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        I型牛皰疹病毒gE基因TaqMan探針熒光定量PCR檢測方法建立

        2018-11-23 01:51:14張曉鋒翁永剛李守富葉結(jié)平范紅結(jié)陳鴻軍
        中國動物傳染病學(xué)報 2018年5期
        關(guān)鍵詞:奶牛場重復(fù)性定量

        張曉鋒,翁永剛,陳 岡,李守富,郭 海,葉結(jié)平,范紅結(jié),陳鴻軍

        (1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,南京210095;2.上海市金山區(qū)農(nóng)業(yè)委員會,上海201500;3.上海市金山區(qū)動物疫病預(yù)防控制中心,上海201500;4.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院上海獸醫(yī)研究所,上海200241)

        I型牛皰疹病毒(Bovine herpesvirus 1,BHV-1)又稱傳染性鼻氣管炎病毒(Infectious bovine rhinortracheitis virus,IBRV),主要引起牛的一種急性、熱性、接觸性傳染病,造成傳染性壞死性鼻炎(即“紅鼻病”),可導(dǎo)致機體細胞免疫功能降低和免疫抑制,易引起繼發(fā)感染。BHV-1主要通過空氣、媒介物或者與病牛直接接觸而傳播,傳染性強,對產(chǎn)奶、繁育及使役均有較大影響[1-2]。

        目前已證實gC、gE為BHV-1非病毒復(fù)制所必需的基因,是構(gòu)建缺失疫苗的缺失對象。國外很早就將包括gE缺失的單基因缺失苗、雙基因缺失苗以及三基因缺失苗應(yīng)用于生產(chǎn)實踐,其中g(shù)E基因缺失苗免疫可以在早期產(chǎn)生免疫應(yīng)答,在爆發(fā)早期使用可以有效的預(yù)防病毒流行。但是基因缺失疫苗的使用,迫切需要高靈敏度、高通量的檢測方法與之配套。由于皰疹病毒均含有g(shù)E基因且較為保守[3],因此,本研究根據(jù)BHV-1 gE基因保守序列,設(shè)計1對特異性引物,建立了熒光定量PCR方法,為鑒別BHV-1野毒株和gE基因缺失疫苗株的感染提供技術(shù)手段。

        有調(diào)查報告顯示上海市金山區(qū)奶牛中存在一定程度的BHV感染,并且因繼發(fā)感染引起肺炎等疾病的現(xiàn)象也較為嚴重[4]。本研究通過建立的熒光定量PCR對2015~2016年采集的500份牛鼻腔棉拭子和100份陰道棉拭子進行檢測,明確了上海市金山區(qū)牛群IBR感染情況,在此基礎(chǔ)上可進行針對該病的免疫預(yù)防,促進養(yǎng)牛業(yè)的健康發(fā)展。

        1 材料與方法

        1.2 病毒毒株牛皰疹病毒、牛副流感病毒、牛布氏桿菌、大腸桿菌由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院上海獸醫(yī)研究所提供。

        1.3 主要試劑與儀器TaqMan Universal PCR Master Mix購自Applied Biosystems公司;病毒核酸提取試劑盒(QIAamp viral RNA kit)購自QIAGEN公司;Applied Biosystems 7500型熒光定量PCR儀。

        1.4 標(biāo)準品質(zhì)粒構(gòu)建與引物設(shè)計以BHV-1 Cooper毒株的全基因組序列(GenBank登錄號:KU198480.1),選取其中特異區(qū)域序列與pUC57載體連接,構(gòu)建BHV-1的質(zhì)粒標(biāo)準品序列。通過BLAST比對分析,選擇保守特異區(qū)域設(shè)計引物和探針,在1607~1704 bp處設(shè)計引物和TaqMan探針,qBHV-gE-1607F: 5'-GTCGCTCTGGGTTCAAA GT-3',qBHV-gE-1704R: 5'-GCTGCTACCACGGT GTAAT-3',qBHV-gE probe:5'-FAM -TTGG TTTAGGGACCCGCTTGAAGA-3'-BHQ1。

        1.5 熒光定量PCR方法反應(yīng)體系和條件TaqMan熒光定量PCR擴增反應(yīng)總體系為20 μL:Premix Ex Taq(Probe qPCR)(2×)10 μL,ROX Reference Dye II(50×)0.2 μL,DNA模板2 μL,經(jīng)優(yōu)化后的上、下游定量引物(10 μmol/L)各0.4 μL,探針(10 μmol/L)0.8 μL,用滅菌ddH2O補足20 μL。優(yōu)化后的反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性30 s;95℃變性5 s,60℃退火延伸34 s,并采集熒光40個循環(huán)。

        1.6 敏感性試驗將1×108copies/μL BHV gE的重組質(zhì)粒進行10倍梯度稀釋,使其濃度為1×107~1×100copies/μL,作為標(biāo)準品模板,用于敏感性測試。

        1.7 重復(fù)性試驗以1×106和1×104copies/μL稀釋度的pUC-gE質(zhì)粒標(biāo)準品作為模板,進行批內(nèi)重復(fù)性試驗和批間重復(fù)性試驗。批內(nèi)重復(fù)性試驗是對同一模板同時進行3次重復(fù)測定,批間重復(fù)性試驗是不同時間對同一模板進行3次重復(fù)測定,通過批內(nèi)和批間的Ct值變異系數(shù)(標(biāo)準偏差/重復(fù)值平均數(shù))評估方法的重復(fù)性。

        1.8 特異性試驗采用本研究建立的BHV-1 gE TaqMan熒光定量PCR檢測方法,分別對牛副流感病毒、牛布氏桿菌、大腸桿菌cDNA或DNA進行檢測,評估該方法的特異性。

        1.9 臨床樣品檢測選取上海市金山區(qū)4家奶牛場,采集鼻腔棉拭子液500份、陰道分泌物100份,樣品信息見表1。采用PCR方法對樣品進行初檢,檢測結(jié)果呈陽性者,立即采集病牛和同群牛血樣和鼻腔棉拭子,利用real-time PCR方法進行復(fù)檢。

        表1 采集的樣品信息Table 1 Samples information

        2 結(jié)果與討論

        2.1 real-time PCR標(biāo)準曲線將構(gòu)建的BHV gE質(zhì)粒標(biāo)準品進行10倍系列稀釋,最終濃度在1×107~1×100copies/μL時的標(biāo)準曲線見圖1,相關(guān)系數(shù)R2為0.999,線性關(guān)系良好。

        2.2 敏感性試驗結(jié)果將BHV gE質(zhì)粒標(biāo)準品進行10倍梯度稀釋為1×107~1×100copies/μL,以此為模板分別進行常規(guī)PCR擴增和熒光定量PCR擴增,Ct值大于35,視為陰性。結(jié)果顯示,TaqMan熒光定量PCR檢測的靈敏度最高可達10 copies/μL。

        圖1 BHV-1 gE TaqMan熒光定量PCR動力學(xué)曲線Fig.1 The dynamic curve of TaqMan real-time qPCR for detection of BHV-1 gE

        2.3 重復(fù)性試驗結(jié)果以BHV-1 gE質(zhì)粒標(biāo)準品中的1×106和1×104copies/μL 2個稀釋度作為模板,對這2個稀釋度在不同時間段進行2次重復(fù)測定,每次對同一模板同時進行3次重復(fù)測定及設(shè)置3個重復(fù)孔,按照優(yōu)化的擴增體系和條件進行實時熒光定量PCR。結(jié)果表明批內(nèi)和批間變異系數(shù)均小于1%,說明建立的BHV-1 gE熒光定量PCR方法具有較好的重復(fù)性,結(jié)果穩(wěn)定可靠(表2)。

        2.4 特異性試驗結(jié)果通過建立的BHV-1 gE TaqMan熒光定量PCR檢測方法,分別對牛副流感病毒、牛布氏桿菌、大腸桿菌cDNA或DNA進行檢測,結(jié)果顯示,除標(biāo)準品有特征性的擴增曲線外,其他病原均沒有特征性的擴增曲線(圖2),說明建立的熒光定量PCR與其他牛病毒細菌均無交叉反應(yīng),特異性強。

        表2 BHV-1 gE TaqMan熒光定量PCR檢測方法的重復(fù)性Table 2 Repeatability of TaqMan real-time qPCR for detection of BHV-1 gE

        圖2 BHV-1 gE TaqMan熒光定量PCR檢測方法的特異性Fig.2 Speci ficity of TaqMan quantitative qPCR for detection of BHV-1 gE

        2.5 臨床樣品檢測結(jié)果通過TaqMan熒光定量 PCR檢測發(fā)現(xiàn),在3家小型奶牛場(金山衛(wèi)鎮(zhèn)奶牛場、上海振華奶牛有限公司、上海憶南奶牛有限公司)采集的鼻腔棉拭子樣品中陽性數(shù)量均比較少(1%~1.5%),而大型養(yǎng)殖場(光明荷斯坦金山種奶牛場)的陽性率達20%(表3)。采集的陰道棉拭子中,大型養(yǎng)殖場的陽性率高達30%,小型奶牛場的陽性數(shù)量在0~5%之間,明顯低于大型養(yǎng)殖場。

        表3 奶牛樣品中的BHV-1的TaqMan熒光定量檢測PCR

        牛皰疹病毒感染在世界范圍內(nèi)廣泛存在,尤其在養(yǎng)牛業(yè)比較發(fā)達的地區(qū),隨著養(yǎng)殖規(guī)模的不斷擴大,BHV流行趨勢愈發(fā)嚴重。BHV-1侵入牛體后,以潛伏感染和持續(xù)性感染為主要特點,病??山K生帶毒。該病目前缺乏特效藥物,病牛死亡率較高,給養(yǎng)殖業(yè)可造成巨大的經(jīng)濟損失。近年來,受國外BHV感染廣泛流行的影響,我國從國外引進種牛后,各地陸續(xù)報道了BHV-1抗體陽性牛檢出的情況。鑒于此病危害較為嚴重,且分布較廣,因而,對該病的發(fā)生與流行情況進行普查工作顯得十分必要[1-2]。

        因為BHV-1可導(dǎo)致持續(xù)性感染,免疫并不能有效阻止野毒入侵和繁殖,防治本病的關(guān)鍵措施是對牛群進行定期檢疫,控制傳染源。家畜傳染病的診斷方法有多種,如血清中和試驗(SN)、瓊脂擴散試驗、間接血凝試驗、ELISA以及核酸探針檢測技術(shù)等。這些方法對檢測BHV-1起到了重要作用,但同時也存在特異性不強,靈敏度差,耗時長等缺點。隨著PCR技術(shù)的快速發(fā)展,熒光定量PCR方法以周期短、特異性強,靈敏度高等特點成為病毒檢測的重點[3-4]。王海軍等[5]建立real-time PCR方法擴增BHV-1保守性基因,與本方法反應(yīng)靈敏度相近,但相比較而言,本研究建立的TaqMan熒光定量PCR比較適用于gE缺失弱毒疫苗使用的感染牛群。

        BHV自然感染狀態(tài)下有一定的潛伏期,一般為3~6 d。BHV可感染各個年齡和品種的牛,但6月齡以上的牛更為易感[1]。家畜感染BHV后,臨床表現(xiàn)復(fù)雜多樣,主要有呼吸道型、生殖道型、腦炎型、結(jié)膜炎型。參照基因組序列,本研究選取BHV-1 gE基因設(shè)計引物,通過TaqMan探針法Real-time PCR檢測發(fā)現(xiàn),3家小型奶牛場采集樣品的陽性數(shù)量均比較少(在0%~5%),而大型養(yǎng)殖場的陽性率達20%~30%(見表3)。而陰道棉拭子中,大型養(yǎng)殖場的陽性率高達30%,小型奶牛場的陽性數(shù)量在0-5%之間,明顯低于大型養(yǎng)殖場。這說明呼吸道型、生殖道型均存在,總體上大型奶牛場陽性率高于小型奶牛場。

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