黃壯霖,賴貝,李岳亮,梁一
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免疫細(xì)胞中O-GlcNAc修飾研究進(jìn)展
黃壯霖*,賴貝*,李岳亮,梁一
523808 東莞,廣東醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)學(xué)院
蛋白翻譯后修飾(post-translational modifications,PTMs)可參與蛋白的結(jié)構(gòu)、活性、亞細(xì)胞定位及其整體功能的調(diào)節(jié)[1]。至今,已報(bào)道的蛋白質(zhì)修飾位點(diǎn)超過 80 000 多個(gè),修飾種類包括磷酸化、乙?;?、甲基化、糖基化和泛素化等,有一半以上蛋白為糖蛋白[2]。糖基化參與多種重要的生物學(xué)進(jìn)程,如細(xì)胞間黏附、細(xì)胞基質(zhì)的相互作用、細(xì)胞信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)、免疫保護(hù)、炎癥、代謝調(diào)節(jié)等[3]。
1983 年,Torres 和 Hart[4]在小鼠的淋巴細(xì)胞中首次發(fā)現(xiàn)由 O-連接的 β-N-乙酰葡萄糖胺(O-linked β--acetylglucosamine,O-GlcNAc)修飾的糖基化形式。O-GlcNAc 是以UDP-乙酰葡萄糖胺(UDP-GlcNAc)為底物,在O-GlcNAc 轉(zhuǎn)移酶(O-GlcNAc transferase,OGT)的作用下,將GlcNAc 修飾到蛋白的絲氨酸或蘇氨酸殘基上,并在O-GlcNAc 糖苷酶(O-GlcNAcase,OGA)的作用下去除這種修飾[5]。
與現(xiàn)有糖基化修飾(N-糖基化、O-糖基化)不同,O-GlcNAc 修飾具有以下特點(diǎn):①GlcNAc 單糖分子不能進(jìn)一步被延長(zhǎng)或修飾成更復(fù)雜的糖結(jié)構(gòu),分子量小且不帶電荷;②廣泛存在于細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核蛋白當(dāng)中,包括核孔蛋白、轉(zhuǎn)錄因子、RNA 結(jié)合蛋白、磷酸激酶和磷酸酶、受體蛋白、細(xì)胞骨架蛋白、代謝酶類等;③是一種動(dòng)態(tài)可逆的修飾過程,由 OGT 和 OGA 控制;④與蛋白其他翻譯后修飾(如磷酸化、泛素化)相互影響[6]。O-GlcNAc 糖基化修飾參與了細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)、代謝調(diào)節(jié)、細(xì)胞骨架的構(gòu)建、壓力應(yīng)激、細(xì)胞循環(huán)、蛋白質(zhì)間的相互作用等重要的生物學(xué)功能[7]。
蛋白O-GlcNAc 修飾對(duì)其糖基供體UDP-GlcNAc 的濃度變化十分敏感。UDP-GlcNAc 是氨基己糖生物合成途徑(hexosamine biosynthesis pathway,HBP)的終產(chǎn)物,參與HBP 的多種營養(yǎng)物質(zhì):谷氨酰胺、乙酰輔酶A、葡萄糖、尿苷等均能影響UDP-GlcNAc 的生物合成,從而影響蛋白的 O-GlcNAc 修飾水平[7-9]。除了對(duì)營養(yǎng)敏感,O-GlcNAc 信號(hào)對(duì)細(xì)胞壓力如熱休克、組織缺氧、營養(yǎng)缺乏同樣有著敏感的反應(yīng)。因此,O-GlcNAc 修飾作為營養(yǎng)和壓力的感應(yīng)器,可調(diào)節(jié)細(xì)胞自轉(zhuǎn)錄翻譯到信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和代謝。破壞 O-GlcNAc 修飾平衡將會(huì)導(dǎo)致各種病理疾病,如腫瘤、糖尿病和神經(jīng)退行性疾病等[10]。而免疫系統(tǒng)中 O-GlcNAc 修飾近年來也多有報(bào)道(表 1),本文將對(duì)各種免疫細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾及其調(diào)節(jié)機(jī)制研究進(jìn)展進(jìn)行綜述。
T 細(xì)胞在胸腺中成熟,早期胸腺祖細(xì)胞為 CD4-CD8-雙陰性細(xì)胞(double negative,DN),隨發(fā)育階段不同,DN 胸腺細(xì)胞分化為 DN1、DN2、DN3、DN4。DN1 細(xì)胞具有分化出 T 細(xì)胞、NK 細(xì)胞、B 細(xì)胞和巨噬細(xì)胞的異質(zhì)性;從 DN2 開始發(fā)生 T 細(xì)胞受體(T cell receptor,TCR)重組;DN3 細(xì)胞開始 TCR 的 β 鏈與前 α 鏈結(jié)合成前 TCR 復(fù)合物;DN4 細(xì)胞上調(diào) CD4 和 CD8 成為雙陽性細(xì)胞(double positive,DP),并表達(dá)完整的 TCRαβ 復(fù)合物。DP 細(xì)胞通過陽性選擇和陰性選擇發(fā)育為成熟的 CD4+/CD8+T 細(xì)胞[11-12]。在此過程中,不同階段的細(xì)胞會(huì)出現(xiàn)葡萄糖和谷氨酰胺攝入水平的動(dòng)態(tài)變化,并伴隨 O-GlcNAc 水平的變化。例如,DN3 胸腺細(xì)胞攝入葡萄糖和谷氨酰胺水平低,但 DN4 細(xì)胞攝入水平上調(diào),DP 階段又恢復(fù)低水平攝入。而蛋白 O-GlcNAc 修飾水平在 DN3 階段上調(diào),在 DN4 到 DP 階段出現(xiàn)顯著下降。在DP 細(xì)胞的陽性選擇中,又出現(xiàn)O-GlcNAc 修飾水平的升高[11]。
表 1 免疫細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾
通過 CRE 系統(tǒng),敲除小鼠胸腺細(xì)胞發(fā)育不同階段中的 OGT 基因,發(fā)現(xiàn)在 β 選擇中 O-GlcNAc 的重要作用。在 DP 階段之前敲除 OGT,DP 細(xì)胞數(shù)量不受影響,但不能分化出成熟的 CD4+/CD8+T 細(xì)胞[11, 13]。其中 Notch 信號(hào)通路參與調(diào)控胸腺細(xì)胞分化過程中 DN 向 DP 階段分化的代謝改變,通過體外胸腺細(xì)胞的 OP9-DL1 系統(tǒng)發(fā)現(xiàn),經(jīng) Notch 配體 DL1 刺激的 DN 細(xì)胞,對(duì)葡萄糖和谷氨酰胺的攝入明顯增加,胞內(nèi)蛋白的 O-GlcNAc 修飾水平上升[11]。
T 細(xì)胞活化會(huì)誘導(dǎo)細(xì)胞表面表達(dá)GLUT1 和氨基酸轉(zhuǎn)運(yùn)體,促進(jìn)葡萄糖和谷氨酰胺的吸收,加快HBP 進(jìn)程,合成更多UDP-GlcNAc,在OGT 的作用下,蛋白質(zhì)的O-GlcNAc 修飾有所升高[14]。
早在 1991 年,Kearse 和Hart[15]便在小鼠的 T 淋巴細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),當(dāng)細(xì)胞活化之后,許多胞核蛋白的O-GlcNAc 修飾迅速升高而胞漿蛋白的O-GlcNAc 修飾卻迅速減少,并在數(shù)小時(shí)后恢復(fù)正常。T 細(xì)胞活化后會(huì)表達(dá)多種細(xì)胞因子,促進(jìn) T 細(xì)胞增殖和分化[16]。其中與 O-GlcNAc 相關(guān)研究最多的是 IL-2。Huang等[17]發(fā)現(xiàn)經(jīng)過葡萄糖胺處理的 Jurkat T 細(xì)胞,細(xì)胞中 IL-2 的水平明顯降低;當(dāng)敲除 Jurkat T 細(xì)胞的 OGT 后,IL-2 的表達(dá)水平降低,進(jìn)而抑制 TCR 誘導(dǎo)的 T 細(xì)胞活化[18];使用 OGT 抑制劑處理人原代T 細(xì)胞,可減少抗 CD3/CD28 或 PMA 所刺激的 T 細(xì)胞活化反應(yīng)中 IL-2 的產(chǎn)生,還能抑制 T 細(xì)胞的增殖。但當(dāng)T 細(xì)胞經(jīng)過 OGA 抑制劑 Thiamet G 處理后,IL-2 的生成并無明顯變化[19];敲除小鼠的 OGT 基因發(fā)現(xiàn),OGT 的缺失并不影響細(xì)胞毒性 T 淋巴細(xì)胞(cytotoxic lymphocyte,CTL)中 IL-2 所誘導(dǎo)的 STAT5 的磷酸化或 mTORC1 的活化,但會(huì)阻礙 CTL 的克隆擴(kuò)增[11]。
與 IL-2 合成信號(hào)通路密切相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子主要有活化 T 細(xì)胞核因子(nuclear factor of activated T cells,NFAT)、核因子-κB(nuclear factor-κB,NF-κB)和 c-Myc[20-21]。Golks 等[18-19]在人類 T 細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),NFAT 和 NF-κB 均可被O-GlcNAc 修飾,當(dāng) TCR 受到刺激時(shí),T 細(xì)胞胞漿中 NFAT 的O-GlcNAc 修飾會(huì)有短暫的升高,這可能與它后續(xù)的核定位有關(guān),而 NF-κB 的O-GlcNAc 修飾則會(huì)阻礙其與 IκB 的相互作用而使 NF-κB 向細(xì)胞核遷移。c-Rel 作為 NF-κB 的亞單位,其 Ser350 可被O-GlcNAc 修飾,增強(qiáng) c-Rel 與 CD28 反應(yīng)原件結(jié)構(gòu)域的結(jié)合,促進(jìn) IL-2 的表達(dá)[22]。c-Myc 可調(diào)節(jié) T 細(xì)胞中營養(yǎng)轉(zhuǎn)運(yùn)體的表達(dá),進(jìn)而影響細(xì)胞中的O-GlcNAc 修飾[21, 23]。此外,c-Myc 位點(diǎn) Thr58 可在糖原合成激酶 3(glycogen synthase kinase 3,GSK3)的作用下被磷酸化,促進(jìn)c-Myc 的降解,使 c-Myc 在 T 細(xì)胞中的半衰期變短[21]。而 Thr58 也可發(fā)生O-GlcNAc 修飾,抑制該位點(diǎn)的磷酸化修飾,提高 c-Myc 蛋白的穩(wěn)定性。T 細(xì)胞中的 OGT 和 OGA 對(duì) c-Myc 的表達(dá)也有影響,使用 OGT 抑制劑之后 c-Myc 表達(dá)水平下降,相反,使用 OGA 抑制劑之后 c-Myc 表達(dá)水平上升[11]。
2016 年,Lund 等[19]使用 BEMAD、代謝標(biāo)記等方法,在人的活化 T 細(xì)胞中,系統(tǒng)地鑒定到 214 種O-GlcNAc 修飾的糖蛋白,主要是轉(zhuǎn)錄因子、剪切因子、核孔蛋白等,涉及 RNA 轉(zhuǎn)錄、加工、運(yùn)輸。其中ARNT、HCLS1、ZAP-70、SHIP1、LCK、PI3K 為新鑒定的 O-GlcNAc 修飾蛋白。Lopez等[24]使用化學(xué)酶聚糖標(biāo)記技術(shù)和蛋白質(zhì)組學(xué)分析方法比較效應(yīng)性和記憶性 CD8+T 細(xì)胞的 O-GlcNAc 修飾差別,結(jié)果發(fā)現(xiàn)效應(yīng)性 CD8+T 細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾蛋白主要參與轉(zhuǎn)錄和翻譯進(jìn)程,促進(jìn)細(xì)胞的增殖,而記憶性 CD8+T 細(xì)胞中,O-GlcNAc 修飾蛋白則參與轉(zhuǎn)錄、翻譯和 mRNA 進(jìn)程中一些特殊的、更具針對(duì)性的調(diào)節(jié)。
1.3.1 自身免疫性疾病 Th1 和Th17 細(xì)胞在多種自身免疫性疾病中均發(fā)揮著重要作用,最近的研究表明,多發(fā)性硬化病(multiple sclerosis,MS)患者體內(nèi) T 細(xì)胞中靶向調(diào)節(jié) OGT 轉(zhuǎn)錄的miR-15b 表達(dá)下調(diào),細(xì)胞內(nèi) NF-κB 的O-GlcNAc 修飾減少,進(jìn)而增強(qiáng)了 Th17 的分化[25]。ELF-1 是 TCRζ 鏈基因的一種轉(zhuǎn)錄因子,在磷酸化修飾和O-GlcNAc 修飾的共同作用下從胞漿轉(zhuǎn)移到胞核,發(fā)揮相應(yīng)的功能[26]。在系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE)患者的 T 細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),ELF-1 的O-GlcNAc 修飾明顯減少,下調(diào)了 TCRζ 鏈的表達(dá),從而導(dǎo)致效應(yīng) T 細(xì)胞的功能失調(diào)[27]。
1.3.2 免疫細(xì)胞癌癥 瓦博格效應(yīng)(Warburg effect)是癌癥的重要代謝特征,即在有氧條件下,惡性細(xì)胞糖酵解同樣活躍,葡萄糖的攝入增加。這種代謝轉(zhuǎn)化使?fàn)I養(yǎng)物質(zhì)在HBP 中的流通得到提高,在多種癌癥細(xì)胞中均可發(fā)現(xiàn)O-GlcNAc 修飾水平的明顯升高[28]。慢性淋巴細(xì)胞白血病(chronic lymphocytic leukemia,CLL)細(xì)胞中會(huì)表達(dá)高水平的O-GlcNAc 修飾蛋白,包括p53、AKT、MYC 等[29]。急性髓細(xì)胞白血?。╝cute myelocytic leukemia,AML)和CLL 細(xì)胞中的 STAT5 在第 92 位蘇氨酸上可發(fā)生O-GlcNAc 修飾,使STAT5 上酪氨酸的磷酸化修飾增強(qiáng),促進(jìn)髓系細(xì)胞的惡性增生[30]。Swamy 等[11]在 T 細(xì)胞急性淋巴性白血?。═-cell acute lymphoblastic leukemia,T-ALL)的小鼠模型中發(fā)現(xiàn),PTEN 敲除的胸腺細(xì)胞中敲除 OGT 基因可抑制細(xì)胞的惡性轉(zhuǎn)化,小鼠的存活周期能夠延長(zhǎng)一半以上,但是這種小鼠中的 T 淋巴細(xì)胞與正常小鼠相比顯著減少,并且不能分化為 CD4+或 CD8+的 T 細(xì)胞。從T-ALL 小鼠中分離的 T 淋巴細(xì)胞與正常的淋巴細(xì)胞相比,葡萄糖和谷氨酰胺的攝取明顯升高,整體O-GlcNAc 修飾水平升高。
B 細(xì)胞的發(fā)育分為兩個(gè)階段:造血干細(xì)胞在骨髓中發(fā)育為成熟 B 細(xì)胞,為中樞發(fā)育階段;隨后遷移至外周淋巴器官脾臟和淋巴結(jié)等,成熟 B 細(xì)胞經(jīng)抗原刺激后增殖分化成記憶 B 細(xì)胞和漿細(xì)胞[31]。在敲除 OGT 的小鼠中發(fā)現(xiàn),骨髓中成熟 B 細(xì)胞產(chǎn)生的頻率和數(shù)量與正常小鼠相比明顯減少。脾臟中 B220+B 細(xì)胞產(chǎn)生的頻率和數(shù)量也有所減少,尤其是濾泡 B 細(xì)胞。但 OGT 的缺失對(duì)未成熟 B 細(xì)胞、過渡期 B 細(xì)胞和邊緣區(qū) B 細(xì)胞影響不大。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),成熟 B 細(xì)胞的減少是由于 OGT 缺失導(dǎo)致其發(fā)生凋亡,而不是阻斷 B 細(xì)胞發(fā)育過程,因此,O-GlcNAc 修飾在維持 B 細(xì)胞自身穩(wěn)態(tài)中發(fā)揮重要作用[32]。
細(xì)胞膜上 CD69 的表達(dá)是 B 細(xì)胞早期活化的標(biāo)志。B 細(xì)胞中 OGT 的過表達(dá)或使用 OGA 抑制劑PUGNAc 均可上調(diào) B 細(xì)胞膜上的 CD69 的表達(dá)[18]。另外,使用更具特異性的 OGA 抑制劑 thiamet-G 處理 B 細(xì)胞或敲除 B 細(xì)胞 OGA 基因,會(huì)促進(jìn) B 細(xì)胞的活化,但也導(dǎo)致 B 細(xì)胞的凋亡。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),淋巴細(xì)胞特異性蛋白(lymphocyte specific protein-1,LSP1)在其 Ser209 的 O-GlcNAc 修飾可使 Ser243 發(fā)生磷酸化修飾,啟動(dòng)凋亡進(jìn)程[33]。
與 T 細(xì)胞的活化類似,B 細(xì)胞受體(B cell receptor,BCR)受到刺激之后,轉(zhuǎn)錄因子 NFAT 和 NF-κB被 O-GlcNAc 修飾之后影響其各自的核定位,進(jìn)而影響 B 細(xì)胞的活化[34]。Golks 等[18]發(fā)現(xiàn),OGT 的過表達(dá)或使用 OGA 抑制劑 PUGNAc 可通過上調(diào) NF-κB 的 O-GlcNAc 修飾水平,提高 B 細(xì)胞中 BCR 依賴的 NF-κB 活性,進(jìn)而促進(jìn) B 細(xì)胞的活化。
另外,與 B 細(xì)胞活化中的 O-GlcNAc 修飾相關(guān)的因子還包括:CD79a/79b、激酶 Syk、Lyn、Btk[35]、B 細(xì)胞活化因子受體(B-cell activating factor receptor,BAFFR)[36]等。在 OGT 缺失的小鼠中發(fā)現(xiàn),經(jīng) IgM抗體刺激的小鼠脾臟 B 細(xì)胞,其 CD79a、Lyn、Syk 的磷酸化修飾均有所減少,NF-κB 多種亞單位的核定位也隨之減少[32]。BAFFR 是 B 細(xì)胞活化過程重要分子,可通過 Src 激酶 Lyn 的活化,使 CD79a 和 Syk 發(fā)生磷酸化修飾,從而與 BCR 信號(hào)通路共同調(diào)節(jié) B 細(xì)胞動(dòng)態(tài)平衡[36]。研究發(fā)現(xiàn),Lyn 在 S19 位點(diǎn)上的 O-GlcNAc 修飾可以促進(jìn) Lyn 的活化,并招募 Syk 與之相互作用[32]。
前 B 細(xì)胞急性淋巴細(xì)胞性白血?。╬re-B acute lymphocytic leukemia,pre-B-ALL)患者骨髓CD19+的單個(gè)核細(xì)胞中,O-GlcNAc 修飾水平明顯升高,OGT 升高,OGA 減少,PI3K/Akt/c-Myc 通路過度活化。當(dāng)細(xì)胞中的 OGT 缺失時(shí),PI3K 和磷酸化的 Akt、c-Myc 均減少,說明 OGT 可能參與 PI3K/Akt/c-Myc 通路的活化[37]。在CLL 細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),Syk 磷酸化水平升高,會(huì)伴隨著蛋白 O-GlcNAc 修飾水平的升高[29]。彌漫性大 B 細(xì)胞淋巴瘤(diffuse large B-cell lymphoma,DLBCL)患者的 B 細(xì)胞中,OGT 的 mRNA 表達(dá)水平明顯升高[38]。
巨噬細(xì)胞在固有免疫反應(yīng)、組織細(xì)胞的內(nèi)穩(wěn)態(tài)和發(fā)展、促炎性反應(yīng)和噬菌/吞噬作用中均發(fā)揮著重要的作用[39]。小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞為定居腦內(nèi)的巨噬細(xì)胞,調(diào)節(jié)神經(jīng)中樞的固有免疫反應(yīng)。LPS 可誘導(dǎo)小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞中 c-Rel 的活化,提高 c-Rel 與 OGT、p50 的相互作用,c-Rel 的 O-GlcNAc 修飾增加,與 NF-κB 結(jié)合增強(qiáng),促進(jìn)誘生型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)的產(chǎn)生[40]。小鼠巨噬細(xì)胞 RAW264.7 中,OGT 與 mSin3a 的相互作用,會(huì)干擾 LPS 誘導(dǎo)的 NF-κB 活化和 iNOS 基因的表達(dá)[41]。雖然 p65 與 c-Rel 同為 NF-κB 家族的成員,但對(duì) O-GlcNAc 修飾的反應(yīng)卻有所不同,thiamet-G 可促進(jìn)小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞中 p65 的 O-GlcNAc 修飾,使其與 IκB 結(jié)合,影響 p65 的核定位,抑制促炎因子的表達(dá)和細(xì)胞的分化[42]。此外,在高糖條件下,葡萄糖胺抑制 LPS 誘導(dǎo)的 RAW264.7 細(xì)胞中 NF-κB 的活化,c-Rel 的 O-GlcNAc 修飾減少,而在低糖條件下,葡萄糖胺可使 c-Rel 的 O-GlcNAc 修飾增加,促進(jìn)其與iNOS 啟動(dòng)子的結(jié)合[43]。
STAT 信號(hào)通路在炎癥反應(yīng)和腫瘤的發(fā)生中發(fā)揮著重要作用,在小鼠的骨髓源性巨噬細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),STAT3 的 717 位蘇氨酸可被 O-GlcNAc 修飾,進(jìn)而下調(diào) STAT3 的磷酸化修飾和 STAT3 依賴的相關(guān)基因表達(dá)。E3 泛素連接酶CUL3 可下調(diào) OGT 的表達(dá),主要是通過抑制核因子 E2 相關(guān)因子 2(nuclear factor E2-related factor-2,NRF2)與 OGT 啟動(dòng)子的結(jié)合,抑制 STAT3 的 O-GlcNAc 修飾[44]。
從上述的研究中可以發(fā)現(xiàn),巨噬細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾對(duì)炎癥反應(yīng)有著正性調(diào)節(jié)和負(fù)性調(diào)節(jié)的作用,這可能與細(xì)胞對(duì)葡萄糖的利用、細(xì)胞所處的炎癥微環(huán)境以及 NF-κB 和 STAT 信號(hào)通路中多種關(guān)鍵調(diào)節(jié)分子的 O-GlcNAc 修飾密切相關(guān)。
中性粒細(xì)胞在固有免疫中可通過噬菌作用和分泌多種抗菌因子抵御細(xì)菌的感染,是機(jī)體發(fā)生損傷和感染時(shí)最先響應(yīng)的細(xì)胞。Kneass 和 Marchase[45]發(fā)現(xiàn),從健康人全血分離的中性粒細(xì)胞在趨化肽甲?;琢虬彼?亮氨酸-苯丙氨酸(formylated Met-Leu-Phe,fMLF)的刺激下,蛋白質(zhì)的 O-GlcNAc 修飾發(fā)生迅速而短暫的升高,在細(xì)胞的信號(hào)傳導(dǎo)中起到重要作用。當(dāng)中性粒細(xì)胞經(jīng)過葡萄糖胺或 PUGNAc 的處理之后,O-GlcNAc 修飾水平的升高不僅能提高中性粒細(xì)胞的能動(dòng)性,而且能增強(qiáng)絲裂原蛋白激酶 p38、p44/42、MKK3/6 和MEK1/2 的活性。此外,多種細(xì)胞信號(hào)通路蛋白包括 PI3K、Rho 家族的 GTP 酶、Rac 和 ERK1/ERK2 均與中性粒細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾有關(guān)[46]。在一項(xiàng)創(chuàng)傷-出血的小鼠模型中發(fā)現(xiàn),經(jīng)過葡萄糖胺或 PUGNAc 處理之后,作為中性粒細(xì)胞浸潤標(biāo)志的骨髓過氧化物酶,與對(duì)照組相比明顯降低[47]。但中性粒細(xì)胞中 O-GlcNAc 修飾蛋白的鑒定工作尚未有報(bào)道。
NK 細(xì)胞是一種細(xì)胞毒性淋巴細(xì)胞,參與細(xì)胞的固有免疫和適應(yīng)性免疫。Yao 等[48]發(fā)現(xiàn),NK 細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾可通過影響 NK 細(xì)胞的信號(hào)傳導(dǎo)減弱其細(xì)胞毒性,而GST-sHLA-G1α 鏈可抑制 NK 細(xì)胞中 O-GlcNAc 修飾水平。EZH2 是一種組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶,當(dāng)其活性受抑制時(shí),不僅能夠加快 NK 細(xì)胞的成熟,還能提高 NK 細(xì)胞殺傷功能,在 EZH2 上已鑒定到 5 個(gè) O-GlcNAc 修飾位點(diǎn),對(duì)該蛋白的穩(wěn)定和功能均有重要作用[49-51]。
過去 30 多年間的研究表明,O-GlcNAc 修飾與多種疾病,如糖尿病、癌癥、神經(jīng)退行性疾病、心血管疾病等關(guān)系密切。在動(dòng)物模型中,OGT 和(或)OGA 的缺失都有致死性。O-GlcNAc 糖基化的動(dòng)態(tài)修飾與免疫代謝的調(diào)節(jié)密切相關(guān),影響免疫細(xì)胞的增殖、分化、成熟、活化、腫瘤發(fā)生等。但免疫細(xì)胞中的 O-GlcNAc 修飾相關(guān)研究相較于其他疾病依然較少,主要集中在對(duì) T 細(xì)胞的研究。許多參與固有免疫和適應(yīng)性免疫信號(hào)調(diào)節(jié)的關(guān)鍵分子,包括 NOD2、TAB1、CaMKIV 等均被 O-GlcNAc 修飾,但這些蛋白在免疫細(xì)胞中與 O-GlcNAc 修飾相關(guān)機(jī)制研究數(shù)據(jù)很少。長(zhǎng)期以來,對(duì) O-GlcNAc 修飾的研究進(jìn)展一直很慢,主要有以下幾方面:①對(duì)于胞核胞漿組分中的糖基化修飾仍未有一個(gè)統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn);②O-GlcNAc 修飾作為一種單糖修飾,分子量小且不帶電荷,它的添加和移除在 SDS-PAGE 上并不會(huì)有明顯的遷移,也成為鑒定位點(diǎn)工作的技術(shù)瓶頸;③細(xì)胞中存在高水平的水解酶,當(dāng)細(xì)胞受損或被裂解時(shí),O-GlcNAc 修飾容易被移除;④O-GlcNAc 多位點(diǎn)修飾鑒定的技術(shù)難題。近年,隨著檢測(cè) O-GlcNAc 修飾單克隆抗體的發(fā)展,“點(diǎn)擊化學(xué)”的應(yīng)用,更精密的質(zhì)譜技術(shù)(如 HCD、ETD)的研發(fā),使得對(duì) O-GlcNAc 修飾的研究能夠突破技術(shù)的瓶頸。在未來的研究中,將會(huì)幫助我們理解 O-GlcNAc 修飾在免疫細(xì)胞中的作用機(jī)制。
[1] Uhlén M, Fagerberg L, Hallstr?m BM, et al. Proteomics. Tissue-based map of the human proteome. Science, 2015, 347(6220):1260419.
[2] Khoury GA, Baliban RC, Floudas CA. Proteome-wide post-translational modification statistics: frequency analysis and curation of the swiss-prot database. Sci Rep, 2011, 1, srep00090.
[3] Cummings RD, Pierce JM. The challenge and promise of glycomics. Chem Biol, 2014, 21(1):1-15.
[4] Torres CR, Hart GW. Topography and polypeptide distribution of terminal N-acetylglucosamine residues on the surfaces of intact lymphocytes. Evidence for O-linked GlcNAc. J Biol Chem, 1984, 259(5):3308-3317.
[5] Kreppel LK, Hart GW. Regulation of a cytosolic and nuclear O-GlcNAc transferase. Role of the tetratricopeptide repeats. J Biol Chem, 1999, 274(45):32015-32022.
[6] Zachara NE, Vosseller K, Hart GW. Detection and analysis of proteins modified by O-linked N-acetylglucosamine. Curr Protoc Protein Sci, 2011, Chapter 12:Unit12.8.
[7] Teo CF, Wollaston-Hayden EE, Wells L. Hexosamine flux, the O-GlcNAc modification, and the development of insulin resistance in adipocytes. Mol Cell Endocrinol, 2010, 318(1-2): 44-53.
[8] Ruan HB, Singh JP, Li MD, et al. Cracking the O-GlcNAc code in metabolism. Trends Endocrinol Metab, 2013, 24(6): 301-309.
[9] Yang X, Qian K. Protein O-GlcNAcylation: emerging mechanisms and functions. Nat Rev Mol Cell Biol, 2017, 18(7):452-465.
[10] Zachara N, Akimoto Y, Hart GW. The O-GlcNAc modification//Varki A, Cummings RD, Esko JD, et al. Essentials of glycobiology [Internet]. 3rd ed. Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2015-2017:Chapter 19.
[11] Swamy M, Pathak S, Grzes KM, et al. Glucose and glutamine fuel protein O-GlcNAcylation to control T cell selfrenewal and malignancy. Nat Immunol, 2016, 17(6):712-720.
[12] Shah DK, Zú?iga-Pflücker JC. An overview of the intrathymic intricacies of T cell development. J Immunol, 2014, 192(9):4017- 4023.
[13] O'Donnell N, Zachara NE, Hart GW, et al. Ogt-dependent X-chromosome-linked protein glycosylation is a requisite modification in somatic cell function and embryo viability. Mol Cell Biol, 2004, 24(4):1680-1690.
[14] Machacek M, Slawson C, Fields PE. O-GlcNAc: a novel regulator of immunometabolism. J Bioenerg Biomembr, 2018, 50(3):223-229.
[15] Kearse KP, Hart GW. Lymphocyte activation induces rapid changes in nuclear and cytoplasmic glycoproteins. Proc Natl Acad Sci U S A, 1991, 88(5):1701-1705.
[16] Mayya V, Dustin ML. What scales the T cell response? Trends Immunol, 2016, 37(8):513-522.
[17] Huang JB, Clark AJ, Petty HR. The hexosamine biosynthesis pathway negatively regulates IL-2 production by Jurkat T cells. Cell Immunol, 2007, 245(1):1-6.
[18] Golks A, Tran TT, Goetschy JF, et al. Requirement for O-linked N-acetylglucosaminyltransferase in lymphocytes activation. EMBO J, 2007, 26(20):4368-4379.
[19] Lund PJ, Elias JE, Davis MM. Global analysis of O-GlcNAc glycoproteins in activated human T cells. J Immunol, 2016, 197(8): 3086-3098.
[20] Fiebich BL, Collado JA, Stratz C. Pseudoephedrine inhibits T-cell activation by targeting NF-κB, NFAT and AP-1 signaling pathways. Immunopharmacol Immunotoxicol, 2012, 34(1):98-106.
[21] Preston GC, Sinclair LV, Kaskar A, et al. Single cell tuning of Myc expression by antigen receptor signal strength and interleukin-2 in T lymphocytes. EMBO J, 2015, 34(15):2008-2024.
[22] Ramakrishnan P, Clark PM, Mason DE, et al. Activation of the transcriptional function of the NF-kappaB protein c-Rel by O-GlcNAc glycosylation. Sci Signal, 2013, 6(290):ra75.
[23] Wang R, Dillon CP, Shi LZ, et al. The transcription factor Myc controls metabolic reprogramming upon T lymphocyte activation. Immunity, 2011, 35(6):871-882.
[24] Lopez Aguilar A, Gao Y, Hou X, et al. Profiling of protein O-glcNAcylation in murine CD8+ effector- and memory-like T cells. ACS Chem Biol, 2017, 12(12):3031-3038.
[25] Liu R, Ma X, Chen L, et al. MicroRNA-15b suppresses Th17 differentiation and is associated with pathogenesis of multiple sclerosis by targeting O-GlcNAc transferase. J Immunol, 2017, 198(7): 2626-2639.
[26] Tsokos GC, Nambiar MP, Juang YT. Activation of the Ets transcription factor Elf-1 requires phosphorylation and glycosylation: defective expression of activated Elf-1 is involved in the decreased TCR zeta chain gene expression in patients with systemic lupus erythematosus. Ann N Y Acad Sci, 2003, 987:240-245.
[27] Juang YT, Solomou EE, Rellahan B, et al. Phosphorylation and O-linked glycosylation of Elf-1 leads to its translocation to the nucleus and binding to the promoter of the TCR zeta-chain. J Immunol, 2002, 168(6):2865-2871.
[28] Hanover JA, Chen W, Bond MR. O-GlcNAc in cancer: an oncometabolismfueled vicious cycle. J Bioenerg Biomembr, 2018, 50(3):155-173.
[29] Shi Y, Tomic J, Wen F, et al. Aberrant O-GlcNAcylation characterizes chronic lymphocytic leukemia. Leukemia, 2010, 24(9):1588-1598.
[30] Freund P, Kerenyi MA, Hager M, et al. O-GlcNAcylation of STAT5 controls tyrosine phosphorylation and oncogenic transcription in STAT5-dependent malignancies. Leukemia, 2017, 31(10):2132-2142.
[31] Pieper K, Grimbacher B, Eibel H. B-cell biology and development. J Allergy Clin Immunol, 2013, 131(4):959-971.
[32] Wu JL, Chiang MF, Hsu PH, et al. O-GlcNAcylation is required for B cell homeostasis and antibody responses. Nat Commun, 2017, 8(1): 1854.
[33] Wu JL, Wu HY, Tsai DY, et al. Temporal regulation of Lsp1 O-GlcNAcylation and phosphorylation during apoptosis of activated B cells. Nat Commun, 2016, 7:12526.
[34] Golks A, Guerini D. The O-linked N-acetylglucosamine modification in cellular signalling and the immune system. 'Protein modifications: beyond the usual suspects' review series. EMBO Rep, 2008, 9(8):748- 753.
[35] Niiro H, Clark EA. Regulation of B-cell fate by antigen-receptor signals. Nat Rev Immunol, 2002, 2(12):945-956.
[36] Schweighoffer E, Vanes L, Nys J, et al. The BAFF receptor transduces survival signals by co-opting the B cell receptor signaling pathway. Immunity, 2013, 38(3):475-488.
[37] Zhang B, Zhou P, Li X, et al. Bitterness in sugar: O-GlcNAcylation aggravates pre-B acute lymphocytic leukemia through glycolysis via the PI3K/Akt/c-Myc pathway. Am J Cancer Res, 2017, 7(6):1337- 1349.
[38] Pham LV, Bryant JL, Mendez, et al. Targeting the hexosamine biosynthetic pathway and O-linked N-acetylglucosamine cycling for therapeutic and imaging capabilities in diffuse large B-cell lymphoma. Oncotarget, 2016, 7(49):80599-80611.
[39] Ginhoux F, Jung S. Monocytes and macrophages: developmental pathways and tissue homeostasis. Nat Rev Immunol, 2014, 14(6):392- 404.
[40] Hwang SY, Hwang JS, Kim SY, et al. O-GlcNAcylation and p50/p105 binding of c-Rel are dynamically regulated by LPS and glucosamine in BV2 microglia cells. Br J Pharmacol, 2013, 169(7):1551-1560.
[41] Hwang SY, Hwang JS, Kim SY, et al. O-GlcNAc transferase inhibits LPS-mediated expression of inducible nitric oxide synthase through an increased interaction with mSin3A in RAW264.7 cells. Am J Physiol Cell Physiol, 2013, 305(6):C601-C608.
[42] He Y, Ma X, Li D, et al. Thiamet G mediates neuroprotection in experimental stroke by modulating microglia/macrophage polarization and inhibiting NF-κB p65 signaling. J Cereb Blood Flow Metab, 2017, 37(8):2938-2951.
[43] Hwang JS, Kwon MY, Kim KH, et al. Lipopolysaccharide (LPS)-stimulated iNOS induction is increased by glucosamine under normal glucose conditions but is inhibited by glucosamine under high glucose conditions in macrophage cells. J Biol Chem, 2017, 292(5): 1724-1736.
[44] Li X, Zhang Z, Li L, et al. Myeloid-derived cullin 3 promotes STAT3 phosphorylation by inhibiting OGT expression and protects against intestinal inflammation. J Exp Med, 2017, 214(4):1093-1109.
[45] Kneass ZT, Marchase RB. Neutrophils exhibit rapid agonist-induced increases in protein-associated O-GlcNAc. J Biol Chem, 2004, 279(44):45759-45765.
[46] Kneass ZT, Marchase RB. Protein O-GlcNAc modulates motility-associated signaling intermediates in neutrophils. J Biol Chem, 2005, 280(15):14579-14585.
[47] N?t LG, Brocks CA, Vámhidy L, et al. Increased O-linked beta-N-acetylglucosamine levels on proteins improves survival, reduces inflammation and organ damage 24 hours after trauma-hemorrhage in rats. Crit Care Med, 2010, 38(2):562-571.
[48] Yao AY, Tang HY, Wang Y, et al. Inhibition of the activating signals in NK92 cells by recombinant GST-sHLA-G1a chain. Cell Res, 2004, 14(2):155-160.
[49] Yin J, Leavenworth JW, Li Y, et al. Ezh2 regulates differentiation and function of natural killer cells through histone methyltransferase activity. Proc Natl Acad Sci U S A, 2015, 112(52):15988-15993.
[50] Chu CS, Lo PW, Yeh YH, et al. O-GlcNAcylation regulates EZH2 protein stability and function. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(4): 1355-1360.
[51] Lo PW, Shi JJ, Chen CH, et al. O-GlcNAcylation regulates the stability and enzymatic activity of the histone methyltransferase EZH2. Proc Natl Acad Sci U S A, 2018, 115(28):7302-7307.
*同為第一作者
10.3969/j.issn.1673-713X.2018.06.012
國家自然科學(xué)基金(81102850);廣東醫(yī)科大學(xué)醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)學(xué)院創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目(201703)
梁一,Email:liangyigdmu@163.com
2018-09-23