◎ 李云輝
(昭通市質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督綜合檢測(cè)中心,云南 昭通 657000)
通常,牛奶的質(zhì)量問(wèn)題在于其中的抗生素殘留以及其他一些人為添加的物質(zhì)等。即使可以控制人為添加物質(zhì)的方式來(lái)提高牛奶質(zhì)量,但抗生素的殘留仍無(wú)法被有效控制。氨基糖苷類化合物(Aminoglycosides,AGs)是由氨基環(huán)醇、氨基糖以及其他糖類組成的抗生素的總稱。它是一種由氨基糖與氨基環(huán)醇以過(guò)氧橋方式連接而形成的苷類。根據(jù)氨基糖苷類的結(jié)構(gòu)特點(diǎn),可分為5種對(duì)環(huán)己醇衍生物的分子結(jié)構(gòu)與取代基,且其在實(shí)際臨床大多是鏈霉胺衍生物和2-脫氧鏈霉胺衍生物。這類抗生素在治療和預(yù)防畜牧類動(dòng)物的疾病方面有十分顯著的作用,是牛奶中一大類殘留的抗生素來(lái)源,其抗菌機(jī)制通過(guò)阻礙細(xì)菌蛋白質(zhì)的合成來(lái)完成,對(duì)多種革蘭氏陽(yáng)性菌和革蘭氏陰性菌有顯著的抗菌效果。長(zhǎng)期攝入含有此類抗生素的牛奶會(huì)在人體內(nèi)產(chǎn)生富集作用,副作用很大,有可能導(dǎo)致耳毒性以及腎毒性等疾病。
目前的檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)方法中牛奶抗生素的檢測(cè)多是利用微生物抗體反應(yīng)的定性檢測(cè)方法,沒(méi)有對(duì)這類化合物直接進(jìn)行專一檢測(cè)和定量。目前,國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)氨基糖苷類抗生素的研究大多集中于種類、結(jié)構(gòu)和在原藥品中的含量檢測(cè),少量有在食品中殘留進(jìn)行檢測(cè)分析研究報(bào)道,但前處理都采用離子交換反向吸附固相萃取柱,或者使用親水-親脂平衡固相萃取柱來(lái)對(duì)待測(cè)樣品進(jìn)行凈化,通過(guò)以多空二乙烯基苯為框架結(jié)構(gòu),雖具備很好的親水性和親脂性和更廣泛的pH值適應(yīng)性。但是,這兩類方法依舊無(wú)法達(dá)到很好的效果,選擇性不高,分離效果不佳。
本文提出一種利用分子印跡技術(shù)發(fā)展而來(lái)的固相萃取柱法,以鏈霉素為模版的方式來(lái)實(shí)現(xiàn)從復(fù)雜基質(zhì)中對(duì)AGs的抗生素進(jìn)行有效的選擇性分離。以期通過(guò)低成本、易操作的技術(shù)來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)氨基糖苷類檢測(cè)前處理,再利用高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[1](HPLC-MS/MS)技術(shù)對(duì)AGs抗生素在牛奶中的殘留量進(jìn)行檢測(cè),達(dá)到滿意的效果。HPLC-MS/MS通常可以檢測(cè)牛奶中的β-內(nèi)酰胺類[2],四環(huán)素類[3],大環(huán)內(nèi)酯類[4],磺胺類以及氨基糖苷類。對(duì)于利用HPLC-MS/MS來(lái)對(duì)AGs殘留量進(jìn)行檢測(cè)的方法,其前處理要求較高,乳制品樣品的基質(zhì)復(fù)雜,含有大量的內(nèi)源性化合物會(huì)對(duì)分析結(jié)果產(chǎn)生一定的干擾。
HPLC-MS/MS技術(shù)成為了現(xiàn)代不可替代的檢測(cè)分析技術(shù)。HPLC是一種高壓高效液相分離技術(shù),而質(zhì)譜的操作需要在真空環(huán)境中才能進(jìn)行;并且在檢測(cè)過(guò)程中液相色譜通常采用無(wú)機(jī)鹽,質(zhì)譜的緩沖劑一般是采用揮發(fā)性的緩沖鹽。為了彌補(bǔ)兩者使用的一些基本物質(zhì)上的沖突,HPLC-MS/MS技術(shù)中采用了大氣壓離子化技術(shù)來(lái)彌補(bǔ)這一缺陷。
分子印跡技術(shù)是一種模板分子技術(shù),即通過(guò)分子印跡聚合物和聚合物單體接觸會(huì)形成一個(gè)多點(diǎn)的作用,并通過(guò)這種聚合過(guò)程將記憶的作用下降。在模板分子移除后,聚合物會(huì)以模板分子空間結(jié)構(gòu)形式來(lái)匹配的多點(diǎn)的孔,這些孔將模板分子及其類似物與識(shí)別特性的選擇。
其基本步驟如下:①印跡聚合單體的產(chǎn)生。向致孔劑(一種含有模板印跡分子的溶劑)中加入功能單體(常用的有硅氧烷功能單體、偶氮功能單體和復(fù)合功能單體),根據(jù)共價(jià)或非共價(jià)作用,使模板分子與功能單體依靠官能團(tuán)之間產(chǎn)生配合作用,先形成主客印跡聚合單體。②剛性聚合物的形成。加入交聯(lián)劑、反應(yīng)劑,在引發(fā)劑、光或熱等條件下引發(fā)單體聚合,使主客印跡聚合單體與交聯(lián)劑通過(guò)自由基產(chǎn)生共聚合,在模板分子周圍包裹成高聯(lián)的剛性聚合物。③洗脫。將剛性聚合物中的印跡分子通過(guò)固相萃取柱洗脫和解離出來(lái)。
本文通過(guò)使用分子印跡技術(shù)進(jìn)行固相萃取,其分子印跡材料的形成過(guò)程如圖1所示。通過(guò)分子印跡技術(shù)進(jìn)行固相萃取,可以對(duì)目標(biāo)痕量分析物產(chǎn)生明顯效果的富集作用,即使在基質(zhì)復(fù)雜的情況下也能獲得極佳的選擇性,同時(shí)有效分離和模板分子物化性質(zhì)相似的待測(cè)物質(zhì),并且此分析方法的表現(xiàn)也具有很高的穩(wěn)定性。
圖1 分子印跡材料的形成基本過(guò)程圖
本文主要以鏈霉素、雙氫鏈霉素、慶大霉素、卡那霉素、阿普拉霉素和壯觀霉素6種AGs藥物作為研究對(duì)象,基于分子印跡固相萃取柱,高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜是AGs的檢測(cè)的一種有效方法。部分AGs的分子結(jié)構(gòu)如圖2所示。
圖2 部分AGs的分子結(jié)構(gòu)示意圖
1261-6420A高效液相色譜儀(美國(guó)安捷倫公司);AB Sciex 5500 QTrap質(zhì)譜儀(美國(guó)Applied Biosystem公司);Analyst 1.5.1數(shù)據(jù)釆集及處理系統(tǒng)。壯觀霉素、鏈霉素、雙氫鏈霉素、慶大霉素、卡那霉素、阿米卡星(純度大于95%),均采購(gòu)自Dr. Ehrenstorfer公司(德國(guó));甲酸(FA)、甲醇(MeOH)和乙腈(ACN)購(gòu)自Fisher公司(美國(guó));三氯乙酸(TCA)購(gòu)自北京檢測(cè)試劑限公司(中國(guó));Oasis HLB和WCX固相萃取柱是用自Waters公司(美國(guó));實(shí)驗(yàn)室用超純水由MiUipore超純水機(jī)制備。0.1 mol/L氫氧化鈉溶液,50%甲酸-甲醇:將甲酸與甲醇以1∶1體積比混合均勻至l00 mL。50%甲酸-乙腈:將甲酸與甲醇以1∶1體積比混合均勻至l00 mL。
取一定量標(biāo)準(zhǔn)品配制成l 000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)貯備液,用超純水稀釋成l00 mg/L的混合溶液。然后再將此將混合溶液用超純水進(jìn)行制成10~5 000μg/L的系列實(shí)驗(yàn)溶液??瞻谆|(zhì)溶液:按需量取適量溶液,用空白基質(zhì)配制成50~5 000 μg/L的空白基質(zhì)溶液,待凈化。
量取牛奶約5 mL(精確至0.1 mL)放入50 mL具塞離心管中,向其中再加入4 mL的去離子水并使用機(jī)器將其進(jìn)行均勻的混合。加入20 mL乙腈-水(3∶1,V/V)溶液進(jìn)行高速振蕩2 min后,2 000 r/min再離心8 min,提取上層清夜至另外一支新的雞心瓶中。用10 mL上述溶液重復(fù)提取3次,合并上清液于同一雞心瓶中。最后使用0.1 mol/L NaOH將溶液的pH值調(diào)為8.5,待凈化。
將提取液在45 ℃環(huán)境下旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至余7 mL左右,并加入2 mL 0.1 mol/L磷酸鹽緩沖液,將溶液全部上樣,再利用固相萃取柱進(jìn)行處理(使用前依次用3 mL甲醇、3 mL水和3 mL 0.1 mol/L磷酸鹽緩沖溶液條件化),然后用3 mL磷酸鹽緩沖液沖洗雞心瓶2次,洗液也移至柱上,用2 mL的初始流動(dòng)相定容,過(guò)濾,待供HPLC-MS/MS分析。
載氣:高純氮?dú)猓慌鲎矚猓簹鍤?;源溫度?20 ℃;脫溶劑氣溫度:350 ℃;錐孔電壓(Cone):18.0 V;毛細(xì)管電壓(Capillary):3.0 kV;溶劑氣體流量:50.0~1 500.0 L/h錐;碰撞電壓(Collision):31.0 V;檢測(cè)模式:電噴霧電離源(ESI)負(fù)離子模式,選擇離子檢測(cè)模式(SIR)對(duì)質(zhì)荷比(m/z573)定量、子離子檢測(cè)(Daughter)定性。色譜柱:ODS柱(ACQUITY UPLC BEH 1.7 μm、2.1×50 mm), 乙 腈 -0.01% 甲酸溶液(31∶69)為流動(dòng)相;柱溫40 ℃;流速0.2 mL/min,進(jìn)樣量:1 μL。色譜柱(150×3 mm,3 μm);進(jìn)樣量:30 mL;流動(dòng)相為甲醇(A)-0.01 mL/L三氟乙酸(B),洗脫梯度:0 min(5.0% A)→5.0 min(30.0% A)→10.0 min(33.5% A)→12.0 min(65.0% A)→17.5 min (65.0% A)→18.0 min(5.0% A)→25.0 min(5.0% A),共25 min。
電噴霧電離源,多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM);ESI+;氣簾氣(CUR)壓力25 psi,霧化氣壓力60 psi(GSI),輔助氣體壓力為50 psi(GS)、電噴霧電壓4.5 kV,去溶劑溫度(TEM)為500 ℃,碰撞室出口電壓(CXP)為11 V,Q0入口電壓(EP)為15 V。所選6種目標(biāo)化合物的參數(shù)見(jiàn)表1。
表1 六種目標(biāo)化合物的參數(shù)表
由于氨基糖苷類物質(zhì)的極性大,常用的反相柱不能有效地保留。因此,想要增強(qiáng)氨基糖苷類抗生素物質(zhì)在色譜柱上的停留時(shí)間,需在流動(dòng)相中加入一些易揮發(fā)的離子對(duì)試劑,如七氯乙酸、三氟乙酸等。而這些離子會(huì)殘留在儀器中從而影響到儀器的精確度,會(huì)增加維護(hù)難度。
本文通過(guò)HILIC色譜柱分離樣品,用流動(dòng)相緩沖氨基糖苷類抗生素的分離和峰形和響應(yīng)鹽濃度觀察HILIC色譜柱。從圖3中可知,都使用HILIC色譜柱來(lái)分離氨基糖苷類抗生素時(shí),阿普拉霉素和慶大霉素的色譜峰有嚴(yán)重拖尾的現(xiàn)象,影響積分。而鏈霉素、雙氫鏈霉素、慶大霉素、卡那霉素的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,想要獲得相對(duì)好一些的峰形,可以在流動(dòng)相中加入較高濃度的緩沖鹽(一般為100~140 mmol/L的甲酸銨)。正如前所述,過(guò)高的緩沖鹽濃度揮發(fā)之后會(huì)降低響應(yīng)靈敏度,也會(huì)給質(zhì)譜檢測(cè)器帶來(lái)一定的污染。因此,本文采用一種氨基柱作為色譜柱。通過(guò)使用氨基柱對(duì)6種AGs抗生素的分離結(jié)果如圖3所示。
圖3 加標(biāo)樣品中提取的離子色譜圖
由氨基糖苷類抗生素的化學(xué)結(jié)構(gòu)可知,該類化合物的分子結(jié)構(gòu)中均含有-OH或者-NH2官能團(tuán),在質(zhì)譜上存在十分強(qiáng)的正離子響應(yīng),從而通過(guò)ESI+模式的掃描方式可以得到很好的分析結(jié)果。首先使用1 mg/kg的單標(biāo)進(jìn)行針泵進(jìn)樣注射分析,正離子模式下用Qi母離子進(jìn)行全掃描。在質(zhì)譜正離子模式下,其一級(jí)質(zhì)譜的氨基糖苷[M+2H]2+或[M+H]+分子離子峰,其規(guī)模較大,將分子離子峰選為母離子。之后再對(duì)6種AGs的母離子進(jìn)行二次質(zhì)譜碎裂,可以得到零散的離子峰的信息。以此推斷出待測(cè)樣品的2個(gè)特征離子對(duì),并進(jìn)一步利用這個(gè)信息在多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)模式下優(yōu)化去簇電壓和碰撞能量等儀器條件,經(jīng)優(yōu)化后的6種氨基糖甘類抗生素的質(zhì)譜參數(shù)如表1所示。
由于氨基糖苷類物質(zhì)的結(jié)構(gòu)中含有-0H或者-NH2,易與H+相結(jié)合,因此,上樣液的pH值會(huì)對(duì)待測(cè)樣品在固相萃取柱上的保留造成一定程度的影響。本研究中,考察了不同pH值對(duì)待測(cè)樣品保留的影響。使用1 mg/kg的混合氨基糖甘類溶液上樣,并提取上樣液,進(jìn)行測(cè)試。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,當(dāng)上樣液的pH值為7~7.5時(shí),所有待測(cè)樣品均無(wú)穿透。洗脫溶劑的優(yōu)化考察了濃度為0%、10%、20%、50%,60%、80%甲酸乙腈作為洗脫溶劑時(shí)對(duì)待測(cè)樣品回收率的影響。使用1 mg/kg的氨基糖苷類溶液上樣,提取洗脫液再進(jìn)行測(cè)試。結(jié)果表明,當(dāng)洗脫溶劑中的甲酸乙腈含量為50%時(shí),6種待測(cè)樣品的回收率比較可觀。
在空白基質(zhì)中添加3個(gè)濃度(50、200、1 000 μg/L)的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,對(duì)不同添加濃度標(biāo)液均做了6次平行測(cè)試,得到的結(jié)果如表2。從表2中可得,對(duì)于卡那霉素、慶大霉素和阿普拉霉素3種AGs而言,利用分子印跡技術(shù)的方法其回收率達(dá)到50%以上,其精密度(RSD)不到10%。對(duì)于鏈霉素和雙氫鏈霉素而言,本方法的回收率分別是30%和40%,且精密度(RSD)也不到10%。對(duì)于壯觀霉素SPC,本方法的回收率較低僅為5%~9.5%,而且精密度(RSD)為10%~15%。
表2 方法回收率與精密度結(jié)果表
利用此文中分子印跡技術(shù)的方法對(duì)本實(shí)驗(yàn)室于2016年5—12月期間的100個(gè)乳制品樣品進(jìn)行AGs藥物的檢測(cè),未檢出AGs。
本研究設(shè)計(jì)的分子印跡固相萃取小柱,能針對(duì)牛奶中氨基糖苷類抗生素實(shí)現(xiàn)快速、準(zhǔn)確、靈敏檢測(cè)高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜方法??疾炝瞬煌盍系墓滔噍腿⌒≈鶎?duì)于牛奶中6種氨基糖苷類抗生素的凈化效果,相比于商品化的固相萃取柱,自制的固相萃取可以有效地凈化乳基,降低基體效應(yīng),提高反應(yīng)的靈敏度。然而,由于樣品前處理階段的滲透現(xiàn)象仍然存在,希望能夠深入下一步的研究。