姚芝芬, 于 明, 龔正鵬**
(1.貴州醫(yī)科大學(xué), 貴州 貴陽 550004; 2.貴州醫(yī)科大學(xué)附院 耳鼻咽喉頭頸外科, 貴州 貴陽 550004)
最新數(shù)據(jù)顯示,2017年美國喉癌的新發(fā)病例約13 360例、死亡病例約3 360例[1],2015年中國喉癌新發(fā)病例約26 400例、死亡病例約14 500例[2]。目前,分子靶向治療已經(jīng)應(yīng)用于多種癌癥,然而,對(duì)于局部晚期和轉(zhuǎn)移性喉癌而言,還需進(jìn)一步研究,建立更有效的治療靶點(diǎn)。CrkII(CT10 regulator of kinase)是一種重要的信號(hào)接頭蛋白,參與細(xì)胞各種生理和病理過程,如調(diào)控細(xì)胞增殖、凋亡、遷移和侵襲等,從而促進(jìn)腫瘤的發(fā)生發(fā)展,影響癌癥的預(yù)后[3]。據(jù)報(bào)道,CrkII高表達(dá)是促進(jìn)各種人類癌癥的惡性生物學(xué)特征的原因,如肺癌[4]、成膠質(zhì)母細(xì)胞瘤[5]、前列腺癌[6]、胰腺癌[7]和乳腺癌[8]等。因此,本研究采用RNA干擾技術(shù)敲低Hep-2細(xì)胞中CrkII的表達(dá),觀察其對(duì)細(xì)胞惡性生物學(xué)特征的影響,探討CrkII作為喉癌治療新靶點(diǎn)的可能。
Hep-2細(xì)胞獲贈(zèng)于重慶醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院頭頸腫瘤課題組,CrkII RNA干擾質(zhì)粒及陰性對(duì)照質(zhì)粒購自上海吉瑪公司。質(zhì)粒載體pGPU6/RFP/Neo,shRNA靶序列為GGATCAACAGAATCCCGATGA,陰性對(duì)照靶序列GTTCTCCGAACGTGTCACGT。RPMI-1640、0.25%胰蛋白酶及PBS購自Hyclone公司(美國),胎牛血清及Opti-MEM購自Gibco公司(美國),Lipofectamine2000(美國Invitrogen公司),Trizol試劑(美國ambion),SYBR Green PCR試劑盒購自KAPA Biosystems公司(美國),逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa公司),MTT、RIPA組織細(xì)胞快速裂解液、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒和辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的抗兔二抗均購自Bioswamp,蛋白質(zhì)Marker(美國Thermo公司),十二烷基硫酸鈉(SDS )、TEMED及過硫酸銨購自Sigma公司(美國),ECL發(fā)光試劑(德國Millipore),兔抗CrkII抗體(英國Abcam公司),兔抗GAPDH抗體(美國Cell Signaling公司),Transwell 小室(美國 Corning公司),熒光定量PCR 儀(Real-Time System,BIO-RAD)。
1.2.1細(xì)胞培養(yǎng)、轉(zhuǎn)染與分組 Hep-2細(xì)胞使用含有10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液在37 ℃含5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞于轉(zhuǎn)染前1天接種至6孔板,當(dāng)細(xì)胞融合度達(dá)到70%左右時(shí)開始轉(zhuǎn)染,將質(zhì)粒和脂質(zhì)體分別加入150 μL無血清培養(yǎng)基中稀釋5 min,后將兩稀釋液混合以配制轉(zhuǎn)染復(fù)合物(質(zhì)粒和脂質(zhì)體按照1∶2比例),靜置20 min,隨后將復(fù)合物加入培養(yǎng)板中,使其與細(xì)胞充分反應(yīng)。轉(zhuǎn)染后4~6 h更換含10%胎牛血清的新鮮培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng),用于后續(xù)各項(xiàng)指標(biāo)的檢測(cè)。實(shí)驗(yàn)分為實(shí)驗(yàn)組(轉(zhuǎn)染CrkII RNA干擾質(zhì)粒)、陰性對(duì)照組(轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照質(zhì)粒)和空白對(duì)照組(未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒),實(shí)驗(yàn)每組設(shè)置3個(gè)重復(fù),獨(dú)立重復(fù)3次。
1.2.2Real-time PCR 轉(zhuǎn)染48 h后,使用Trizol法提取細(xì)胞總RNA,檢測(cè)RNA的濃度和純度,根據(jù)TAKARA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書合成cDNA,采用Real-time PCR對(duì)其進(jìn)行擴(kuò)增。β-actin和CrkⅡ的上下游引物序列見表1。反應(yīng)條件為:95 ℃變性3 min,95 ℃ 5 s、56 ℃ 10 s、72 ℃ 25 s(39個(gè)循環(huán)),95 ℃ 50 s,65 ℃ 5 s?;蛳鄬?duì)表達(dá)量按2-△△Ct法計(jì)算。
表1 Real-time PCR引物序列Tab.1 Primer sequences for Real-time PCR
1.2.3Western blot 轉(zhuǎn)染后48 h收集細(xì)胞提取總蛋白,采用BCA法測(cè)定蛋白濃度,蛋白量調(diào)整一致后取樣,沸水浴10 min使蛋白變性后離心取上清上樣,經(jīng)電泳分離后,電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,用含5%脫脂奶粉的TBST室溫封閉2 h;加入一抗anti-CrkⅡ(1∶10 000)和anti-β-actin(1∶1 000),4 ℃過夜;TBST 洗滌 8 min(5次),加入HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1∶500)二抗,室溫下反應(yīng)1 h,TBST洗滌 8 min(5次),化學(xué)發(fā)光法顯影。收集對(duì)數(shù)期細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞懸液濃度至1×104mL,接種至96孔板,37 ℃培養(yǎng)過夜;每孔加MTT 20 μL(5×103mg/L),繼續(xù)培養(yǎng) 4 h;吸掉上清,每孔加入 DMSO 150 μL,置搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解;在24 h、48 h、72 h時(shí)取出1塊96孔板,酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀在490 nm波長(zhǎng)處測(cè)量各孔的吸光(OD)值。
1.2.4Transwell侵襲實(shí)驗(yàn) 用含有1% FBS的DMEM重懸轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞稀釋至1×108個(gè)/L,接種到transwell小室內(nèi),每個(gè)小室加0.5 mL細(xì)胞懸液,下層的24孔板中加入0.75 mL含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液,置于37 ℃培養(yǎng)箱中24 h;每孔加4%甲醛溶液1 mL,室溫固定10 min;染色:吸去固定液,用PBS洗滌1次,每孔加入 0.1%結(jié)晶紫溶液1 mL,染色30 min后用PBS洗3次,晾干。用棉簽小心擦去transwell小室內(nèi)沒有遷移的細(xì)胞,倒置顯微鏡下觀察,計(jì)數(shù)。
1.2.5細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn) 將細(xì)胞濃度濃度為5×108個(gè)/L加入6孔板中,每孔加2 mL細(xì)胞,待細(xì)胞融合到80%左右進(jìn)行轉(zhuǎn)染,第2天用槍頭垂直于6孔板底劃痕,PBS洗3次,加入無血清培養(yǎng)液,置于37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱。分別于0 h、24 h、48 h拍照。
圖1可見,空白對(duì)照組與陰性對(duì)照組Hep-2細(xì)胞CrkII mRNA表達(dá)水平比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=0.134,P>0.05),實(shí)驗(yàn)組CrkII mRNA表達(dá)水平較空白對(duì)照、陰性對(duì)照明顯降低(t=19.332、11.644,P<0.01)。圖2可見,實(shí)驗(yàn)組Hep-2細(xì)胞CrkII蛋白的表達(dá)水平較空白對(duì)照和陰性對(duì)照明顯降低(t=24.301、18.796,P<0.01),而陰性對(duì)照組Hep-2細(xì)胞CrkII蛋白的表達(dá)與空白對(duì)照組比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=0.527,P>0.05),提示pGPU6/RFP/Neo-CrkII質(zhì)??捎行б种艸ep-2細(xì)胞CrkIImRNA和蛋白質(zhì)水平的表達(dá)。
(1)與實(shí)驗(yàn)組比較,P<0.01圖1 Hep-2細(xì)胞中CrkII mRNA 表達(dá)(Real-time PCR)Fig.1 The level of CrkII mRNA in Hep-2 cells
(1)與實(shí)驗(yàn)組比較,P<0.01圖2 Hep-2細(xì)胞中CrkII蛋白表達(dá)(Western blot) Fig.2 The expression of CrkII protein in Hep-2 cells
如圖3,轉(zhuǎn)染后,MTT結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)組Hep-2細(xì)胞在各時(shí)間點(diǎn)OD值均比空白對(duì)照與陰性對(duì)照組低(P<0.01),空白對(duì)照組與陰性對(duì)照組OD值比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),表明CrkII基因沉默后可以顯著降低Hep-2細(xì)胞的增殖。
Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組Hep-2細(xì)胞穿過微孔膜到達(dá)下室的細(xì)胞數(shù)目分別為(155±7)個(gè)、(157±6)個(gè),兩組比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=0.256,P>0.05);實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞穿過微孔膜到達(dá)下室的平均細(xì)胞數(shù)目為(97±8)個(gè),較空白對(duì)照組和陰性對(duì)照組均明顯減少(t=10.226、9.707,P<0.01)。如圖4。
(1)與實(shí)驗(yàn)組比較,P<0.01圖3 下調(diào)接頭蛋白CrkII對(duì)Hep-2細(xì)胞增殖的影響(MTT)Fig.3 Effect of down-regulated junction protein CrkII on the proliferation of Hep-2 cells
(1)與實(shí)驗(yàn)組比較,P<0.01圖4 下調(diào)CrkII蛋白對(duì)Hep-2細(xì)胞侵襲能力的影響(Transwell,×200)Fig.4 Effect of down-regulation of CrkII protein on invasion of Hep-2 cells
如圖5所示,顯微鏡下(×100)劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,隨著時(shí)間的延長(zhǎng),實(shí)驗(yàn)組劃痕區(qū)寬度稍有縮窄,空白對(duì)照組和陰性對(duì)照組劃痕區(qū)寬度明顯縮小;結(jié)果顯示,48 h時(shí)實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞遷移距離比空白對(duì)照組和陰性對(duì)照組顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=8.591、19.666,P<0.01),空白對(duì)照組與陰性對(duì)照組遷移距離比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=1.403,P>0.05),提示下調(diào)CrkII表達(dá)可抑制Hep-2細(xì)胞的遷移能力。
(1)與實(shí)驗(yàn)組比較,P<0.01圖5 下調(diào)CrkII蛋白對(duì)Hep-2細(xì)胞遷移能力的影響(劃痕實(shí)驗(yàn),×100)Fig.5 Effect of down-regulation of CrkII protein on migration of Hep-2 cells
惡性腫瘤的特性中轉(zhuǎn)移是決定性標(biāo)志,在臨床治療過程中轉(zhuǎn)移也是主要的難點(diǎn),腫瘤的轉(zhuǎn)移在細(xì)胞生物學(xué)行為上主要體現(xiàn)為侵襲與遷移性[9,10]。研究表明,接頭蛋白CrkⅡ在乳腺癌[11]、肺腺癌[12]、口腔鱗癌[13]等組織標(biāo)本中高表達(dá),且與癌癥的進(jìn)展及不良預(yù)后有關(guān),尤其是CrkⅡ可明顯促進(jìn)腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移,并且,siRNA介導(dǎo)的CrkII敲除可顯著抑制癌細(xì)胞的生長(zhǎng)、侵襲和轉(zhuǎn)移[5]。因此認(rèn)為CrkII可能是治療這些惡性腫瘤的有效治療靶點(diǎn)。
CrkII作為接頭蛋白通過連接酪氨酸激酶和小G蛋白在細(xì)胞生長(zhǎng)、運(yùn)動(dòng)、粘附、增殖、分化和凋亡過程中調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄和細(xì)胞骨架重構(gòu)[3,14]。CrkII通過其SH2結(jié)構(gòu)域與上游酪氨酸激酶受體或粘著斑成分如p130Cas和樁蛋白(paxillin)相連接,并通過其N端SH3結(jié)構(gòu)域?qū)⑿盘?hào)傳遞向下傳導(dǎo),N端SH3結(jié)構(gòu)域可結(jié)合C3G、SOS和DOCK180將信號(hào)傳遞至小G蛋白,Sos主要參與激活Ras-MAPK信號(hào)傳導(dǎo),而C3G和Dock180則促進(jìn)小G蛋白R(shí)ap1、R-Ras和Rac中GDP與GTP的交換[3,15]。Ras-Raf-ERK-MAPK級(jí)聯(lián)反應(yīng)可促進(jìn)癌細(xì)胞增殖、存活、遷移和血管生成[16]。p130Cas與Crk-C3G復(fù)合物結(jié)合能激活Rap1而調(diào)節(jié)細(xì)胞的粘附,并可以激活R-Ras,從而誘導(dǎo)JNK介導(dǎo)的細(xì)胞增殖活化,而p130Cas與Crk-DOCK180蛋白結(jié)合則誘導(dǎo)Rac1激活介導(dǎo)細(xì)胞遷移[17,18]。
為探究CrkII在喉癌中的作用,本研究采用RNA干擾技術(shù),下調(diào)喉癌Hep-2細(xì)胞中CrkII蛋白的表達(dá),且通過Real-time PCR及Western blot實(shí)驗(yàn)證實(shí)CrkⅡ基因沉默后CrkⅡ在轉(zhuǎn)錄后水平及蛋白水平的表達(dá)明顯下降。MTT結(jié)果顯示實(shí)驗(yàn)組的Hep-2細(xì)胞數(shù)隨著時(shí)間的延長(zhǎng)較對(duì)照組明顯減少,提示隨著CrkII的表達(dá)下調(diào)Hep-2細(xì)胞的增殖受抑制。既往研究中,Liu等[7]人敲低CrkII的表達(dá)后胰腺導(dǎo)管細(xì)胞癌也展現(xiàn)出了增殖能力的減弱,此外,在體外實(shí)驗(yàn)也得出相同結(jié)論。Matsumoto[19]等人也在膀胱癌中發(fā)現(xiàn)這一現(xiàn)象,CrkII敲除后膀胱癌細(xì)胞增殖能力下降,成瘤能力受抑制。以上現(xiàn)象可推測(cè)是由于CrkII表達(dá)下調(diào)后經(jīng)其激活傳遞的增殖信號(hào)也受到影響,可檢測(cè)到Erk1/2和Akt的磷酸化水平降低,細(xì)胞周期停滯在G1期[7]。
細(xì)胞遷移能力實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,下調(diào)CrkII的表達(dá)后Hep-2細(xì)胞遷移能力明顯受抑制。細(xì)胞遷移的過程十分復(fù)雜,涉及肌動(dòng)蛋白骨架重構(gòu)、細(xì)胞黏附的改變、細(xì)胞外基質(zhì)的重塑等以及在這個(gè)過程中涉及的復(fù)雜的信號(hào)調(diào)節(jié)[20]。細(xì)胞遷移、侵襲并且定植于遠(yuǎn)處器官就得經(jīng)歷從原發(fā)腫瘤脫落和獲得運(yùn)動(dòng)表型。從以往的研究中可發(fā)現(xiàn),整合素信號(hào)經(jīng)p130Cas-Crk-Dock180復(fù)合物傳遞后可使Rac1大量激活,從而刺激細(xì)胞肌動(dòng)蛋白骨架重構(gòu),使偽足延伸,并促進(jìn)粘著斑形成,最終引起細(xì)胞的遷移[21]。CrkII表達(dá)下調(diào)后影響整合素信號(hào)傳遞,由此可見,Hep-2細(xì)胞遷移能力與CrkII的表達(dá)水平有關(guān)。Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明下調(diào)CrkII的表達(dá)后,Hep-2細(xì)胞的侵襲能力與遷移能力一致收到影響,實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞侵襲能力明顯下降。既往研究中也發(fā)現(xiàn)CrkII表達(dá)受抑制后細(xì)胞遷移和侵襲能力減弱。Dhupkar等[6]人在前列腺癌細(xì)胞株中敲除CrkII,結(jié)果顯示CrkII被敲除后前列腺癌的遷移與侵襲能力減弱。另外,Ryuji等[19]人膀胱癌中也發(fā)現(xiàn)CrkII表達(dá)下調(diào)后膀胱癌的遷移與侵襲能力明顯受影響。細(xì)胞內(nèi)CrkII的表達(dá)下調(diào)后出現(xiàn)細(xì)胞遷移、侵襲能力下降,可能是由于CrkII的表達(dá)下調(diào)影響整合素信號(hào)傳遞。此外,在肺癌中曾發(fā)現(xiàn)Crk和TGF-β可以構(gòu)成一個(gè)正反饋回路促進(jìn)上皮-間質(zhì)充轉(zhuǎn)化(EMT)[4]。在膀胱癌的研究中也發(fā)現(xiàn),HGF/c-Met/Crk反饋回路可誘導(dǎo)膀胱癌細(xì)胞發(fā)生EMT,進(jìn)而刺激膀胱癌細(xì)胞的遷移及侵襲[19]。因此,也不排除CrkII表達(dá)下調(diào)影響腫瘤細(xì)胞發(fā)生EMT有關(guān)。
綜上所述,CrkⅡ蛋白在喉癌Hep-2細(xì)胞的增殖、遷移及侵襲中起重要作用,RNA干擾下調(diào)CrkⅡ在Hep-2細(xì)胞中的表達(dá)后可明顯抑制細(xì)胞的惡性生物學(xué)特征,CrkⅡ作為惡性腫瘤的治療靶點(diǎn)還須進(jìn)一步深入的研究,希望可以為喉癌的治療提供新的選擇。
貴州醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2019年1期