林 駿 山 云 劉 謙 王曉煒 王洪濤 劉 堯

(深圳市藥品檢驗研究院 深圳市醫(yī)療器械檢測中心，深圳518057)

1975年德國科學家Kohler和英國科學家Milstein將能產(chǎn)生抗體的B淋巴細胞與能永生的髓瘤細胞融合成雜交瘤細胞，成功建立了表達單克隆抗體技術(shù)[1]。單個B細胞抗體制備技術(shù)是借助PCR方法的發(fā)展和抗體生產(chǎn)的成熟使得通過單細胞RT-PCR，在體外進行克隆和表達，使單個人類B細胞產(chǎn)生單克隆抗體成為可能。與傳統(tǒng)的單克隆抗體技術(shù)相比，單個B細胞技術(shù)需要的細胞量少，基因多樣性好、效率高、可全人源、同時保留了自然的重鏈和輕鏈[2]。

CRP(C-reactive protein)是一種非特異性炎癥標志物，正常的人血清濃度在5～10 mg/L之間，晚期妊娠婦女、輕度炎癥和病毒感染(10～40 mg/L)、活躍炎癥、細菌感染(40～200 mg/L)、嚴重細菌感染和燒傷(>200 mg/L)。CRP在炎癥開始后2 h內(nèi)上升，48 h內(nèi)達到峰值，半衰期為18 h，CRP在臨床上常作為急性炎癥和感染的診斷指標[3]。目前的研究證明CRP不僅作為炎癥預(yù)示因子，其本身也作為一種促炎因子與動脈粥樣硬化等疾病息息相關(guān)，人血漿內(nèi)CRP濃度在1～10 mg/L濃度的高低與心血管疾病密切相關(guān)[4-6]。高敏CRP診斷(high-sensitivity CRP，hs-CRP)檢測靈敏度高，能準確定量 0.1～10 mg/L濃度范圍內(nèi)的 CRP含量，但是hs-CRP 診斷試劑盒和主要單抗原料依賴進口，價格昂貴不利推廣[7]。本研究的目的是利用單個B細胞抗體制備技術(shù)結(jié)合Exip 293真核表達系統(tǒng)制備高靈敏CRP單克隆抗體，并經(jīng)過試驗獲得兩個能檢測人CRP的單克隆抗體，初步建立并評估了雙抗體夾心ELISA生物素-親和素檢測體系。

1 材料與方法

1.1實驗材料、試劑 載體pcDNA3.1(+)，限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和XhoⅠ，Expi 293真核表達系統(tǒng)購自Thermo Fisher公司；菌株E.coli DH5α由本實驗室保存；實驗動物BALB/c小鼠購自北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司；去內(nèi)毒素質(zhì)粒抽提試劑盒、Ni-NTA親和層析柱、Protein A純化層析柱、Western blot試劑、快速銀染試劑盒、生物素、HRP-鏈霉親和素購自生工生物工程(上海)股份有限公司；ELISA板購自美國康寧公司； TMB單組分顯色液購自北京索萊寶科技有限公司；全波長酶標儀購自Thermo Fisher公司。

1.2實驗方法

1.2.1CRP重組蛋白的制備與鑒定 對GenBank提供的CRP 全長基因編碼序列進行分析，在編碼序列兩端加上酶切位點EcoRⅠ和XhoⅠ及保護堿基進行全基因合成。雙酶切載體 pcDNA3.1(+)后與同樣酶切過的 CRP 基因片段連接轉(zhuǎn)化，構(gòu)建重組質(zhì)粒并送往華大基因進行測序。將測序結(jié)果比對正確的CRP重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染進Expi 293真核表達系統(tǒng)中進行表達。

1.2.2免疫小鼠 用重組CRP蛋白免疫小鼠，免疫四周后初步檢測抗體滴度，免疫6周后處死小鼠，取出小鼠脾臟，用剪刀剪碎脾臟組織并用胰蛋白酶將脾臟組織消化分離成單細胞。

1.2.3分離單個B細胞 利用不同熒光標記抗體anti-CD3、anti-CD8、anti-F4/80,anti-CD20對不同的淋巴細胞進行染色標記，同時加入抗原蛋白CRP制備的熒光標記探針對目標B淋巴細胞進行染色，借助流式細胞熒光分選技術(shù)FACS(Fluorescence activated Cell Sorting)從中分離出能表達特異性抗體的單個B細胞(CD3-/CD8-/F4/80-/CD20+/IgM-/IgD-/IgG+/Probe+)。

1.2.4擴增編碼序列 提取單個B細胞的mRNA，進行RT-PCR合成cDNA，以cDNA為模板分別擴增出編碼抗體輕重鏈的核酸序列，將編碼序列酶切插入pcDNA3.1(+)載體中構(gòu)建出編碼特定抗體輕重鏈的重組質(zhì)粒。

1.2.5真核表達系統(tǒng)制備抗體 將同一抗體的輕鏈質(zhì)粒與重鏈質(zhì)粒按1∶1 質(zhì)量比混合后轉(zhuǎn)染進Expi 293細胞中進行單克隆抗體輕重鏈的表達和組裝，收集細胞培養(yǎng)液并用Protein A親和純化出單克隆抗體。SDS-PAGE電泳后用銀染方法檢測其純度。

1.2.6ELISA生物素-親和素檢測體系的初步建立

1.2.6.1篩選特異性抗體 本實驗采用間接ELISA法將重組CRP蛋白和CRP(+)血清1，CRP(+)血清2分別包被在酶聯(lián)免疫微孔板上，濃度為1 μg/ml，篩選出能識別重組CRP蛋白及血清中CRP成分的單克隆抗體，并進一步檢測已篩選的抗體對CRP識別的特異性。

1.2.6.2建立檢測方法體系 將純化后的特異性單抗作為捕獲抗體稀釋成不同濃度，在4℃條件下過夜，包被在酶聯(lián)免疫微孔板上，采用常規(guī)實驗方法對制備的另一特異性單抗進行生物素標記，進行不同比例稀釋，通過棋盤滴定法確定配對抗體的最適工作濃度，見表1。

1.2.7ELISA體系性能的評估

1.2.7.1標準曲線的分析范圍測試 將質(zhì)量濃度為1 000 ng/ml的CRP重組蛋白作為檢測標準品，用PBS倍比稀釋成500、250、125、62.5、31.25、15.625、7.8125 ng/ml，用所建方法進行測定，以蛋白質(zhì)濃度為橫坐標，相應(yīng)的A450 nm為縱坐標做標準曲線。

1.2.7.2精密度分析 用PBS分別將CRP重組蛋白分別稀釋成150 ng/ml和100 ng/ml作為質(zhì)控樣品，用所建方法分4個批次分別測定上述樣品，每批次設(shè)置8個復(fù)孔，分別計算批內(nèi)精密度和批間精密度。

表1棋盤滴定確定工作濃度

Tab.1Optimizationofworkingconcentration

Dilution of biotin-labeled antibodyConcentration of capture antibody10 μg/mlN WP SP5 μg/mlN WP SP1∶2 0000.0440.6521.8840.0460.6781.8501∶3 0000.0100.3691.1320.0220.3841.0321∶40000.0010.2000.6710.0030.2070.5771∶6 0000.0040.1070.3040.0040.0920.249

1.2.7.3回收實驗 用胎牛血清作為基質(zhì)液，將CRP重組蛋白的檢測標準品稀釋成質(zhì)量濃度為1 250、1 000、625、500 ng/ml，按以下方法配置實驗樣品：①基質(zhì)液0.9 ml+PBS 0.1 ml；②分析樣品1：基質(zhì)液0.9 ml+1 250 ng/ml標準品0.1 ml；③分析樣品2：基質(zhì)液0.9 ml+1 000 ng/ml標準品0.1 ml；④分析樣品3：基質(zhì)液0.9 ml+625 ng/ml標準品0.1 ml；⑤分析樣品4：基質(zhì)液0.9 ml+500 ng/ml標準品0.1 ml。用所建方法測定上述樣品，每份樣品設(shè)置8個復(fù)孔，取平均值后計算回收率(回收率=檢測值/實際值×100%)。

1.2.7.4與臨床樣品的比較 用ELISA檢測體系分別對48例臨床血清標本進行檢測，以ELISA檢測結(jié)果為橫坐標，臨床血清標本值為縱坐標繪制散點圖并進行相關(guān)性分析。

2 結(jié)果

2.1重組CRP蛋白的表達與鑒定 將構(gòu)建好的含CRP重組DNA的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染進Expi 293細胞中進行真核表達，由于CRP的重組DNA在N端融合表達了一個6×His-tag的氨基酸序列，采用常規(guī)的Ni離子親和層析柱進行純化，SDS-PAGE電泳的銀染結(jié)果顯示重組CRP蛋白的純度較高(圖1)。

2.2單克隆抗體的制備和鑒定 重組CRP蛋白免疫小鼠后，篩選分離后獲得4對抗體輕重鏈基因，表達純化后SDS-PAGE電泳膠銀染后可見清晰的輕，重鏈條帶，且純度較高(圖2)。分別用重組CRP蛋白，CRP(+)血清1，CRP(+)血清2對純化后的4個抗體進行篩選，最終獲得2個能夠特異性免疫CRP蛋白的單克隆抗體20#，22#(圖3A)。分別以重組CRP、CRP+FBS、重組PCT、FBS作為檢測原檢測這2個抗體的特異性，最終，間接ELISA法結(jié)果顯示20#，22#這兩個抗體對CRP重組蛋白都具有良好的特異性，并且與無關(guān)蛋白PCT及FBS均不反應(yīng)(圖3B)。

2.3ELISA體系初步建立

2.3.1實驗條件的初步優(yōu)化 將抗體22#作為捕獲抗體包被在酶聯(lián)免疫微孔板上，濃度分別為10、5、1 μg/ml，生物素標記的抗體20#作為檢測抗體用PBS按比例分別稀釋為1∶2 000、1∶3 000、1∶4 000、1∶6 000，以強陽性O(shè)D值在1.0左右，陰性O(shè)D值<0.1為最適工作濃度。最終確定最佳的工作條件為：包被抗體5 μg/ml，檢測抗體稀釋度為1∶3 000。

2.3.2建立標準曲線 將質(zhì)量濃度為1 000 ng/ml的CRP重組蛋白作為檢測標準品，用PBS倍比稀釋，以蛋白質(zhì)濃度為橫坐標，相應(yīng)的A450 nm為縱坐標做標準曲線，回歸分析結(jié)果顯示CRP濃度介于15～250 ng/ml之間有較好的檢測線性(y=0.003x-0.035 8，R2=0.997 4)(圖4)。

圖1 純化后重組CRP蛋白的SDS-PAGE電泳Fig.1 SDS-PAGE of purified recombinant CRP

圖2 純化后抗體的SDS-PAGE電泳Fig.2 SDS-PAGE of purified antibodyNote: H.Heavy chain of antibody；L.Light chain of antibody.

圖3 單克隆抗體特異性檢測Fig.3 Specific identification of monoclonal antibodyNote: A.Specific identification of different monoclonal antibody by ELISA；B.Specific identification of different protein;n=3，P<0.000 1.

表2精密度分析

Tab.2Imprecisionofintra-assayandextra-assay

Standard ofCRP (ng/ml)Intra-assay precisionx±s(ng/ml)cv(%)Inter-assay precisionx±s(ng/ml)cv(%)10099.00±6.706.7097.63±8.328.52150153.03±14.349.37145.65±13.259.10

表3回收率分析

Tab.3RecoveryassayofCRP

ExpectedCRP(ng/ml)ObservedCRP(ng/ml)RecoveryAveragerecovery50 47.88±0.02495.82% 98.03% 62.5 60.18±0.016 96.35% 100 103.71±0.13103.37% 125 12.65±0.017 96.58%

圖4 CRP 的ELISA檢測體系線性范圍分析Fig.4 Linear range of ELISA system for CRP

2.3.4精密度 本研究使用精密度實驗確定CRP檢測的可重復(fù)性，結(jié)果顯示批內(nèi)變異系數(shù)CV(變異系數(shù)CV=標準方差SD/平均值Mean×100%)為6.7%～9.37%，小于標準值10%，批間變異系數(shù)為8.52%～9.10%，小于標準值15%，說明本法檢測CRP的精密度良好(表2)。

2.3.5回收率 回收率實驗中，不同濃度的CRP檢測的回收率介于95%～103%之間，平均回收率為98%，說明本法對CRP檢測具有較好的準確性(表3)。

2.3.6與臨床樣品檢測值的比較分析 同時對48例新鮮臨床血清樣品進行檢測，對比臨床檢測數(shù)值，檢測結(jié)果行線性回歸分析(y=0.950 7x+0.956 1，R2=0.976 1)，兩者檢測結(jié)果有良好的相關(guān)性(圖5)。

圖5 ELISA檢測與臨床樣品檢測相關(guān)性分析Fig.5 Linear correlation between ELISA and clinical sample

3 討論

單克隆抗體技術(shù)是現(xiàn)代生命科學研究的重要工具，單克隆抗體的應(yīng)用涉及醫(yī)學、食品、環(huán)境等眾多鄰域，其在基礎(chǔ)研究、蛋白純化、環(huán)境及食品監(jiān)測、疾病診斷、預(yù)防及治療方面均有不可代替作用[8]。相較于傳統(tǒng)的單克隆抗體制備技術(shù)，單個B細胞技術(shù)可以直接從人體外周血中分離出特異性B細胞，以此為模板擴增編碼基因，省去了動物源到人源的改造步驟，所制備的全人源化單克隆抗體在治療和研究自身免疫性疾病和人類免疫系統(tǒng)等方面有突出優(yōu)勢。目前單個B細胞抗體制備技術(shù)已經(jīng)應(yīng)用于制備多種抵抗病原微生物感染的高度特異性人源抗體，如HIV 抗體、破傷風抗體、乙肝抗體、流感抗體等[9-12]。雖然單個B細胞法制備單克隆抗體技術(shù)已經(jīng)成為眾多科研機構(gòu)的重要研究工具，但該技術(shù)涉及到眾多的技術(shù)平臺和關(guān)鍵技術(shù)。不同的實驗室在圍繞此技術(shù)的不同環(huán)節(jié)各有側(cè)重和優(yōu)勢，但缺乏對整套技術(shù)的完整把握，這些問題極大地阻礙了該技術(shù)的推廣和應(yīng)用。隨著B 細胞分選技術(shù)、后續(xù) PCR 擴增基因方法以及抗體基因高通量分析鑒定等方法的成熟和完善，未來單個B 細胞抗體制備技術(shù)仍然將在診斷、藥效學及臨床應(yīng)用中發(fā)揮重大作用。本研究將單個B細胞抗體制備技術(shù)結(jié)合Exip 293真核表達系統(tǒng)制備的hs-CRP單克隆抗體20#，22#對重組CRP蛋白以及CRP(+)血清都具有良好的特異性和高靈敏度，達到了hs-CRP檢測要求，為進一步的免疫檢測試劑盒研發(fā)及其他檢測方法體系奠定了良好基礎(chǔ)。