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(海南大學(xué)食品學(xué)院,海南海口 570228)

菠蘿蜜(ArtocarpusheterophyllusLam.)又稱木菠蘿、樹菠蘿等,屬于?？颇静ぬ}屬。被譽(yù)為“熱帶水果皇后”的菠蘿蜜是華南地區(qū)主要的熱帶水果之一。熱帶地區(qū)菠蘿蜜種植面積已經(jīng)超過20萬畝[1]。在菠蘿蜜的加工和生產(chǎn)中,副產(chǎn)物果皮(約42%)多作為廢棄物丟棄[2]。廢棄果皮不僅浪費(fèi)資源,還可能對(duì)環(huán)境造成破壞。菠蘿蜜果皮活性物質(zhì)的研究多集中在多酚類化合物和總黃酮上[3-4]。菠蘿蜜果皮中活性物質(zhì)的應(yīng)用潛力和發(fā)展價(jià)值還未被充分挖掘。近年來,植物多糖因具有抗炎、抗病毒、抗腫瘤、降血糖和抗氧化等作用成為研究熱點(diǎn)。而當(dāng)前關(guān)于菠蘿蜜果皮多糖的研究甚少，且提取方法較為單一,主要以酸提取法為主[5-6],且存在提取時(shí)間較長(zhǎng)、耗能高和酸堿試劑對(duì)環(huán)境造成的污染等問題。

不同于雙水相體系使用的高分子量聚乙二醇(Da≥6000)[7],低分子量(Da≤1000)的聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)/水體系作為綠色溶劑,它與水和有機(jī)溶劑均有很好的相溶性,良好的生物降解能力、完全無鹵和非揮發(fā)性等優(yōu)點(diǎn)[8-9],受到國(guó)內(nèi)外研究者廣泛關(guān)注。此外,PEG/水體系在超聲波中有較好的能量耗散,且在酸性、氧化還原體系和高溫中具有較高的穩(wěn)定性。因此,PEG/水體系可以作為一種安全、有效和溫和的萃取溶劑[10]。低分子量(Da≤1000)PEG/水體系已經(jīng)在石榴皮和銀耳等天然產(chǎn)物的多糖提取中取得了較好的效果[11-13]。此外,超聲-微波協(xié)同提取法(ultrasound-microwave assisted extraction,UMAE)充分結(jié)合了微波的高能作用和超聲波的空化作用,已經(jīng)廣泛應(yīng)用于多糖提取上[14-15]。

本文旨在研究超聲-微波協(xié)同低分子量(Da<1000)PEG/水體系提取菠蘿蜜果皮多糖的效果,并與純水作提取溶劑進(jìn)行比較分析,初步探究PEG/水體系對(duì)多糖提取效果的影響。為提取菠蘿蜜果皮多糖提供新方法,充分發(fā)揮廢棄菠蘿蜜果皮價(jià)值,探索解決食品加工中廢棄物污染問題。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

菠蘿蜜果皮品種 為馬來西亞1號(hào)由海南大學(xué)百果園水果市場(chǎng)提供;不同分子量聚乙二醇、葡萄糖分析標(biāo)準(zhǔn)品 麥克林試劑有限公司;水楊酸鈉1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH) 源葉生物有限公司;三氯甲烷純度≥99%、丙酮純度≥99.5%、無水乙醇純度≥99.7%、三氯化鐵純度≥99%、抗壞血酸純度≥99.7%、苯酚純度≥99%、鐵氰化鉀純度≥99.5% 西隴化工股份有限公司;所用試劑 均為分析純(AR)。

IKA A11分析用研磨機(jī) 艾卡儀器設(shè)備有限公司;CW-2000型超聲-微波協(xié)同萃取儀 上海新拓微波溶樣測(cè)試技術(shù)有限公司;FDU-2100冷凍干燥機(jī) 埃朗科(上海)國(guó)際貿(mào)易有限公司;RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠;L500型離心機(jī) 湖南湘儀有限公司;TU-1810型紫外可見分光光度計(jì) 北京普析有限責(zé)任公司;PL303電子天平 梅特勒-托利多(上海)有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 原料的預(yù)處理 菠蘿蜜果皮洗凈后60 ℃烘干、粉碎后過60目篩。取適量果皮粉在75 ℃下，使用80%乙醇回流5 h除去糖類雜質(zhì),于55 ℃，48 h下烘干后備用。

1.2.2 菠蘿蜜果皮多糖提取工藝 多糖提取工藝參考文獻(xiàn)[16]并作適當(dāng)修改。萃取儀在工作模式下，超聲波頻率和功率自動(dòng)固定為40 kHz和50 W。取適量果皮粉于250 mL超聲-微波協(xié)同萃取儀玻璃容器中,分別以PEG/水體系和純水作為提取溶劑,按設(shè)定條件提取菠蘿蜜果皮中的多糖。提取完成后冷卻至室溫,提取液4800 r/min離心15 min,上清液濃縮后加入4倍體積的無水乙醇(終濃度為80%),在4 ℃下靜置沉淀12 h,4000 r/min離心12 min后棄去上清液,所得沉淀用95%(v/v)乙醇和丙酮洗滌數(shù)次,冷凍干燥后得到菠蘿蜜果皮多糖JFP-P(PEG/水體系作提取溶劑)和JFP-W(純水作提取溶劑)。

1.2.3 超聲-微波協(xié)同提取菠蘿蜜果皮多糖單因素實(shí)驗(yàn) 以菠蘿蜜果皮粉末為原料,分別研究PEG分子量、PEG濃度、微波功率、提取時(shí)間、料液比對(duì)多糖得率的影響。提取基本條件為:PEG-200/水體系、濃度0.3 g·mL-1、微波功率65 W、提取時(shí)間30 min、料液比1∶40 (g/mL)。各因素水平為:PEG分子量200、400、600、800 Da;PEG濃度0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 g·mL-1;微波功率45、55、65、75、85 W;提取時(shí)間10、20、30、40、50 min;料液比1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60 (g/mL)。

1.2.4 響應(yīng)面法試驗(yàn)設(shè)計(jì) 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,分別以PEG-200/水體系濃度、微波功率、提取時(shí)間和料液比為自變量,以多糖得率為響應(yīng)值,采用Design-Expert 8.0.6軟件進(jìn)行響應(yīng)面分析,對(duì)超聲-微波協(xié)同提取工藝參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,試驗(yàn)因素及水平見表1。

1.2.5 菠蘿蜜果皮多糖得率的計(jì)算 以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品,采用苯酚-硫酸法測(cè)定多糖含量[17]。按照下式計(jì)算菠蘿蜜果皮多糖得率:

1.2.6 菠蘿蜜果皮多糖體外抗氧化活性測(cè)定

1.2.6.1 DPPH自由基清除活性 參考Li等[18]的方法加以改進(jìn),4 mL不同濃度多糖樣品液(0.25、0.5、1.0、1.5、2 mg/mL)分別混合1 mL 0.2 mmol/L的DPPH自由基甲醇溶液,混合物在室溫下劇烈搖動(dòng)后,在室溫下保持30 min,于517 nm波長(zhǎng)測(cè)定吸光度?？箟难嶙鳛殛栃詫?duì)照,清除活性計(jì)算如下:

DPPH自由基清除率(%)=[1-(A1-A0)/A2]

式(1)

式中,A0為樣品的吸光度(不含DPPH溶液的樣品);A1為樣品液混合DPPH的吸光度;A2為DPPH溶液的吸光度。

1.2.6.2 羥基(OH)自由基清除活性 參考Sun等[19]的方法加以改進(jìn),1 mL不同濃度多糖樣品液(0.25、0.5、1.0、1.5、2 mg/mL)分別加入6 mmol/L硫酸亞鐵溶液1 mL,6 mmol/L水楊酸-乙醇溶液1 mL,和6 mmol/L過氧化氫溶液1 mL后立即混勻,37 ℃水浴1 h,在536 nm處測(cè)定吸光度(A0),以抗壞血酸為陽性對(duì)照。

OH自由基清除率(%)=[1-(A0-A1)/A2]×100

式(2)

式中,A1為蒸餾水替代過氧化氫溶液的吸光度值,A2為蒸餾水代替多糖樣品液的吸光度值。

1.2.6.3 還原力的測(cè)定 參考Lin等[20]的方法稍作修改,1 mL不同濃度多糖樣品液(0.25、0.5、1.0、1.5、2 mg/mL)分別加入1%鐵氰化鉀1 mL和磷酸鹽緩沖液(0.2 mol/L,pH6.6)1 mL,充分混勻后,50 ℃水浴20 min,加入10%三氯乙酸1 mL,5000 r/min離心10 min,收集1 mL上清液,加入蒸餾水1 mL和0.1%的氯化鐵1 mL,混合后室溫下靜置10 min,在700 nm處測(cè)定吸光度,抗壞血酸作陽性對(duì)照,蒸餾水作空白對(duì)照。

1.2.7 菠蘿蜜果皮多糖紅外光譜分析 將響應(yīng)面優(yōu)化工藝所得多糖JFP-P和JFP-W分別與溴化鉀固體粉末混勻,研磨后壓片,在4000～500 cm-1內(nèi)進(jìn)行紅外光譜掃描。

1.2.8 菠蘿蜜果皮多糖紫外光譜分析 將響應(yīng)面優(yōu)化工藝所得多糖JFP-P和JFP-W分別配制成1 mg/mL溶液,使用紫外分光光度計(jì)在波長(zhǎng)200～700 nm范圍內(nèi)掃描。

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用Design-Expert 8.0.6、SPSS 17.0和Origin 9.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理分析和作圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 超聲-微波協(xié)同提取菠蘿蜜果皮多糖單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 PEG分子量對(duì)多糖得率的影響 如圖1所示,實(shí)驗(yàn)表明PEG-200/水體系作為提取溶劑時(shí)，多糖得率最高,與純水作溶劑相比提高29.09%。PEG具有的-OH基團(tuán)能夠加強(qiáng)與多糖的相互作用,從而促進(jìn)多糖在PEG/水體系中的溶解性。隨著PEG分子量的繼續(xù)增加,多糖得率表現(xiàn)出下降趨勢(shì)。這可能是由于低分子量的PEG-200比高分子量的PEG具有較強(qiáng)的極性和較低的粘度,低粘度的溶液有利于按照相似相溶的原理進(jìn)行傳質(zhì)[21]。這與提取金釵石斛多糖時(shí),200 Da在不同分子量的PEG/水體系中得率最高的報(bào)道相近[22]。

圖1 PEG分子量對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率的影響Fig.1 Effect of molecule weight of PEG on polysaccharide yield

2.1.2 PEG-200濃度對(duì)多糖得率的影響 PEG-200的濃度決定提取溶液的極性和粘度,兩者都會(huì)影響多糖得率。由圖2可知,PEG濃度從0.1～0.3 g·mL-1時(shí),果皮多糖得率表現(xiàn)出上升趨勢(shì),當(dāng)濃度為0.3 g·mL-1時(shí)，多糖得率達(dá)到最大值15.21%。這可能是由于增加濃度,有利于更多的多糖溶出;PEG改變?nèi)芤旱暮纳⒁蜃?有利于提高能量傳遞速度和提取效率[23]。當(dāng)超過0.3 g·mL-1后,多糖得率出現(xiàn)下降趨勢(shì)。推測(cè)原因是溶液粘度隨著PEG濃度的增加而增大,導(dǎo)致粘度過高得率下降。因此,PEG-200提取菠蘿蜜果皮多糖的最佳濃度為0.3 g·mL-1。

圖2 PEG-200濃度對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率的影響Fig.2 Effect of concentration of PEG-200 on polysaccharide yield

2.1.3 微波功率對(duì)多糖得率的影響 微波功率是影響菠蘿蜜果皮多糖得率的重要因素之一。如圖3所示,隨著微波功率增加,多糖得率隨之增加。當(dāng)功率增加到65 W時(shí),多糖得率達(dá)到最大值。這是由于在一定范圍內(nèi)增加微波功率有利于溫度上升,溫度升高提高了組織的空化率,使分離介質(zhì)與顆粒的接觸面積增大[24]。微波超過65 W時(shí),溫度過高,空化泡數(shù)量減少同時(shí)空泡破裂對(duì)樣品的影響減弱[25],多糖得率下降。因此,微波功率為65 W時(shí)較為適宜。

圖3 微波功率對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率的影響Fig.3 Effect ofmicrowavepoweron polysaccharide yield

2.1.4 提取時(shí)間對(duì)多糖得率的影響 多糖得率也受到提取時(shí)間的影響,這涉及到溶劑滲透到干粉狀樣品的程度，以及多糖最終從原料中轉(zhuǎn)移出的量[26]。圖4可知,提取時(shí)間為30 min時(shí)多糖得率優(yōu)于其它提取時(shí)間,即在30 min時(shí)菠蘿蜜果皮粉末與PEG水溶液達(dá)到濃度平衡。超聲波和微波作用時(shí)間過長(zhǎng)，可能會(huì)使多糖分子鏈裂解使得多糖得率下降[27]。由此,提取時(shí)間30 min較為適宜。

圖4 提取時(shí)間對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率的影響Fig.4 Effect ofextraction time on polysaccharide yield

2.1.5 料液比對(duì)多糖得率的影響 如圖5所示,多糖得率隨著料液比的減少而呈現(xiàn)上升趨勢(shì),在料液比為1∶40 (g/mL)時(shí)多糖得率達(dá)到最大值14.67%,當(dāng)料液比值小于1∶40 (g/mL)時(shí)多糖得率出現(xiàn)下降。原因可能是在1∶20～1∶40 (g/mL)范圍內(nèi),溶質(zhì)與溶劑之間作用力變小,溶質(zhì)與溶劑間濃度差增大,有利于多糖的溶出,多糖得率增加[28]。當(dāng)料液比值小于1∶40 (g/mL)時(shí),由于多糖的擴(kuò)散量是一定的,后續(xù)減小料液比并不會(huì)促進(jìn)多糖的擴(kuò)散,且超聲波和微波對(duì)樣品的作用程度相對(duì)變小。因此選擇料液比為1∶40 (g/mL)。

圖5 料液比對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率的影響Fig.5 Effect ofsolid-liquid ratio on polysaccharide yield

2.2 菠蘿蜜果皮多糖超聲-微波協(xié)同提取的響應(yīng)面分析

2.2.1 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果 由單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果確定響應(yīng)面試驗(yàn)的因素及水平編碼,根據(jù)Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,在不同提取條件下研究自變量PEG-200/水體系濃度(X1)、微波功率(X2)、提取時(shí)間(X3)、料液比(X4)對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率(Y)的相互影響,同時(shí)優(yōu)化提取工藝參數(shù)。對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸分析,得出提取條件與多糖得率之間的二次回歸方程:

表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 2 Scheme and result of Box-Behnken design

表3 回歸模型方差分析Table 3 Analysis of varlance for the fitted quadratic polynomial model

回歸系數(shù)線性項(xiàng)(X1、X2、X3、X4)的p值均小于0.001,說明均對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率有極顯著影響,并由F值的大小得出對(duì)多糖得率的影響從大到小依次為:X1>X2>X3>X4。在α=0.001水平上一次項(xiàng)和二次項(xiàng)均具有極顯著性。交互項(xiàng)X1X4差異顯著(p<0.05),其余交互項(xiàng)均不具有顯著性(p>0.05),表明菠蘿蜜果皮多糖得率響應(yīng)值的變化十分復(fù)雜,并非簡(jiǎn)單的線性關(guān)系,而是二次關(guān)系。

2.2.2 響應(yīng)面各因素交互作用分析 由圖6可知,X1X4響應(yīng)曲面坡度陡峭,兩變量等高線呈橢圓形,表明兩因素交互作用顯著。其余因素間的交互作用并不顯著。4個(gè)試驗(yàn)因素中PEG-200/水體系濃度(X1)和微波功率(X2)對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率影響最大,隨著二者的延長(zhǎng),果皮多糖得率呈現(xiàn)上升趨勢(shì)。提取時(shí)間(X3)和料液比(X4)對(duì)多糖得率得影響較弱。

圖6 兩因素交互作用對(duì)菠蘿蜜果皮多糖得率影響的響應(yīng)面分析Fig.6 Response surface plots showing the interactive effects of four extraction parameters on polysaccharide yield

2.2.3 菠蘿蜜果皮多糖提取最佳工藝條件的確定及驗(yàn)證試驗(yàn) 將上述多元回歸方程優(yōu)化后得出Box-Behnken試驗(yàn)最佳提取工藝條件為PEG-200/水體系濃度0.34 g·mL-1,微波功率68.22 W,提取時(shí)間31.69 min,料液比1∶41.23 (g/mL)。考慮到試驗(yàn)中的可操作性,調(diào)整為PEG-200/水體系濃度0.34 g·mL-1,微波功率68 W,提取時(shí)間32 min,料液比1∶42 (g/mL)。

在上述優(yōu)化條件下,做3次菠蘿蜜果皮多糖提取試驗(yàn),多糖得率為15.65%±0.29%,與回歸方程預(yù)測(cè)值15.89%接近且相對(duì)誤差為1.51%,表明本試驗(yàn)所得多元回歸方程應(yīng)用在菠蘿蜜果皮提取多糖上是準(zhǔn)確的和可靠的。在多糖得率上比使用純水作為提取溶劑提高30.31%。相比以純水作為溶劑的傳統(tǒng)熱水提取法[29],該體系有效利用低分子量(Da<1000)PEG含有的羥基基團(tuán)加強(qiáng)與多糖間的相互作用,促進(jìn)目標(biāo)多糖在體系中溶解,同時(shí)輔助以超聲-微波協(xié)同作用具有省時(shí)、耗能少和多糖得率高的優(yōu)點(diǎn)。當(dāng)前,低分子量PEG/水體系提取天然產(chǎn)物中的多糖主要使用高速逆流色譜(HSCCC,High Speed Countercurrent Chromatography)進(jìn)一步純化。Zhou等[30]使用HSCCC從基于PEG-400/水體系提取的石榴皮多糖中分離出三個(gè)多糖純化組分。菠蘿蜜果皮多糖均一組分及其性質(zhì)有待課題組進(jìn)一步研究。

2.3 菠蘿蜜果皮多糖體外抗氧化能力比較

2.3.1 DPPH自由基清除能力 DPPH自由基清除法已被廣泛用于評(píng)價(jià)天然化合物的抗氧化活性。分別使用純水和PEG/水體系提取所得多糖對(duì)DPPH自由基的清除能力如圖7所示,在0.25～2.0 mg/mL的濃度范圍內(nèi),JFP-P和JFP-W對(duì)DPPH自由基的清除能力分別為21.26%～69.28%和22.25%～69.72%,兩種多糖均有較強(qiáng)的DPPH自由基清除能力。在5個(gè)試驗(yàn)濃度中JFP-P對(duì)DPPH自由基的清除率都略低于JFP-W。通過Bonferroni多重比較分析,兩種多糖清除DPPH自由基的能力在總體上不存在顯著性差異(p>0.05)。

圖7 菠蘿蜜果皮多糖對(duì)DPPH自由基的清除能力Fig.7 Scavenging effect of polysaccharide from jackfruit peel on DPPH radical注:相同質(zhì)量濃度不同小寫字母表示差異顯著(p<0.05);圖8、圖9同。

2.3.2 OH自由基清除能力 OH自由基是造成生物分子過氧化損傷的重要因素之一。在0.25～2.0 mg/mL的范圍內(nèi),兩種多糖清除OH自由基的能力隨濃度的增加而上升,呈現(xiàn)劑量關(guān)系。當(dāng)多糖濃度在0.25～1.0 mg/mL時(shí),JFP-P和JFP-W清除OH自由基的能力呈現(xiàn)上升趨勢(shì),在之后的濃度中JFP-P和JFP-W 對(duì)OH自由基清除率增加緩慢。JFP-P對(duì)OH自由基清除率在0.25 mg/mL時(shí)略高于JFP-W,但隨著濃度的升高清除自由基的能力弱于JFP-W。通過Bonferroni多重比較分析,兩種多糖清除OH自由基的能力在總體上不存在顯著性差異(p>0.05)。通常,使用極性提取溶劑可以得到更高水平的生物聚合物多糖,在抗氧化活性方面能夠表現(xiàn)出更強(qiáng)的清除超氧陰離子、OH自由基及DPPH自由基能力和更高的還原能力[31]。試驗(yàn)中JFP-P和JFP-W清除DPPH自由基和OH自由基的能力在總體上均不存在顯著性差異(p>0.05)。該結(jié)果與使用PEG-200/水體系和純水分別結(jié)合超聲波法提取金釵石斛多糖后,比較兩種多糖清除自由基的能力所得結(jié)論相近[22]。

圖8 菠蘿蜜果皮多糖對(duì)OH自由基的清除能力Fig.8 Scavenging effect of polysaccharide from jackfruit peel on hydroxyl radical

2.3.3 還原力 還原力可以作為表征天然產(chǎn)物抗氧化活性的指標(biāo)之一,吸光度值大小可以直接指示還原能力。如圖9所示,兩種多糖在濃度范圍內(nèi),還原能力隨濃度的增加呈現(xiàn)上升趨勢(shì),且表現(xiàn)出劑量依賴性,但都明顯低于抗壞血酸。當(dāng)濃度在0.25～1.0 mg/mL時(shí),JFP-P的還原力略高于JFP-W,當(dāng)濃度超過1.0 mg/mL后,JFP-W表現(xiàn)出略高的還原力。通過Bonferroni多重比較分析,兩種多糖在還原力方面總體上不存在顯著性差異(p>0.05)。這與其他文獻(xiàn)報(bào)道的結(jié)果一致,即植物多糖對(duì)DPPH自由基和OH自由基有較強(qiáng)的清除活性,但是還原力相對(duì)較低[32]。

2.4 菠蘿蜜果皮多糖的紅外光譜分析

如圖10所示,JFP-P和JFP-W的紅外光譜具有一定的相似性。3600～3200 cm-1的吸收峰(JFP-P:3426.89 cm-1,JFP-W:3414.17 cm-1)是由O-H伸縮振動(dòng)產(chǎn)生的。2930 cm-1的吸收峰(JFP-P:2930.18 cm-1,JFP-W:2930.92 cm-1)是由C-H伸縮振動(dòng)產(chǎn)生的。上述兩個(gè)吸收峰均是多糖類物質(zhì)特征吸收峰[33]。此外,1749 cm-1處的吸收峰是羰基中碳氧雙鍵非対稱伸縮振動(dòng)產(chǎn)生,表明多糖含有羧基基團(tuán),存在糖醛酸[34]。1680～1600 cm-1相對(duì)較強(qiáng)的吸收峰是由于結(jié)合水的存在[35-36]。C-H的面內(nèi)彎曲振動(dòng)在1470～1300 cm-1之間。1200～950 cm-1的強(qiáng)吸收峰歸因于醚鍵(C-O-C)和吡喃糖環(huán)中存在的羥基[37]?；诘头肿恿縋EG/水體系提取多糖的結(jié)構(gòu)與生物活性間的關(guān)系仍有待深入探究。

圖10 菠蘿蜜果皮多糖的紅外光譜Fig.10 IR of polysaccharide from jackfruit peel

2.5 菠蘿蜜果皮多糖的紫外光譜分析

如圖11所示,經(jīng)200～700 nm掃描后,在260 nm和280 nm處都未出現(xiàn)吸收峰,表明JFP-P和JFP-W均不含核酸和蛋白質(zhì)。

圖11 菠蘿蜜果皮多糖的紫外光譜Fig.11 UV spectraof polysaccharide from jackfruit peel

3 結(jié)論

低分子量(Da<1000)PEG/水體系可以應(yīng)用于提取菠蘿蜜果皮多糖,其優(yōu)化工藝條件為PEG-200/水體系濃度0.34 g·mL-1,微波功率68 W,提取時(shí)間32 min,料液比1∶42 (g/mL),在該條件下多糖得率達(dá)15.65%±0.29%,比使用純水作為提取溶劑提高30.31%。同時(shí)多糖具有一定的清除DPPH自由基和OH自由基能力以及還原力。紅外光譜和紫外光譜表明:菠蘿蜜果皮多糖具有典型的多糖特征吸收峰且不含核酸和蛋白質(zhì)。該工藝為菠蘿蜜果皮多糖進(jìn)一步純化，以及探究PEG/水體系對(duì)多糖構(gòu)效關(guān)系的影響奠定了基礎(chǔ),同時(shí)進(jìn)一步擴(kuò)大了低分子量(Da<1000)PEG/水體系提取天然產(chǎn)物中多糖的應(yīng)用范圍。