⅲ轉(zhuǎn)錄所需要的元件,位于-30 bp的TATA框和位于-60 bp的USE元件5′-RTCCCA CATCG-3′,圖中方框?yàn)閁SE和TATA框,黑色箭頭處為U3 RNA的起始位點(diǎn)(圖4)。

        圖4 SlU3啟動(dòng)子序列分析Fig.4 Sequence analysis of SlU3 promoters

        2.4 不同截短SlU3Ps∷GUS-sgRNA-P1300融合表達(dá)載體構(gòu)建

        將正確的番茄不同截短SlU3Ps∷GUS-sgRNA的重組質(zhì)粒片段連入植物表達(dá)載體pCAMBIA1300,用KpnⅠ和HindⅢ分別對(duì)不同SlU3Ps∷GUS-sgRNA-P1300重組質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,酶切的結(jié)果和預(yù)測(cè)片段大小一致(圖5)。

        A: M.1 kb DNA標(biāo)準(zhǔn)分子量;1.SlU3-1P4∷GUS-sgRNA-P1300;2.SlU3-3P4∷GUS-sgRNA-P1300;3.SlU3-1P5∷GUS-sgRNA-P1300;4.SlU3-3P5∷GUS-sgRNA-P1300;B:M.2 kb plusⅡ標(biāo)準(zhǔn)分子量;1.SlU3-4P4∷GUS-sgRNA-P1300;2.SlU3-4P5∷GUS-sgRNA-P1300。A:M.1 kb DNA Marker;1.SlU3-1P4∷GUS-sgRNA-P1300; 2.SlU3-3P4∷GUS-sgRNA-P1300; 3.SlU3-1P5∷GUS-sgRNA-P1300;4.SlU3-3P5∷GUS-sgRNA-P1300;B:M.2 kb plusⅡ DNA Marker; 1.SlU3-4P4∷GUS-sgRNA-P1300; 2.SlU3-4P5∷GUS-sgRNA-P1300.

        2.5 不同截短SlU3啟動(dòng)子功能分析

        將構(gòu)建好的不同截短SlU3Ps∷GUS-sgRNA-P1300,陰性對(duì)照pCAMBIA1300及陽性對(duì)照pCAMBIA1301通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法注射番茄葉片。通過GUS組織化學(xué)染色分析結(jié)果顯示,侵染成功后的番茄葉片均被染成藍(lán)色,其表明已克隆的6種SlU3啟動(dòng)子均能驅(qū)動(dòng)報(bào)告基因GUS的表達(dá),但其表達(dá)水平存在一定差異(圖6)。

        圖6 番茄不同截短SlU3啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GUS在番茄葉片中的瞬時(shí)表達(dá)Fig.6 Transient expression of GUS in tomato leaves driven by different truncated SlU3 promoters in tomato

        3 討論

        Ⅱ型CRISPR/Cas9基因組編輯系統(tǒng)作為一項(xiàng)全新的基因組定點(diǎn)修飾技術(shù),近幾年已被成功地應(yīng)用于不同植物中,能實(shí)現(xiàn)在基因組特定位點(diǎn)的修飾。在基因組編輯的過程中,sgRNA能夠靶向結(jié)合到目的基因位點(diǎn),與CRISPR/Cas9系統(tǒng)的特異性相關(guān)[18]。其中U3啟動(dòng)子是重要組成成分之一,被廣泛用于驅(qū)動(dòng)sgRNA的轉(zhuǎn)錄。U3啟動(dòng)子具有非常明確的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)(A)且序列較短,其在生物體內(nèi)驅(qū)動(dòng)的U3 snRNA序列非常保守。依據(jù)這些信息U3啟動(dòng)子可以被精確的克隆。在真核生物體內(nèi)存在多種U3啟動(dòng)子,每個(gè)啟動(dòng)子是否均具有轉(zhuǎn)錄活性并不清楚。雖然有關(guān)U3啟動(dòng)子的CRISPR/Cas9系統(tǒng)已在許多物種中得到了應(yīng)用,但同樣的U3啟動(dòng)子在同緣關(guān)系較遠(yuǎn)的物種中不一定適用[19],并且目前番茄內(nèi)源U3啟動(dòng)子的研究還未見報(bào)道,因此,篩選出在番茄中具有功能活性的U3啟動(dòng)子很有必要。另外,雖然劉曉東課題組已克隆了番茄的U6啟動(dòng)子,并且利用該啟動(dòng)子將番茄內(nèi)源基因成功地實(shí)現(xiàn)了編輯,建立了番茄的CRISPR/Cas9基因組編輯技術(shù)體系。但由于研究的需要,如研究一個(gè)基因家族的功能、多基因控制的復(fù)雜數(shù)量性狀的研究、單個(gè)基因多位點(diǎn)編輯以及長基因片段的刪除,都需要克隆出更多U3或U6啟動(dòng)子,用于構(gòu)建多位點(diǎn)基因編輯載體。如擬南芥PYL和水稻FTL基因家族成員的多基因敲除,都使用了植物內(nèi)源多種U3和U6啟動(dòng)子[16]。

        番茄中至少含有4個(gè)U3啟動(dòng)子,本課題組克隆的3個(gè)U3啟動(dòng)子,將它們和擬南芥U3啟動(dòng)子進(jìn)行序列比對(duì)分析,發(fā)現(xiàn)番茄U3啟動(dòng)子區(qū)域包含RNA聚合酶Ⅲ轉(zhuǎn)錄所需要的USE元件和TATA框[20],且這2個(gè)元件的序列非常保守、它們之間的距離也比較固定,則推測(cè)番茄U3啟動(dòng)子也同樣具有轉(zhuǎn)錄活性。為了方便構(gòu)建CRISPR/Cas9基因組編輯載體,所用的U3啟動(dòng)子對(duì)其轉(zhuǎn)錄活性和長度上都有很高的要求,因此,有必要克隆長度適宜且活性較高的番茄U3啟動(dòng)子。本研究通過番茄不同U3啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GUS報(bào)告基因,并通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法瞬時(shí)轉(zhuǎn)化番茄葉片來驗(yàn)證其功能活性。通過GUS組織化學(xué)染色分析結(jié)果顯示,侵染成功后的番茄葉片均被染成藍(lán)色,表明克隆的6種U3啟動(dòng)子均能驅(qū)動(dòng)報(bào)告基因GUS的表達(dá),都具有轉(zhuǎn)錄活性,當(dāng)這3種啟動(dòng)子截短到300 bp左右,甚至是250 bp以內(nèi)的長度時(shí),仍然能驅(qū)動(dòng)報(bào)告基因GUS的表達(dá)。這顯示出番茄的U3啟動(dòng)子也相對(duì)較短,與在其他作物中克隆的U3啟動(dòng)子特點(diǎn)相同[21]。這些啟動(dòng)子進(jìn)一步截短后是否還具有轉(zhuǎn)錄活性,為了構(gòu)建多位點(diǎn)基因編輯載體,也需要在后續(xù)的工作中對(duì)進(jìn)一步截短的啟動(dòng)子的功能進(jìn)行研究。本研究克隆的啟動(dòng)子可為后期在番茄中建立高效的CRISPR/Cas9基因組編輯載體提供更多適用于驅(qū)動(dòng)sgRNA的啟動(dòng)子。

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