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        HDAC1調(diào)控Wnt/β-catenin信號通路對乳腺癌細胞凋亡的影響*

        2019-01-21 12:28:58牟成金
        中國病理生理雜志 2019年1期
        關(guān)鍵詞:乳腺癌信號水平

        牟成金, 潘 武, 李 娟, 汪 靜

        [1四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院, 四川省人民醫(yī)院(東院), 四川 成都 610101; 2四川大學(xué)華西醫(yī)院乳腺外科, 四川 成都 610041]

        乳腺癌是一種常發(fā)生于女性的惡性腫瘤,其早期的臨床癥狀不明顯,當患者出現(xiàn)一定的臨床癥狀以后大部分已經(jīng)錯過了最佳的治療時機,因此探討乳腺癌的發(fā)病機制,尋找有效的靶基因治療乳腺癌是廣大醫(yī)學(xué)工作者目前研究的重點[1]。組蛋白脫乙酰酶1(histone deacetylase 1,HDAC1)具有調(diào)控細胞生長和凋亡等的作用,其可以影響相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄和表達,在非組蛋白和組蛋白的乙?;芯哂嘘P(guān)鍵作用[2]。HDAC1參與腫瘤的發(fā)生,在腫瘤中表達異常,例如乳腺癌、腎癌和膀胱癌等,并且HDAC1還可以通過多種途徑調(diào)控腫瘤細胞的凋亡等生物學(xué)特性[3-5]。Wnt/β-catenin在乳腺癌中過度激活,是一種與腫瘤細胞生長、凋亡密切相關(guān)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,HDAC1可以通過與Wnt/β-catenin的相互作用影響肝癌細胞的生長[6-7]。本研究探討HDAC1在乳腺癌細胞中的表達和敲減HDAC1對乳腺癌細胞活性和凋亡的影響及機制,為靶向HDAC1治療乳腺癌和研究HDAC1在腫瘤中的作用機制奠定基礎(chǔ)。

        材 料 和 方 法

        1 材料

        正常乳腺上皮細胞系MCF-10A及乳腺癌細胞系BT549、MCF-7和MDA-MB-231購自ATCC,均用含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)于95%空氣、5% CO2培養(yǎng)箱中,溫度設(shè)置為37 ℃,用0.25%的胰蛋白酶消化傳代??辜毎芷诘鞍譊1(cyclin D1)抗體購自Saierbio;抗cleaved caspase-3、β-catenin和c-Myc抗體購自CTS;MMLV-RT逆轉(zhuǎn)錄酶和RT-qPCR試劑盒購自大連寶生物;RNA提取試劑盒購自北京天根;抗HDAC1抗體購自Abcam;HDAC1 siRNA和siRNA control購自Seebio;Lipofectamine 2000購自Invitrogen。

        2 方法

        2.1RT-qPCR測定HDAC1 mRNA在細胞中的表達 收集正常乳腺上皮細胞系MCF-10A及乳腺癌細胞系BT549、MCF-7和MDA-MB-231,在細胞中分別添加TRIzol裂解液,按照細胞總RNA提取試劑盒說明書提取細胞中的總RNA。用MMLV-RT逆轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA。取cDNA進行RT-qPCR,反應(yīng)程序為:95 ℃ 2 min; 95 ℃ 30 s、60 ℃ 35 s, 40個循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參照,采用2-ΔΔCt法分析計算HDAC1在各組細胞中的mRNA水平。HDAC1的上游引物序列為5’-GGGTCAAGGAGGAGGTCAAG-3’, 下游引物序列為5’-TTGGCATTTCAGGAGTTTGTC-3’; GAPDH的上游引物序列為5’-CGGAGTCAACGGATTTGGTCGTAT-3’, 下游引物序列為5’-AGCCTTCTCCATGGTGGTGAAGAC-3’。

        2.2Western blot測定蛋白水平 收集正常乳腺上皮細胞系MCF-10A及乳腺癌細胞系BT549、MCF-7和MDA-MB-231,提取細胞中的總蛋白,把各組蛋白加入1/4體積的5×SDS上樣緩沖液中,在100 ℃反應(yīng)5 min。以12%的分離膠和4%的濃縮膠進行電泳,每個泳道中添加30 μg的蛋白樣品,在濃縮膠中以70 V電壓電泳大約30 min后,觀察染料進入到分離膠和濃縮膠的交接處,把電壓調(diào)整到100 V,繼續(xù)電泳約2.5 h,觀察染料進入底端以后,進行轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜條件為 4 ℃,300 mA,轉(zhuǎn)膜時間為100 min。用以TBST稀釋的牛血清白蛋白在室溫中封閉60 min。HDAC1 I抗以1∶300稀釋,把封閉后的膜放在稀釋好的 I 抗內(nèi),置于4 ℃過夜。 II 抗以1∶3 000稀釋,再把膜放在稀釋好的 II 抗中,置于室溫孵育2 h。ECL發(fā)光以后,曝光,用軟件分析各條帶的灰度值,用HDAC1灰度值與GAPDH灰度值的比值表示蛋白水平。Control、siRNA control和HDAC1 siRNA各組的細胞培養(yǎng)48 h以后,按照上述Western blot方法測定細胞內(nèi)cleaved caspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclin D1的蛋白水平。

        2.3細胞轉(zhuǎn)染和分組 MDA-MB-231細胞中轉(zhuǎn)染HDAC1 siRNA和siRNA control,轉(zhuǎn)染用Lipofectamine 2000脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染,步驟參照試劑說明書。以不做轉(zhuǎn)染處理的MDA-MB-231細胞為control組。各組細胞在轉(zhuǎn)染以后分別培養(yǎng)48 h,以RT-qPCR和Western blot法測定細胞中HDAC1 的mRNA和蛋白水平,步驟同上。

        2.4MTT法測定細胞活力 取種植于96孔板內(nèi)的各組細胞,培養(yǎng)48 h后,在細胞內(nèi)分別添加20 μL的MTT溶液,繼續(xù)孵育4 h。用移液槍把上清溶液吸除,每孔中分別添加150 μL的DMSO,觀察結(jié)晶物溶解以后,測定各孔490 nm的吸光度(A)值。A值越大表明細胞活力越高。

        2.5流式細胞術(shù)測定細胞凋亡 各組細胞培養(yǎng)48 h后,收集細胞,用500 μL的結(jié)合緩沖液重懸,添加Annexin V-FITC和PI分別5 μL,放置于室溫,避光反應(yīng)約15 min,流式細胞儀測定各組乳腺癌細胞凋亡。

        2.6激活Wnt/β-catenin信號通路后細胞凋亡情況的檢測 取轉(zhuǎn)染HDAC1 siRNA后的乳腺癌MDA-MB-231細胞,在細胞培養(yǎng)液中添加10 mmol/L的Wnt/β-catenin通路激活劑LiCl, 即HDAC1 siRNA+LiCl組。流式細胞術(shù)測定HDAC1 siRNA+LiCl和HDAC1 siRNA組細胞48 h的凋亡水平,Western blot測定HDAC1 siRNA+LiCl和HDAC1 siRNA組細胞培養(yǎng)48 h后細胞中cleaved caspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclin D1的蛋白水平,步驟同上。

        3 統(tǒng)計學(xué)處理

        實驗數(shù)據(jù)均用SPSS 21.0軟件進行數(shù)據(jù)處理和統(tǒng)計分析。所有數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示。兩組間比較均用獨立樣本t檢驗,多組間比較用單因素方差分析(one-way ANOVA),各組間兩兩比較用Bonferroni校正的t檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 HDAC1在乳腺癌細胞中高表達

        乳腺癌細胞系BT549、MCF-7和MDA-MB-231中HDAC1的mRNA和蛋白水平均明顯高于正常乳腺上皮細胞系MCF-10A(P<0.05),說明HDAC1在乳腺癌細胞中過度表達。其中MDA-MB-231細胞中HDAC1的mRNA和蛋白水平均明顯高于MCF-7和BT549細胞(P<0.05),故選用MDA-MB-231細胞做后續(xù)實驗,見圖1。

        2 HDAC1 siRNA下調(diào)乳腺癌細胞中HDAC1的表達

        siRNA control組細胞中HDAC1的mRNA和蛋白水平與control組相比差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性;HDAC1 siRNA組細胞中HDAC1 的mRNA和蛋白水平均明顯低于control組(P<0.05),見圖2。

        3 敲減HDAC1表達降低乳腺癌細胞活力并誘導(dǎo)細胞凋亡

        siRNA control組細胞的A值與凋亡率與control組相比差異沒有統(tǒng)計學(xué)顯著性;HDAC1 siRNA組細胞的A值明顯低于control組,凋亡率明顯高于control組(P<0.05),見圖3。

        Figure 1.The expression of HDAC1 at mRNA and protein levels in normal mammary epithelial cell line MCF-10A and breast cancer cell lines BT549, MCF-7 and MDA-MB-231. A: the mRNA expression of HDAC1 determined by RT-qPCR; B: the protein expression of HDAC1 determined by Western blot. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMCF-10A;#P<0.05vsMCF-7 or BT549.

        圖1HDAC1在正常乳腺上皮細胞系MCF-10A和乳腺癌細胞系BT549、MCF-7、MDA-MB-231中表達水平的比較

        4 敲減HDAC1表達誘導(dǎo)乳腺癌細胞中caspase-3活化并抑制Wnt/β-catenin信號通路激活

        siRNA control組細胞中cleaved caspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclin D1的蛋白水平與control組相比差異沒有統(tǒng)計學(xué)顯著性; 與control組相比,HDAC1 siRNA組細胞中的cleaved caspase-3水平明顯升高,β-catenin、c-Myc和cyclin D1水平明顯降低(P<0.05),見圖4。

        5 激活Wnt/β-catenin信號通路抑制HDAC1下調(diào)誘導(dǎo)的乳腺癌細胞凋亡

        Figure 2.The effect ofHDAC1 siRNA transfection on HDAC1 expression in the breast cancer cells. A: the mRNA expression of HDAC1 determined by RT-qPCR; B: the protein expression of HDAC1 determined by Wes-tern blot. Mean±SD.n=3.*P<0.05vssiRNA control group.

        圖2HDAC1siRNA對乳腺癌細胞中HDAC1表達的影響

        HDAC1 siRNA+LiCl組細胞的A值明顯高于HDAC1 siRNA組,凋亡率明顯低于HDAC1 siRNA組(P<0.05),見圖5。

        6 激活Wnt/β-catenin信號通路減弱HDAC1下調(diào)對細胞中cleaved caspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclin D1蛋白水平的影響

        與HDAC1 siRNA組相比,HDAC1 siRNA+LiCl組細胞中的cleaved caspase-3水平明顯降低,β-catenin、c-Myc和cyclin D1水平明顯升高(P<0.05),見圖6。

        討 論

        腫瘤的發(fā)生與組蛋白乙酰化有關(guān),當正常細胞內(nèi)組蛋白的乙?;叭ヒ阴;降钠胶獗淮蚱埔院螅蜁鸺毎恼4x及生長等發(fā)生異常,引起腫瘤的發(fā)生[8]。組蛋白脫乙酰酶可以將組蛋白去乙?;?,維持乙?;胶?。HDAC1是組蛋白脫乙酰酶家族中的成員,是目前發(fā)現(xiàn)的與腫瘤密切相關(guān)的成員之一,在腫瘤的轉(zhuǎn)移和發(fā)生中均有重要作用[9-10]。HDAC1高表達之后,腫瘤細胞的增殖活性明顯增強,HDAC1是所有組蛋白脫乙酰酶中與腫瘤關(guān)系最具有代表性的成員,其表達水平的高低與宮頸癌、肺癌、乳腺癌和胃癌等多種癌癥的進展和分期有關(guān),并且HDAC1還參與細胞內(nèi)增殖、凋亡等相關(guān)因子的表達[11-17]。本實驗的結(jié)果顯示,HDAC1在3株乳腺癌細胞中的表達水平均明顯高于正常的乳腺上皮細胞,這與上述研究報道一致,HDAC1在乳腺癌中高表達。

        研究報道顯示,HDAC1參與腫瘤細胞的有絲分裂,并且可以通過激活caspase-3誘導(dǎo)細胞凋亡的發(fā)生[18]。腫瘤細胞的生長和凋亡是細胞自發(fā)完成的一種主動過程,是經(jīng)過多重基因和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的嚴格過程[19]。Caspase-3在細胞凋亡中有重要作用,無論是線粒體途徑還是死亡受體途徑,最后都會激發(fā)caspase凋亡反應(yīng),使位于凋亡反應(yīng)下游的caspase-3激活,促進細胞凋亡[20-21]。本實驗表明,乳腺癌細胞中敲減HDAC1表達后,細胞中caspase-3的活化水平升高,細胞凋亡增加,細胞活性降低,提示敲減HDAC1表達可誘導(dǎo)caspase-3活化,促進乳腺癌細胞凋亡。

        Wnt/β-catenin信號通路是一個由多個作用位點和環(huán)節(jié)共同組成的與生長發(fā)育有關(guān)的信號通路,其在成熟的細胞中激活水平極低,細胞內(nèi)的β-catenin存在于細胞膜上,以復(fù)合物的形式存在[22]。在細胞受到相關(guān)信號刺激以后,β-catenin的降解受到抑制,引起細胞內(nèi)β-catenin大量聚集,進入到細胞核內(nèi),誘導(dǎo)下游靶基因c-myc、cyclinD1的轉(zhuǎn)錄[23]。Wnt/β-catenin信號通路與乳腺癌有關(guān),不僅參與乳腺癌干細胞的分化增殖,還與乳腺癌細胞的生長凋亡有關(guān)[24]。最近的研究顯示,HDAC1與Wnt/β-catenin存在一定的潛在關(guān)系,對于細胞的生長和凋亡具有調(diào)控作用[25-27]。本實驗結(jié)果表明,敲減HDAC1表達可以抑制Wnt/β-catenin信號通路的激活,而Wnt/β-catenin激活劑可以部分逆轉(zhuǎn)敲減HDAC1表達誘導(dǎo)的乳腺癌細胞凋亡,敲減HDAC1表達通過抑制Wnt/β-catenin信號通路誘導(dǎo)乳腺癌細胞凋亡。

        Figure 3.The effects ofHDAC1 knockdown on the viability and apoptosis of breast cancer cells. A: the cell viability detected by MTT assay; B: the images of flow cytometry for cell apoptosis and quantitative analysis of the apoptotic rate. Mean±SD.n=3.*P<0.05vssiRNA control group.

        圖3敲減HDAC1表達對乳腺癌細胞活力和凋亡的影響

        Figure 4.The effects ofHDAC1 knockdown on the protein levels of cleaved caspase-3, β-catenin, c-Myc and cyclin D1 in the breast cancer cells. Mean±SD.n=3.*P<0.05vssiRNA control group.

        圖4敲減HDAC1對乳腺癌細胞中cleavedcaspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclinD1蛋白水平的影響

        HDAC1在乳腺癌中高表達,敲減HDAC1表達可以誘導(dǎo)乳腺細胞的凋亡,是一種潛在的治療乳腺癌的基因靶點。敲減HDAC1表達可以通過抑制Wnt/β-catenin信號通路的激活誘導(dǎo)乳腺癌細胞的凋亡,對于其在其他多株乳腺癌細胞中的作用需要在后續(xù)實驗中進行驗證。本研究結(jié)果對于研究HDAC1在乳腺癌中的作用提供了新的資料。

        Figure 5.The effects of activation of Wnt/β-catenin signaling pathway onHDAC1 knockdown-induced apoptosis of the breast cancer cells. A: the cell viability detected by MTT assay; B: flow cytometry was used to analyze cell apoptosis and quantitative analysis of the apoptotic rate. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsHDAC1 siRNA group.

        圖5激活Wnt/β-catenin信號通路對HDAC1下調(diào)誘導(dǎo)的乳腺癌細胞凋亡的影響

        Figure 6.The effects of Wnt/β-catenin signaling pathway activation on the protein levels of cleaved caspase-3, β-catenin, c-Myc and cyclin D1 protein in the breast cancer cells withHDAC1 knockdown determined by Western blot. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsHDAC1 siRNA group.

        圖6激活Wnt/β-catenin信號通路對敲減HDAC1表達的乳腺癌細胞中cleavedcaspase-3、β-catenin、c-Myc和cyclinD1蛋白水平的影響

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