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        急性肝衰竭模型豬微環(huán)境對脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞生物學(xué)特性的影響

        2019-02-23 02:24:18郭瑞紅潘小平侯曉麗張江夏薇汪恬甜劉壽榮

        郭瑞紅 潘小平 侯曉麗張 悅 江夏薇 汪恬甜劉壽榮

        間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSC)移植治療終末期肝病獲得較多的關(guān)注,其來源眾多,主要包括骨髓、脂肪組織、羊膜、胎盤、臍帶血等[1-5]。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床研究顯示,MSC移植治療終末期肝病,可明顯提高患者的生存率,改善患者肝功能。與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone mesenchymal stem cells,BMSCs)相比[6],脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞(adipose derived mesenchymal stem cells,ADMSCs)分化為肝細(xì)胞的潛能更大,并且從慢性乙肝患者身上分離出的ADMSCs在培養(yǎng)時(shí)不易感染乙型肝炎病毒,因此,ADMSCs更適合作為慢性乙型肝炎患者的細(xì)胞替代治療。Mohsin等人[7]在體外模型中用損傷的肝組織預(yù)處理MSC,結(jié)果顯示提高了MSC中肝細(xì)胞特異性基因的表達(dá)。從肝損傷大鼠中分離的血清提高了BMSCs的肝向分化功能,并且證明比肝細(xì)胞生長因子更為有效,這表明某些病理環(huán)境可能影響MSC的特征[8]。然而,尚不清楚肝衰竭患者的ADMSCs是否因肝功能障礙而改變,以及從終末期肝病患者中分離的ADMSCs是否是自體移植的潛在候選者。小型模型豬在解剖、生理和生物化學(xué)等方面與人類相似,可作為人類醫(yī)學(xué)研究的最理想的模型動(dòng)物[9],因此,本研究獲取豬ADMSCs進(jìn)行比較。通過對比急性肝衰竭豬脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞(adipose derived mesenchymalstem cellsfrom acute liverfailure porcine,ALF-ADMSCs)和正常豬來源的 ADMSCs(adipose derived mesenchymal stem cells from normal porcine,Nor-ADMSCs)的細(xì)胞形態(tài),細(xì)胞表型,增殖能力,分化潛能等來鑒定急性肝衰竭對豬ADMSCs生物學(xué)特性的影響。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選用雄性微型巴馬豬2只,體質(zhì)量10~12kg,購自上海甲干生物科技有限公司,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物許可證號:SCXK(滬)2015-0005,由浙江中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心[合格證號:SYXK(浙)2013-0184]飼養(yǎng)。飼養(yǎng)期間給予標(biāo)準(zhǔn)飼料及自由飲水,12h黑白循環(huán)燈光,恒定溫度及濕度。本研究經(jīng)過浙江中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理與倫理委員會審核通過(批準(zhǔn)編號:1ACUC-20180326-10)。

        1.2 主要儀器和試劑 儀器:PCR儀(美國Applied Biosystems公司)、倒置相差顯微鏡(德國ZEISS公司)、CO2培養(yǎng)箱(美國 Thermo公司)。試劑:D-半乳糖胺、油紅 O 染色液、胰島素(insulin)、3,3',5-三碘L-甲狀腺原氨酸(T3)、吲哚美辛、地塞米松、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤、羅格列酮(rosiglitazone)均購自美國sigma公司;丙泊酚(西安力邦制藥有限公司11712011);RT-PCR 試劑盒(康為世紀(jì)公司 10209);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒 (TaKaRa #AK4802);RNAiso Plus(TaKaRa 108-95-2);成骨分化培養(yǎng)基(Gibco 1872976),成軟骨分化培養(yǎng)基(Gibco 1867431);肝細(xì)胞生長因子(Peprotech 0510S201),成纖維細(xì)胞生長因子(Peprotech 041408-2),胰島素鐵硒傳遞蛋白(Sigma SLBN1805V);CCK8試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司032718180410);茜素紅染色液(賽業(yè)生物科技有限公司T170113G001);阿利新藍(lán)染色液(上海源葉生物科技有限公司L06D8G49787);糖原染色試劑盒(sigma-alorich 061M4347);小鼠單克隆抗體CD14-PE、CD105-PE以及同型對照PE-IgG2a均購自英國Abcam公司;引物由上海生工生物工程技術(shù)有限公司合成。

        1.3 急性肝衰竭豬模型建立 兩只微型巴馬豬實(shí)驗(yàn)前按照實(shí)驗(yàn)動(dòng)物標(biāo)準(zhǔn)飼養(yǎng)1周。1只用于制備Nor-ADMSCs。另1只通過頸靜脈注射D-半乳糖胺以建立急性肝衰竭模型豬。頸靜脈置管前肌肉注射氯胺酮4mg/kg,手術(shù)期間通過耳緣靜脈施用丙泊酚以2.5mg·kg-1·h-1提供持續(xù)麻醉。頸靜脈置管和麻醉在30min內(nèi)完成操作。D-半乳糖胺溶于5%葡萄糖溶液中,用氫氧化鈉調(diào)節(jié)PH至6.8,再以0.22μm過濾器過濾后以1.5g/kg通過頸靜脈插管注入[10]。D-半乳糖胺誘導(dǎo)24h后,采用麻醉后放血法處死微型豬。收集血清和肝臟病理組織以檢測造模是否成功。

        1.4 豬ADMSCs分離、培養(yǎng) 獲取微型豬腹部和頸部脂肪組織,分離好的脂肪組織在嚴(yán)格無菌條件下,用4℃含2%青鏈霉素的磷酸緩沖溶液(PBS)充分洗滌。在含有0.1%膠原酶溶液中充分切碎組織,37℃下消化90min。每隔15min用移液管吹打混勻,以免過度消化。加入低糖培養(yǎng)基終止消化,在室溫下離心(700g,10min),棄去上清液。再加入低糖培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,100目篩網(wǎng)過濾,在室溫下離心(700g,10min)后,重新懸浮在含有10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素和鏈霉素的低糖培養(yǎng)基中。隨后將細(xì)胞接種到T25培養(yǎng)瓶中,并置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中。當(dāng)細(xì)胞達(dá)到70%~80%融合時(shí),選擇形態(tài)均一、生長良好者按1:2或1:3傳代,每隔3d換液一次,第3代以后即可用于細(xì)胞表型鑒定及分化實(shí)驗(yàn)。

        1.5 細(xì)胞表型鑒定 取第3代豬ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs,用含體積分?jǐn)?shù)為3%胎牛血清的PBS洗滌3次,制成單細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞濃度至5×106/mL,加入熒光標(biāo)記小鼠單克隆抗體CD14-PE、CD105-PE、CD44-FITC、CD90-FITC、CD29-FITC,PE-IgG2a、FITC-IgG2a、FITC-IgG1 作為同型對照。室溫避光孵育30min,PBS洗滌數(shù)次后用流式細(xì)胞儀檢測表面分子標(biāo)記。

        1.6 增殖能力測定 收集第5代對數(shù)生長期ALFADMSCs和Nor-ADMSCs,制備單細(xì)胞懸液,以每孔2000個(gè)細(xì)胞接種于96孔板(100μL/孔),并置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)24h后取出一塊96孔板,每孔加入10μL CCK8溶液,隨后在CO2培養(yǎng)箱中孵育3h,酶標(biāo)儀450nm處測定各孔吸光度值(OD值)。每天同一時(shí)間取出一塊96孔板重復(fù)以上操作,連續(xù)監(jiān)測7d,每個(gè)時(shí)間點(diǎn)重復(fù)4次,計(jì)算每組細(xì)胞OD值。

        1.7 多向分化潛能鑒定 取生長狀況良好的第4代ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs,接種于6孔板內(nèi),每孔1×105個(gè)細(xì)胞,待細(xì)胞達(dá)到100%融合后更換為成骨、成脂、成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基。其中,成骨分化加入成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每隔3d換液,連續(xù)培養(yǎng)21d后行茜素紅S染色。成脂分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基配制如下:誘導(dǎo)培養(yǎng)第0d,即第一次加入誘導(dǎo)培養(yǎng)基,在含10%FBS的低糖培養(yǎng)基中加入insulin 5μg/mL,T3 1nM,吲哚美辛 0.125μM,地塞米松 2μg/mL,3-異丁基-1-甲基黃嘌呤 0.5mM,rosiglitazone 0.5μM。誘導(dǎo)培養(yǎng)第 2d,在含10%FBS的低糖培養(yǎng)基中加入insulin 5μg/mL,T3 1nM,rosiglitazone 0.5μM。誘導(dǎo)培養(yǎng)第 4d,在含 10%FBS的低糖培養(yǎng)基中加入insulin 5μg/mL,T3 1nM,rosiglitazone 1μM。第6d誘導(dǎo)培養(yǎng)基同第4d,共誘導(dǎo)8d,可見脂滴形成,并進(jìn)行油紅O染色。成軟骨分化加入軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每隔3d換液,連續(xù)培養(yǎng)21d后行阿利新藍(lán)染色。

        誘導(dǎo)結(jié)束后用Trizol法提取細(xì)胞總RNA,RT-qPCR檢測成骨、成脂、成軟骨特異性標(biāo)記物的表達(dá)。按照TaKaRa逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA(引物序列見表 1)。qPCR采用 UltraSYBR Mixture(Low ROX)說明書進(jìn)行操作,反應(yīng)條件如下:預(yù)變性:95℃ 10min,變性:95℃ 15s,退火延伸:60℃1min,40個(gè)循環(huán)。以 GAPDH為內(nèi)參基因,Nor-ADMSCs和ALF-ADMSCs未分化細(xì)胞為對照組,計(jì)算兩組細(xì)胞成骨、成脂、成軟骨待測基因2-ΔΔCt值并進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,每組實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3次。

        1.8 成肝誘導(dǎo)分化及鑒定 參照參考文獻(xiàn)[11]的誘導(dǎo)方法,取生長狀況良好的第4代ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs,加入肝細(xì)胞生長因子20ng/mL,成纖維細(xì)胞生長因子20ng/mL,地塞米松40nmol/mL,1%胰島素鐵硒傳遞蛋白,含5%FBS的低糖培養(yǎng)基,每隔2d換液1次,觀察細(xì)胞形態(tài),于誘導(dǎo)第21d進(jìn)行糖原染色,并收集細(xì)胞鑒定類肝細(xì)胞特異性標(biāo)志(引物序列見表1)。

        1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 應(yīng)用GraphPad Prism 6.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,所有計(jì)量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩組間均數(shù)比較采用t檢驗(yàn),多組間均數(shù)比較采用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 正常豬和肝衰竭豬血清生化及病理學(xué)檢測結(jié)果

        正常豬血清學(xué)指標(biāo)如下:丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶52.100IU/L、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶53.800IU/L、總膽紅素 1.740μmol/L、直接膽紅素 1.030μmol/L、血清總蛋白37.980g/L、白蛋白70.800g/L。肝衰竭豬血清學(xué)指標(biāo):丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶437.300IU/L、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶13805.000IU/L、總膽紅素32.570μmol/L、直接膽紅素24.650μmol/L、血清總蛋白37.840g/L、白蛋白61.500g/L。與正常豬相比,肝衰竭豬血清中丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶、總膽紅素、直接膽紅素水平顯著升高,血清總蛋白及白蛋白降低。正常豬肝組織切片HE染色顯示肝小葉結(jié)構(gòu)完整,無肝細(xì)胞腫大和壞死。肝衰竭豬肝組織切片可見肝細(xì)胞界限不清,呈大片狀壞死,壞死區(qū)可見炎癥細(xì)胞浸潤,肝竇淤血擴(kuò)張(見插頁圖1)。血清學(xué)指標(biāo)及病理組織學(xué)表明成功建立豬肝衰竭模型。

        表1 引物序列

        2.2 細(xì)胞形態(tài)比較 ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs在接種24h后均可見以散在的方式貼壁生長,以長梭形為主,散在一些多角形、長圓形細(xì)胞,細(xì)胞增殖較緩慢,原代培養(yǎng)第4d細(xì)胞達(dá)90%融合(圖2A、B)。按1:2傳代至第5代時(shí),兩組細(xì)胞均增殖加速,細(xì)胞質(zhì)豐富,細(xì)胞變大而扁平,同時(shí)以集落方式生長,呈漩渦狀分布(見插頁圖2C、D)。

        2.3 流式細(xì)胞表型鑒定比較 流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果顯示,第 3代 ALF-ADMSCs CD105、CD90、CD14表達(dá)陽性率分別為(79.47±6.78)%、(56.83±4.23)%、(0.17±0.05)%。第 3代 Nor-ADMSCs CD105、CD90、CD14 表達(dá)陽性率分別為(77.7±4.60)%、(59.47±7.49)%、(0.03±0.05)%。結(jié)果表明,ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs均高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)記CD105、CD90,不表達(dá)或低表達(dá)干細(xì)胞表面標(biāo)記CD14(見插頁圖 3)。

        2.4 細(xì)胞增殖比較 通過CCK8法對第5代ALFADMSCs和Nor-ADMSCs的生長趨勢進(jìn)行了對比分析(表2)。通過比較兩組細(xì)胞450nm處OD值可以看出,兩組細(xì)胞的增殖速率十分相似,在第1~2d非常緩慢,處于細(xì)胞生長潛伏期,在培養(yǎng)第4d后進(jìn)入對數(shù)生長期,第7d后細(xì)胞生長放慢。兩組細(xì)胞之間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表 2。

        2.5 多向分化潛能比較 在成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)第21d,兩組細(xì)胞茜素紅S染色顯示,細(xì)胞胞漿內(nèi)均可見被染為紅色的礦化結(jié)節(jié)(圖4A、B)。成脂誘導(dǎo)第8d,兩組細(xì)胞油紅O染色顯示,細(xì)胞胞漿可見小而圓的紅色脂肪滴(圖4C、D)。成軟骨誘導(dǎo)培養(yǎng)第21d,兩組細(xì)胞阿利新蘭染色可見單個(gè)分布的軟骨細(xì)胞,細(xì)胞呈不規(guī)則形,胞核呈圓形或橢圓形(見插頁圖4E、F)。RT-qPCR結(jié)果顯示,成骨分化21d后ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs中成骨標(biāo)記物[堿性磷酸酶(alkaline phosphatase)、骨橋蛋白(osteopontin)]顯著增加,脂肪分化8d后ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs中脂肪源性標(biāo)記物[脂蛋白(LPA)和過氧化物酶體增殖物激活受體(PPARy2)]均顯著增加,軟骨分化21d后ALFADMSCs和Nor-ADMSCs中軟骨標(biāo)記物[聚蛋白多糖(Aggrecan)和Ⅱ型膠原蛋白(ColⅡ)]均顯著增加(表3)。

        表2ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs細(xì)胞增殖能力比較(OD 值,±s)

        表2ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs細(xì)胞增殖能力比較(OD 值,±s)

        注:每個(gè)時(shí)間點(diǎn)重復(fù)4次,計(jì)算兩組細(xì)胞OD值;ALF-ADMSCs:急性肝衰竭豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞;Nor-ADMSCs:正常豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞

        時(shí)間(天)1 2 3 4 5 6 7 n 4 4 4 4 4 4 4 Nor-ADMSCs 0.095±0.003 0.129±0.007 0.351±0.006 0.422±0.015 0.679±0.023 1.159±0.099 1.306±0.026 ALF-ADMSCs 0.101±0.004 0.164±0.004 0.380±0.005 0.464±0.012 0.690±0.031 1.238±0.022 1.384±0.034

        2.6 成肝分化潛力比較 ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs誘導(dǎo)21d后,均可見不規(guī)則多邊形的類肝細(xì)胞形成,糖原染色可見細(xì)胞胞漿內(nèi)紫色沉淀(見插頁圖 5)。

        RT-qPCR檢測ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs成肝分化后兩組細(xì)胞白蛋白(ALB)、肝細(xì)胞生長因子(HGF)、葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(G6PD)、肝細(xì)胞核因子-1A(HNF1A)和肝細(xì)胞核因子-1B(HNF1B)等肝細(xì)胞特異性標(biāo)記物的表達(dá),結(jié)果顯示,ALFADMSCs和Nor-ADMSCs均高表達(dá)肝細(xì)胞表面標(biāo)記物,但兩組細(xì)胞間表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

        表3 兩組細(xì)胞成骨、成脂、成軟骨及成肝分化后特異性基因相對表達(dá)量(2-ΔΔCt值,±s)

        表3 兩組細(xì)胞成骨、成脂、成軟骨及成肝分化后特異性基因相對表達(dá)量(2-ΔΔCt值,±s)

        注:每個(gè)基因重復(fù)檢測 3 次,計(jì)算 2-ΔΔCt值。alkaline phosphatase:堿性磷酸酶;osteopontin:骨橋蛋白;Aggrecan:聚蛋白多糖;ColⅡ:Ⅱ型膠原蛋白;LPA:脂蛋白;PPARy2:過氧化物酶體增殖物激活受體;ALB:白蛋白;G6PD:葡糖糖-6-磷酸脫氫酶;HGF:肝細(xì)胞生長因子;HNF1A:肝細(xì)胞核因子-1A;HNF1B:肝細(xì)胞核因子-1B;ALFADMSCs:急性肝衰竭豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞;Nor-ADMSCs:正常豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞

        基因alkaline phosphatase osteopontin Aggrecan colⅡLPA PPARy2 ALB G6PD HGF HNF1A HNF1B n 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 Nor-ADMSCs 3.241±0.062 2.903±0.584 2.702±0.601 5.411±1.301 74.242±8.383 5.802±0.222 2.603±0.321 2.831±0.382 2.432±0.532 2.014±0.303 2.512±0.164 ALF-ADMSCs 3.592±0.250 4.262±0.560 1.761±0.322 4.633±0.651 56.234±8.461 4.072±0.160 2.801±0.622 2.733±0.111 2.021±0.212 2.170±0.011 2.291±0.164

        RT-qPCR檢測未分化ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs中肝細(xì)胞特異性基因的表達(dá),結(jié)果顯示,與Nor-ADMSCs相比,ALF-ADMSCs中HGF的表達(dá)高于 Nor-ADMSCs (12.48±0.59)倍(P<0.01)。ALB、HNF1A、HNF1B、G6PD的表達(dá)兩組細(xì)胞差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表 4。

        3 討論

        間充質(zhì)干細(xì)胞可通過免疫調(diào)節(jié)、抗炎作用、旁分泌作用以及體內(nèi)直接分化為肝細(xì)胞樣細(xì)胞,從而促進(jìn)肝再生,發(fā)揮治療終末期肝病的作用[12]。研究表明,67(±0.8)mL大腿外側(cè)脂肪抽吸物中可得到12.31(±1.2)×106間充質(zhì)干細(xì)胞,ADMSCs獲取方便,細(xì)胞產(chǎn)量相當(dāng)可觀,在MSC治療肝臟疾病中引起了極大的關(guān)注[13]。多項(xiàng)急性肝衰竭動(dòng)物模型表明,脂肪來源的MSCs可顯著改善模型動(dòng)物的肝臟血清學(xué)指標(biāo),病理組織形態(tài)及生存率等[14-15]。

        本研究主要比較兩種來源的ADMSCs的體外特征。結(jié)果顯示,兩組細(xì)胞形態(tài)并無差異,增殖能力相似,多向分化潛能相當(dāng),且均高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面分子標(biāo)記物,低表達(dá)造血干細(xì)胞標(biāo)記物。ALFADMSCs可在體外誘導(dǎo)分化為類肝細(xì)胞,與Nor-ADMSCs相比,兩者成肝分化潛能相當(dāng)。本研究結(jié)果顯示,ALF-ADMSCs高表達(dá)HGF。HGF具有抗細(xì)胞凋亡、抗纖維化和促細(xì)胞再生的功能,在肝細(xì)胞的發(fā)育和再生中起著不可替代的作用,其為各種組織來源的干細(xì)胞體外分化為肝細(xì)胞提供微環(huán)境,并且是分化為類肝細(xì)胞的關(guān)鍵因素。提示我們,ADMSCs在肝衰竭微環(huán)境的影響下高表達(dá)HGF,這將為細(xì)胞自體移植治療終末期肝病提供依據(jù)。

        表4ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs中肝臟特異性基因的表達(dá)量(2-ΔΔCt值,±s)

        表4ALF-ADMSCs和Nor-ADMSCs中肝臟特異性基因的表達(dá)量(2-ΔΔCt值,±s)

        注:與 Nor-ADMSCs比較,**P<0.01。每個(gè)時(shí)間點(diǎn)重復(fù) 4 次,計(jì)算 2-ΔΔCt;ALF-ADMSCs:急性肝衰竭豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞;Nor-ADMSCs:正常豬脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞;ALB:白蛋白;HNF1A:肝細(xì)胞核因子-1A;HNF1B:肝細(xì)胞核因子-1B;HGF:肝細(xì)胞生長因子;G6PD:葡糖糖-6-磷酸脫氫酶

        基因ALB HNF1A HNF1B HGF G6PD n 3 3 3 3 3 Nor-ADMSC 1.000±0.060 1.000±0.060 1.000±0.060 1.000±0.060 1.000±0.060 ALF-ADMSC 0.791±0.145 1.524±0.132 1.502±0.291 12.484±0.593**0.764±0.082

        綜上所述,肝衰竭不影響ADMSCs的細(xì)胞形態(tài)學(xué),增殖能力,MSC特異性標(biāo)記物的表達(dá)以及多向分化潛能。但ALF-ADMSCs可在體外高表達(dá)HGF,與Nor-ADMSCs體外成肝分化潛能相比,二者卻并無差異。有文獻(xiàn)報(bào)道[16],過表達(dá)HGF的ADMSCs可顯著改善輻射誘導(dǎo)的大鼠肝損傷模型,增強(qiáng)ADMSCs的治療潛力,因此,還需在體內(nèi)繼續(xù)驗(yàn)證急性肝衰竭來源的ADMSCs是否優(yōu)于正常供者來源的ADMSCs,進(jìn)一步明確來自肝損傷患者的ADMSCs是否以某種方式改變進(jìn)而影響其治療潛能。

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