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        同位素稀釋液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法測定飼料中T-2和HT-2毒素含量

        2019-01-03 01:53:44蔡小明
        飼料工業(yè) 2018年20期
        關(guān)鍵詞:內(nèi)標乙腈毒素

        ■蔡小明

        (福建省產(chǎn)品質(zhì)量檢驗研究院國家加工食品質(zhì)量監(jiān)督檢驗中心,福建福州350002)

        T-2、HT-2毒素是由多種鐮刀菌產(chǎn)生的一類霉菌毒素,廣泛分布于自然界,主要存在于大麥、小麥、燕麥、玉米等谷物及其飼料制品,是一類常見的污染田間作物和庫存谷物的毒素,也是目前報道的A類單端孢霉烯族毒素中毒性最強的真菌毒素,動物長期服用后易導(dǎo)致嚴重疾病甚至死亡[1-3]。歐盟在2006年就要求對T-2、HT-2毒素危害信息的收集、研究及檢測方法開發(fā),并建議對T-2、HT-2毒素的污染情況進行監(jiān)控。2017年8月歐盟食品安全局(ESFA)發(fā)布了T-2毒素與HT-2毒素的膳食暴露風(fēng)險,最大暴露量介于 0.12~0.16 μg/kg體重每天與2.37~2.58 μg/kg體重每天[4]。

        目前,T-2、HT-2毒素檢測方法研究主要針對的是食品類產(chǎn)品,而對飼料方面的研究較少。T-2、HT-2毒素測定方法主要有酶聯(lián)法、液相法、氣質(zhì)法及液質(zhì)法[5-8],酶聯(lián)法檢測容易產(chǎn)生假陽性,液相法及氣質(zhì)法檢測需要對樣品進行衍生,步驟繁瑣且衍生劑毒性較大,相比之下液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法具有更簡便、靈敏度更高的優(yōu)勢被廣泛用于T-2、HT-2毒素檢測。

        本研究旨在采用同位素稀釋液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法,建立飼料中T-2、HT-2毒素的檢測方法,為飼料中T-2、HT-2毒素的監(jiān)管和企業(yè)的自檢提供技術(shù)支撐。

        1 試驗部分

        1.1 主要儀器和試劑

        Agilent 6490高效液相色譜儀配串聯(lián)四極桿質(zhì)譜儀(美國Agilent公司);Milli-Q超純水純化系統(tǒng)(美國Millipore公司);BT 224 S分析天平(德國賽多利斯公司);DS-8510 DTH超聲波振蕩器(上海生析超聲儀器有限公司);XH-B旋渦混均器(江蘇康健醫(yī)療用品有限公司);0.2 μm聚四氟乙烯(PTFE)濾膜(美國ASC)。

        T-2、HT-2毒素及其內(nèi)標,購于奧地利Romer公司;免疫親和柱(T-2/HT-2 Star? R美國Romer);試驗用水為Milli-Q超純水;其余試劑均為色譜純。

        1.2 色譜與質(zhì)譜條件

        色譜柱:HSS T-3(1.7 μm,2.1 mm í100 mm);流動相:10 mmol/l乙酸銨(含0.1%甲酸)-乙腈梯度;流速0.3 ml/min;柱溫:40 ℃;進樣量2 μl。

        流動相梯度洗脫程序見表1。

        表1 液相色譜梯度洗脫程序(%)

        離子源:電噴霧離子源(ESI);掃描方式:正離子模式(SEI+),多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);脫溶劑氣溫度:200℃;脫溶劑氣流速15 L/min;鞘氣溫度300℃;鞘氣流速 12 L/min;毛細管電壓:3.5 KV;T-2和HT-2毒素及其內(nèi)標的母離子、子離子及碰撞能量等質(zhì)譜分析參數(shù)見表2。

        表2 T-2、HT-2毒素質(zhì)譜測定條件

        1.3 標準溶液的配制

        1.3.1 混合儲備液的配制

        準確移取T-2、HT-2毒素液體標準品(濃度均為 100 μg/ml)1.0 ml乙腈定容至 100 ml,配制成濃度為1.00 μg/ml的標準儲備液,保存于4℃冰箱中。

        1.3.2 基質(zhì)匹配標準工作曲線的配制

        分別吸取一定量的混標標準儲備液并加入內(nèi)標,添加樣品空白提取液,氮氣吹干后,用流動相稀釋成濃度為1.0~200 ng/ml的混合標準系列工作液,臨用新配。

        1.4 樣品前處理

        稱取5.00 g(精確至0.01 g)均勻樣品,置于50 ml聚丙烯離心管中,加入20 μl內(nèi)標和20.0 ml 80%乙腈,振搖混勻,置于超聲波振蕩器中提取30 min,于4℃12 000 r/min離心5 min,將上清液轉(zhuǎn)移至另一離心管中。

        移取4.0 ml上清液,用40 ml PBS緩沖液稀釋后,過免疫親和柱,控制流速1~2 ml/min,用10 ml PBS緩沖液淋洗小柱,真空抽干,用5.0 ml甲醇以1~2 ml/min流速洗脫并收集,置于40℃水浴中氮吹近干,再用20%乙腈水溶液定容到1.0 ml,混勻,用0.2 μm聚四氟乙烯(PTFE)濾膜過濾后檢測。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 儀器條件優(yōu)化

        根據(jù)目標物的結(jié)構(gòu),采用正離子模式,T-2毒素母離子(m/z)為489.3,HT-2毒素母離子(m/z)為447.1,優(yōu)化相關(guān)質(zhì)譜參數(shù)選擇T-2毒素的定量/定性離子(m/z)對為:387.1/245.2,HT-2毒素的定量/定性離子(m/z)對為:345/284.9。試驗表明,流動相中加入甲酸可以增強目標物的離子化效率,而加入乙酸銨可以改善目標物的峰形,最終確定以乙腈-10 mmol/l乙酸銨(含0.1%甲酸)作為流動相,總離子流圖如圖1。

        圖1 T-2、HT-2毒素的總離子流圖

        2.2 提取溶劑的選擇

        采用加標回收方式對比了不同乙腈水比例溶液(體積比100∶0、90∶10、80∶20、70∶30、50∶50)對T-2、HT-2毒素回收率的影響,平行試驗三次。結(jié)果表明:隨著提取液中水含量的升高,T-2、HT-2毒素的回收率也隨之增大,當提取溶劑中水含量達到20%(乙腈水80∶20)時,T-2、HT-2毒素回收率在81.1%~95%之間,當水的含量超過20%時,回收率基本不變,且提取液中明顯渾濁。因此,選擇乙腈水體積比80∶20作為提取溶劑。

        2.3 線性范圍和檢測限

        在1.0~200.0 ng/ml范圍內(nèi)配制六個不同濃度的標準溶液進行試驗,以濃度為橫坐標,峰面積與各自內(nèi)標峰面積比值為縱坐標,繪制工作曲線,見表3,T-2、HT-2毒素線性關(guān)系較好(R2>0.999)。以3倍信噪比計算檢出限(LOD)、10倍信噪比計算定量限(LOQ),T-2、HT-2毒素的檢出限均為1.0 μg/kg,定量限均為3.0 μg/kg,滿足痕量分析要求。

        表3 線性方程、線性參數(shù)及線性范圍

        2.4 精密度與準確度

        以陰性飼料樣品作為基質(zhì),進行10、50、200 μg/kg三水平加標回收試驗,每種水平平行試驗6次(n=6),結(jié)果見表4,T-2、HT-2毒素平均回收率在81.5%~105.8%之間,相對標準偏差(RSD)在1.1%~2.8%之間,滿足方法學(xué)要求。

        表4 T-2、HT-2毒素回收率與精密度(n=6)

        2.5 實際樣品檢測

        隨機購買市售16份不同類型飼料測定其T-2、HT-2毒素含量,有四份樣品飼料檢出T-2含量在21~218 μg/kg,其中一份樣品同時檢出HT-2毒素含量為42 μg/kg,說明所建立方法適用于飼料中T-2、HT-2毒素的檢測。

        3 結(jié)語

        本文建立了飼料中T-2毒素和HT-2毒素含量的同位素稀釋液相色譜質(zhì)譜的測定方法,該方法操作簡單、準確、檢測限低、重現(xiàn)性好,適用于飼料中T-2、HT-2毒素的檢測。

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