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        缺氧預處理骨髓間充質干細胞移植聯合清熱化瘀方對腦缺血損傷大鼠血管新生的影響

        2018-11-14 03:45:42胡躍強甘業(yè)賢秦紅玲
        中國老年學雜志 2018年21期

        胡躍強 甘業(yè)賢 梁 妮 陳 煒 秦紅玲 唐 農

        (廣西中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院,廣西 南寧 530023)

        迄今為止,盡管溶栓、支架植入等血管內治療日益成熟,能顯著提高腦梗死患者的成活率,但不能使已經壞死的神經元再生。隨著骨髓間充質干細胞(BMSCs)移植和分化等技術的日漸成熟,為病損神經元的重建提供了全新策略〔1〕,但其移植后在宿主內的存活率和分化率不高,使其療效難達滿意〔2〕。而缺氧預處理(HP)作為目前提高干細胞移植效果的新興方法在許多細胞系已被證實〔3,4〕。以“濁毒”和“瘀血”為病機創(chuàng)制的清熱化瘀方,具有解毒降濁、活血化瘀的功效,前期動物實驗表明該方治療腦梗死的效果顯著〔5~7〕。本實驗通過研究清熱化瘀方聯合HP-BMSCs移植對大鼠血管內皮生長因子(VEGF)表達及血管新生的影響,旨在探討其神經保護的部分作用機制。

        1 材料和方法

        1.1實驗動物與分組 健康3月齡雄性SD大鼠216只(SPF級,廣西醫(yī)科大學動物實驗中心提供,動物許可證號:SCXK桂2014-0002),體重(250±50)g,隨機分為假手術組(SO)、模型組(MCAO)、BMSCs移植對照組(N-BMSCs)、經HP后的BMSCs移植組(HP-BMSCs)、BMSCs移植聯合清熱化瘀方組(BMSCs+QRHY)、HP-BMSCs移植聯合清熱化瘀方組(HP+QRHY)各36只,根據細胞移植后取材時間點(7、14、28 d),將每組再分3個亞組(n=12)。

        1.2實驗藥物及主要儀器試劑 ①實驗藥物:清熱化瘀方:水牛角30 g、丹參15 g、地龍10 g、赤芍15 g、川芎10 g、郁金10 g、石菖蒲10 g、天竺黃10 g、酒大黃6 g,給予本方濃縮顆粒劑按1.4 ml/100 g體重濃度灌胃,其濃度及等效劑量按人和動物間體表面積比值表折算。②主要試劑及儀器:L-DMEM培養(yǎng)基(上海Gibco/Hyclone公司),優(yōu)級胎牛血清、淋巴細胞分離液 (天津灝洋生物有限公司),兔抗VEGF(BioVision),倒置熒光相差顯微鏡(日本OLYMPUS),免疫組化試劑盒(北京中杉),TUNEL試劑盒(Roche),CD31/PECAM-1 Antibody(NB100-2284)。

        1.3BMSCs的培養(yǎng)、鑒定及HP方法 ①MSCs培養(yǎng):采用全骨髓貼壁培養(yǎng)常規(guī)方法分離獲得3周齡SD大鼠BMSCs,并按1∶3 的比例傳代培養(yǎng),收集第4代細胞,調整其濃度為106個/ml。②BMSCs鑒定:取第4代BMSCs,加入TITC熒光標記的抗CD34、CD45、CD90抗體,予流式細胞技術檢測細胞表面抗原標記率。③HP方法:將BMSCs按1∶3 的比例傳代培養(yǎng)達80%融合,換液后進行HP,在ProOx-C-chamber系統(Biospherix,Redfield,NY,USA)中設置調控缺氧濃度為0.5%,缺氧時間24 h。

        1.4動物造模及藥物干預方法 SO組線栓只插入頸內動脈9 mm;參照改良的Longa線栓法〔8〕建立腦缺血再灌注(I/R)模型,缺血2 h后拔出栓線進行再灌注;N-BMSCs和HP-BMSCs組再灌注后24 h經頸內動脈分別給予BMSCs、HP-BMSCs懸浮液200 μl,細胞數2×106個/ml,并予同等體積的生理鹽水灌胃;BMSCs+QRHY和HP+QRHY組再灌注前4 d給予清熱化瘀方顆粒劑灌胃(14 g·kg-1·d-1),1次/d,待動物清醒后繼續(xù)灌胃。其濃度及等效劑量按人和動物間體表面積比值表折算。

        1.5大鼠神經功能缺損評分(NSS) I/R大鼠NSS按改良神經功能評分法〔9〕在細胞移植各時間點處死實驗大鼠前評分,總分18分,評分越低表明神經功能損傷越輕。

        1.6TUNEL法檢測缺血半暗帶細胞凋亡 參照試劑說明書進行操作。光學顯微鏡下觀察標本缺血半暗帶區(qū)域,被試劑染成棕褐色的細胞為凋亡細胞,每張切片任意選取4個視野(×400),取平均值作為測定值并計算出陽性細胞數。

        1.7Western印跡檢測缺血半暗帶VEGF蛋白表達 ①蛋白樣品收集:以蛋白裂解液常規(guī)提取各組大鼠缺血半暗帶腦組織蛋白,經勻漿離心后以聚氰基丙烯酸正丁酯(BCA)法測定各組蛋白濃度;②電泳:將收集的蛋白樣品中加入5倍蛋白上樣緩沖液,變性冷卻后,采用10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)垂直電泳進行蛋白分離(100 V);電泳后將凝膠上的蛋白條帶電轉移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜上進行免疫反應(約80 min);③轉膜:使用Bio-Rad轉膜裝置,將凝膠上的蛋白條帶電轉移至PVDF膜上(300 mA,120 min);④免疫反應:于室溫下封閉1 h,經緩沖液洗膜后,加入一抗VEGF(1∶1 000),4℃孵育過夜,次日經洗膜后加入二抗(1∶2 000)置室溫下孵育1 h;⑤蛋白檢測:化學發(fā)光劑(ECL)檢測轉印膜上靶蛋白信號,于暗室中曝光X線片,采用Alpha Ease FC圖像分析軟件對條帶進行光密度(OD)分析,以目的條帶與內參β-actin的比值表示目的蛋白表達水平。

        1.8CD31免疫組化染色 取腦組織、固定、脫水、石蠟包埋,按5 μm厚度連續(xù)切片,免疫組化采用SP法。CD31/PECAM-1抗體(1∶250),按試劑盒要求進行操作。參照文獻〔10〕,采用Imagepro-plus6.0 軟件分析免疫組化圖片,先以30倍低倍鏡找出大腦皮層缺血半暗帶3個微血管密度(MVD)最高的區(qū)域(即熱點區(qū)),再換高倍鏡(×400)計數被CD31染成陽性棕色的微血管數目,每個樣本用5個400倍視野下的血管數目的平均值表示。

        1.9統計學分析 采用SPSS18.0統計軟件進行單因素方差分析。

        2 結 果

        2.1各組NSS比較 SO組未見神經功能缺損;其余各組在I/R后第7、14、28天均出現不同程度的神經功能缺損;各相同時間點相比,各移植組NSS顯著低于MCAO組,其中以HP+QRHY組減少的最為明顯(P<0.05),見表1。

        2.2各組神經細胞凋亡數比較 TUNEL法顯示,各組神經細胞凋亡均于7 d達到高峰,至14、28 d逐漸下降。MCAO組7、14、28 d細胞凋亡數仍顯著高于SO組(P<0.05或P<0.01);與MCAO組比較,N-BMSCs、HP-BMSCs、BMSCs+QRHY、HP+QRHY組7、14、28 d細胞凋亡數顯著減少(P<0.05);與HP-BMSCs組比較,BMSCs+QRHY、HP+QRHY組7、14 d細胞凋亡數進一步減少,以HP+QRHY組減少更為明顯(P<0.05)。見表2,圖1。

        表1 各組神經功能缺損評分比較分,n=6)

        1)與SO組、2)與MCAO組、3)與N-BMSCs組、4)與HP-BMSCs組、5)與BMSCs+QRHY組比較:均P<0.05

        表2 各組凋亡細胞計數比較個/視野,n=6)

        與SO組比較:1)P<0.01,2)P<0.05;與MCAO比較:3)P<0.05;與HP-BMSCs組比較:4)P<0.01,5)P<0.05

        2.3各組MVD計數比較 CD31免疫組化結果顯示,各組缺血半暗帶區(qū)MVD計數在7 d達到高峰,14、28 d有所回落。MCAO組7、14、28 d顯著高于SO組(P<0.05);HP-BMSCs、BMSCs+QRHY、HP+QRHY組顯著高于N-BMSCs組(P<0.05),HP+QRHY組顯著高于HP-BMSCs組(P<0.05)。見表3,圖2。

        圖1 7 d各組神經凋亡(×400)

        表3 各組MVD計數比較個/mm2,n=6)

        與SO組比較:1)P<0.05;與MCAO組比較:2)P<0.05;與N-BMSCs組比較:3)P<0.05;與HP-BMSCs組比較:4)P<0.05;同表4

        圖2 7 d各組CD31的表達(×400)

        2.4各組VEGF蛋白表達比較 Western印跡顯示,各組VEGF蛋白表達均于7 d達到高峰,至14、28 d表達逐漸下降,MCAO組7、14 d表達顯著高于SO組(P<0.05);與MCAO組比較,N-BMSCs、HP-BMSCs、BMSCs+QRHY、HP+QRHY組7、14、28 d VEGF蛋白表達顯著增加(P<0.05);與HP-BMSCs組比較,BMSCs+QRHY、HP+QRHY組蛋白表達進一步增加,以HP+QRHY組增加更為明顯(P<0.05)。見表4,圖3。

        表4 各組VEGF蛋白表達比較值,n=6)

        圖3 各組VEGF蛋白表達電泳

        3 討 論

        BMSCs移植在臨床中的應用日益受到重視,然而在應用中也存在諸多問題,如何使其成為方便、高效的細胞制劑,是目前亟待解決的難題。近年來研究發(fā)現HP可能作為一種提高干細胞移植效果的方法而備受關注,其機制可能為激活內源性保護機制,如保護性蛋白的激活,從而提高細胞或機體的抗凋亡能力并刺激血管新生;而血管新生可改善腦組織血流、促進神經修復、清除壞死組織,成為治療急性腦卒中的關鍵〔10,11〕。目前不少體外實驗證實經HP處理的神經干細胞同樣具有協同神經保護作用〔3,12〕。BMSCs移植可促進缺血損傷區(qū)的神經功能修復,可能機制是釋放營養(yǎng)神經因子調動內源性修復機制,減少細胞壞死,促進神經和血管新生,如其能提高缺血半暗帶VEGF表達水平,從而促進新生血管生成;或者直接分化成神經細胞并在缺血損傷部分再生出神經,其能促進神經功能的恢復已得到諸多研究所證實〔10~13〕。鑒于目前BMSCs的移植研究存在諸如誘導增殖、定向分化、安全性和療效等問題,以基因修飾或用細胞因子和其他物質處理BMSCs移植又存在諸多不良反應。在血管新生的研究中,CD31又稱為血小板內皮細胞黏附分子-1,是一種內皮細胞連接分子,主要表達于內皮細胞,是現在最常用的血管內皮細胞分化的標志之一,常用于MVD的測定〔13〕,免疫組化檢測指標可作為機體血管生成的標志。VEGF又稱為血管通透性因子,在血管生成的起始階段起關鍵作用,通過絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路和磷脂酰肌醇-3激酶(PI3k)/蛋白激酶B(Akt)信號通路可以直接并特異地作用于血管內皮細胞,促進其分裂、增殖和遷移,促進腦梗死后新生血管和側支循環(huán)形成,達到保護腦缺血損傷的作用〔14〕。

        腦卒中的核心在于“腦絡瘀阻”,其病機的核心是氣血逆亂。氣變于病之始,血變于病之成,“氣不順則為風”、“氣有余便是火”,風火相合,上犯腦髓,竄入經絡,血脈澀滯,凝而為痰,而成缺血性腦卒中。針對以上病機,本文提出“清熱解毒,化瘀通絡”的治法(簡稱清熱化瘀法),解毒以對抗損害因素是為祛邪,通絡以暢行氣血是為扶正,并在此基礎上組建了清熱化瘀方。前期臨床研究表明本方是對腦梗死有確切療效的中藥復方制劑〔15〕,動物實驗研究表明其可促進腦梗死后神經干細胞的增殖,提高干細胞的成活率,具有較好的神經保護作用〔6,7〕。本研究首次嘗試以HP-BMSCs移植聯合清熱化瘀方來治療急性腦梗死,體現了中醫(yī)“治未病”的理念,這為中醫(yī)藥防治腦卒中提供了可供借鑒的思路和方法。

        本實驗結果表明,I/R損傷大鼠經移植BMCs后神經缺損癥狀減輕,細胞凋亡減少,MVD測定計數升高,VEGF蛋白表達上調,其可能機制是通過上調VEGF的表達從而提高MVD,從而產生神經保護作用。

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