龐惟俏,郭德軍*
(1.黑龍江八一農(nóng)墾大學食品學院,黑龍江 大慶 163319;2.欽州學院食品工程學院,廣西 欽州 535000)
優(yōu)質(zhì)大豆醬多鮮艷光澤、黏度適中、味鮮醇厚、咸甜適口,可用作烹制各種菜肴。同時,大豆醬富含賴氨酸和不飽和脂肪酸,發(fā)酵過程中可產(chǎn)低聚肽類,可均衡飲食結(jié)構(gòu),促進血液循環(huán),并具有降血脂、調(diào)節(jié)胰島素、預防癌癥等保健功能,備受廣大消費者關(guān)注[1-2]。
大豆醬中存在豐富的微生物資源,這些微生物均對大豆醬的香氣、品質(zhì)發(fā)揮重要作用[3]。宏基因組結(jié)合傳統(tǒng)微生物分離技術(shù)研究表明:魯氏酵母、耐鹽表皮葡萄球菌和解淀粉芽孢桿菌是寶泉醬中的優(yōu)勢菌,魯氏酵母經(jīng)18S rDNA測序的序列豐度為97.38%,兩株細菌經(jīng)16S rDNA測序的序列豐度分別為57.43%、1.57%。故預測大豆醬中的揮發(fā)性成分可能來源于這些優(yōu)勢微生物,利用優(yōu)勢菌接種發(fā)酵,可在不失傳統(tǒng)風味的基礎(chǔ)上縮短大豆醬的發(fā)酵周期。因此研究優(yōu)勢微生物對大豆醬風味的影響十分有意義。
頂空固相微萃?。╤ e a d s p a c e s o l i d p h a s e microextraction,HS-SPME)結(jié)合氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)技術(shù)目前已廣泛應(yīng)用于發(fā)酵食品的揮發(fā)性成分的研究中,應(yīng)用在大豆醬中香氣成分的測定也有報道[4]??敌竦萚5]利用GC-MS技術(shù)證實黃豆中不同類別氨基酸含量與豆醬風味物質(zhì)存在相關(guān)性。龐惟俏等[6]利用GC-MS分析工廠醬和農(nóng)家醬揮發(fā)性成分的種類和含量的區(qū)別,工廠醬更優(yōu)。電子鼻[7]是模擬動物的嗅覺,利用氣體傳感器陣列的響應(yīng)值來識別氣味的電子系統(tǒng),響應(yīng)時間短[8]、檢測快速、測定范圍較廣、重復性好,能挖掘人鼻不能嗅聞的氣體,在食品行業(yè)發(fā)揮著越來越重要的作用[9],目前,電子鼻用于分析面醬和花生醬等醬類中香氣物質(zhì)。樓飛等[10]使用電子鼻技術(shù)區(qū)分2 種花生醬香氣成分的差異,為日后鑒定不同品牌的花生醬提供理論依據(jù);但應(yīng)用電子鼻分析大豆醬香氣成分之間差異性的研究鮮有報道。魯氏酵母屬于豆醬呈味的有益酵母,其發(fā)酵后的代謝產(chǎn)物包括醇類和甘油[11]。目前,鮮見文獻報道耐鹽表皮葡萄球菌在大豆醬中檢出,Montel等[12]發(fā)現(xiàn)木糖葡萄球菌和表皮萄球菌作為肉制品發(fā)酵劑,可生成氨基酸類和其他重要的風味物質(zhì)。解淀粉芽孢桿菌具有較強的淀粉酶和酸性蛋白酶活性[13],其水解可產(chǎn)生還原性單糖和氨基酸,可促進醬的美拉德反應(yīng)[14]。本研究以從寶泉嶺大豆醬中分離的優(yōu)勢菌Zygosaccharomycse rouxii BSZ.16910、Staphylococcus epidermidis BSS.17312和Bacillus amyloliquefaciens BSB.170120為研究對象,按一定比例組合接種于無菌大豆醬醅中進行發(fā)酵,利用電子鼻和HS-SPME-GC-MS技術(shù)分析不同微生物對大豆醬揮發(fā)性成分的影響;通過因子分析,進一步確定優(yōu)勢菌對大豆醬香氣成分的貢獻,對明確香氣的微生物來源、縮短發(fā)酵時間、穩(wěn)定發(fā)酵品質(zhì)、揭示呈香機理、優(yōu)化產(chǎn)品質(zhì)量和生產(chǎn)工藝改進具有指導意義。
發(fā)酵7 d的大豆醬醬醅和發(fā)酵34 d成熟大豆醬由黑龍江省寶泉嶺醬廠提供。菌種:Z. rouxii BSZ.16910、S. epidermidis BSS.17312、B. amyloliquefaciens BSB.170120為利用宏基因組技術(shù)和傳統(tǒng)微生物分離技術(shù),從成品寶泉醬中分離獲得的優(yōu)勢菌,現(xiàn)保藏于黑龍江八一農(nóng)墾大學食品學院分子生物技術(shù)實驗室。
GC 6890-MS 5973N型GC-MS聯(lián)用儀 美國Agilent公司;50/30 μm二乙基苯/碳分子篩/聚二甲基硅氧烷萃取頭、J&W DB-5石英毛細柱(60 m×0.25 mm,0.25 μm)美國J&W Sci公司;PEN3.5型便攜式電子鼻 德國Airsence公司;LDZF-30L型立式壓力蒸汽滅菌器 上海申安醫(yī)療機械廠。
1.3.1 醬醅無菌化處理
7 份大豆醬醅,每份500 g,分裝在三角瓶中,110 ℃滅菌20 min,間歇24 h后再滅菌一次,平板法檢查醬醅無菌后使用。
1.3.2 大豆醬樣品制備
菌種Z. rouxii BSZ.16910接種在YPD液體培養(yǎng)基中,28 ℃培養(yǎng)24 h;S. epidermidis BSS.17312接種在MRS液體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)48 h;B. amyloliquefaciens BSB.170120接種在LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃培養(yǎng)48 h。將菌液3 000 r/min制冷離心后,經(jīng)磷酸鹽緩沖液洗滌2 次,在無菌環(huán)境中,將菌液體積比按照表1進行1∶1∶1方式組合,按2‰的接種量,接入醬醅中進行發(fā)酵,參照企業(yè)的產(chǎn)品加工技術(shù)參數(shù)和工藝進行發(fā)酵,發(fā)酵時間約為20 d(按照菌落計數(shù)國標法對每種樣品發(fā)酵過程中微生物總數(shù)進行計數(shù),待其總數(shù)達到成品寶泉醬的總數(shù)時,停止發(fā)酵),采集樣品至于無菌袋中4 ℃保存,用于后續(xù)實驗,樣品命名如表1所示。
表1 添加菌株組合方式發(fā)酵的大豆醬名稱Table 1 Pure and mixed starter cultures for fermented soybean paste
1.3.3 感官評價
選擇有經(jīng)驗的實驗室品評人員(5 位男性、5 位女性)對大豆醬的稠度(10 分)、硬度(10 分)、色澤(20 分)、氣味(20 分)、均勻性(20 分)、總體可接受性(20 分)進行感官評分,滿分100分,評分規(guī)則[11]如表2所示。
表2 大豆醬感官評分標準Table 2 Criteria for sensory evaluation of fermented soybean paste
1.3.4 電子鼻檢測
分別取不同種大豆醬樣品約1.00 g,置于電子鼻專用瓶內(nèi)。將電子鼻系統(tǒng)進行預熱和校準,確保電子鼻采集數(shù)據(jù)時的精確度和穩(wěn)定性。電子鼻分析條件:傳感器清洗時間設(shè)置180 s,零點校準時間10 s,檢測時間60 s,進樣流量150 mL/min,進樣量250 μL,注射器溫度70 ℃。按上述條件,每個樣品準備3 個重復,取48~59 s處的信號作為電子鼻分析的時間點。電子鼻傳感器性能描述見表3。
表3 電子鼻傳感器性能描述Table 3 Performance description of ten electronic nose sensors
1.3.5 揮發(fā)性成分測定
萃取條件:取每種大豆醬約10 g加入40 mL樣品瓶中,加入經(jīng)過稀釋的對甲氧基苯甲醛內(nèi)標溶液0.01 μL,將樣品瓶放入60 ℃水浴中平衡10 min,將老化5 min的萃取針頭插入樣品瓶中,推出纖維頭,頂空氣體中恒溫60 ℃萃取30 min,于250 ℃解吸1 min,啟動儀器采集數(shù)據(jù)。
GC條件:J&W DB-5石英毛細柱(60 m×0.25 mm,0.25μm);進樣口溫度250 ℃;載氣為氦氣(He),流速1.0 mL/min;采用程序升溫,由室溫升至80 ℃保持2 min,以4 ℃/min升至180 ℃,并保持3 min,以5 ℃/min升至230 ℃,保持5 min,降溫至80 ℃;進樣方式為不分流進樣。
MS條件:離子源在225 ℃全掃描;電子電離源;電子能量70 eV;質(zhì)量掃描范圍50~500 u。
1.4.1 GC-MS數(shù)據(jù)分析
定性分析利用計算機對采集到的質(zhì)譜圖進行檢索,輔助人工解析圖譜,與NIST 02.L標準譜庫進行對照匹配。定量分析根據(jù)內(nèi)標物的濃度、樣品中各組分的峰面積與內(nèi)標對甲氧基苯甲醛的峰面積比[15],大豆醬樣品中各組分含量按下式計算:
式中:A為大豆醬各揮發(fā)性成分含量/(ng/g);m1為內(nèi)標物對甲氧基苯甲醛的質(zhì)量/μg;m為每種大豆醬樣品的質(zhì)量/g。
1.4.2 電子鼻數(shù)據(jù)分析
主成分分析(principal component analysis,PCA)由電子鼻自帶軟件完成。
1.4.3 數(shù)據(jù)處理
利用SPSS 18.0軟件對主要的揮發(fā)性香氣成分進行因子分析,相關(guān)關(guān)系的變量X1、X2…X6代表檢測出的香氣化合物的種類。
表4 優(yōu)勢菌發(fā)酵的大豆醬感官評分結(jié)果Table 4 Sensory evaluation of fermented soybean paste samples
由表4可知,不同菌株按一定比例接種醬醅,發(fā)酵后的感官評價排名為BM6>BM7>BM3>BM2>BM5>BM4>BM1。BM6接種了魯氏酵母菌和表皮葡萄球菌,酵母菌代謝氨基酸、分解糖,產(chǎn)生風味前體物質(zhì);表皮葡萄球菌具有明顯的蛋白酶和脂肪酶活性[16],有利于大醬鮮味氨基酸和風味酯類物質(zhì)的產(chǎn)生,也可能是這2 種菌在醬醅中有很好的協(xié)同作用,有利于風味物質(zhì)在數(shù)量和種類上的增加。BM1的感官評分較低,有微弱的臭味,這表明僅添加解淀粉芽孢桿菌的豆醬風味較差,其發(fā)酵的大豆醬的顏色較深,均勻性較差;但BM1的稠度較大,因為解淀粉芽孢桿菌釋放黏度高的黏液。張娟等[17]證實解淀粉芽孢桿菌在大豆醬中屬有益菌,可抑制雜菌生長,延長發(fā)酵食品的保質(zhì)期。但解淀粉芽孢桿菌易生成芽孢而比較耐熱,易造成產(chǎn)品殺菌不徹底,容易引起包裝后的成品醬細菌總數(shù)超標。
圖1 優(yōu)勢菌種發(fā)酵的大豆醬電子鼻傳感器特征響應(yīng)值雷達圖Fig. 1 Radar chart of characteristic response values of fermented soybean paste samples from electronic nose
圖2 優(yōu)勢菌發(fā)酵的大豆醬電子鼻PCA圖Fig. 2 PCA plot of electronic nose data of different soybean paste samples
根據(jù)表3中電子鼻的10 個傳感器性能描述,并結(jié)合圖1可知,8 種樣品對10 個傳感器的特征響應(yīng)值均在2.5以下,其香氣成分均對傳感器W1W、W2W和W5S響應(yīng)強度較大;其次是傳感器W2S、W3S、W1S;但傳感器W5C、W6S、W3C、W1C對大豆醬的香氣響應(yīng)強度極小。上述結(jié)果表明,電子鼻傳感器對大豆醬中的含硫化合物、醇類及氮氧化合物特別靈敏,而對烷烴類、氫氣、芳香烴、芳香大分子響應(yīng)不敏感。由圖1可以看出,10 種傳感器對8 個樣品的響應(yīng)強度值十分接近,這表明7 種優(yōu)勢菌接種大豆醬的特征性香氣成分的差異相對較小,初步判定它們與成品大豆醬(BS34)的揮發(fā)性成分組成相似。
為進一步確定不同菌種發(fā)酵大豆醬的風味與成品大豆醬的相似程度,通過PCA法對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,將傳感器的數(shù)值進行轉(zhuǎn)換及降維[18-19]。由圖2可以看出,PC1貢獻率為81.293%,PC2貢獻率為11.661%,兩者累計貢獻率為92.954%,較全面地反映原始數(shù)據(jù)的降維信息,說明二者包含全部樣品的整體香氣變化信息。從7 種菌種組合發(fā)酵的大豆醬與成品大豆醬之間的距離可看出,成品大豆醬與BM6的距離最小,與BM7的距離最大,這說明菌株M2和M3混合后接種大豆醬與成品大豆醬香氣相接近,差異不顯著,這與其感官評分結(jié)果一致;3 種混合菌株發(fā)酵的大豆醬風味和成品大豆醬之間差異較顯著。因此,可考慮在大豆醬發(fā)酵過程中接種M2和M3,不但縮短發(fā)酵周期,并在一定程度上滿足成品大豆醬風味。同時,BM4和BM5的橢圓區(qū)有部分重疊,表明其發(fā)酵成熟后香氣相近,這可能與接入的M1有關(guān)。張玉玉等[19]利用電子鼻對7 種面醬煮制前后的香氣進行比較,把相似度較高的樣品聚類在一起,PC1和PC2的貢獻率分別為99.839%和0.138 3%。大豆醬中主要的揮發(fā)性成分是醇酯類[20],本實驗中使用的電子鼻缺少酯類物質(zhì)的檢測器,因此,不能有效地區(qū)分樣品風味之間的差異。
為進一步闡明大豆醬揮發(fā)性成分的微生物來源及含量,明確不同菌種發(fā)酵對大豆醬揮發(fā)風味的貢獻。由表5可知,利用HS-SPME-GC-MS在7 種樣品中共檢出38 種揮發(fā)性成分,包括15 種酯、6 種醇、6 種醛酮類、3 種酸酚類、8 種其他化合物。在單一菌種發(fā)酵的BM1、BM2和BM3中分別檢出10、15、15 種揮發(fā)性成分,含量分別為190.02、101.42 ng/g和538.37 ng/g。BM3中揮發(fā)性成分含量最多,可能是因為魯氏酵母的主要作用是醇類發(fā)酵,可合成多種酯類香氣成分、甘油和多元醇,使得其揮發(fā)性成分含量較高[21]。混合菌種發(fā)酵的BM4、BM5、BM6、BM7中共鑒定出18、12、16、11 種化合物,含量分別為662.33、166.89、218.50 ng/g和721.52 ng/g。主要的揮發(fā)性成分包括亞油酸乙酯、棕櫚酸乙酯、苯甲酸乙酯、3-甲基-1-丁醇、苯乙醇、苯甲醛、苯乙醛、3-甲氧基苯乙酮。每種大豆醬揮發(fā)性成分的種類較成品大豆醬揮發(fā)性成分減少約10 種,含量降低在188.47~743.1 ng/g之間。
從表5可以看出,M1、M2、M3菌株無論是單獨發(fā)酵還是混合發(fā)酵,酯和醇都是主要的呈香成分,其中棕櫚酸乙酯是它們在大豆醬中代謝產(chǎn)生的主要揮發(fā)性成分,因此它們是寶泉醬中主要香氣物質(zhì)棕櫚酸乙酯的微生物來源,也影響其主要的風味,其主要來源于酵母菌M3;在天然發(fā)酵的干酪中棕櫚酸乙酯也被發(fā)現(xiàn)[22]。3 種菌株之間在代謝產(chǎn)生酯類的含量和種類上存在微妙的互作關(guān)系。酯類物質(zhì)是含氧酸與醇或酚類反應(yīng)得到的,對大豆醬香氣成分的形成貢獻較大[23,21],可增加大豆醬的酯香,滿足人們味覺享受并給人愉悅感,其大多由酵母利用糖代謝產(chǎn)生,并可抑制霉菌的生長,可作為大豆醬自身的防腐劑[24]。樣品中的揮發(fā)性成分與發(fā)酵34 d的成品大豆醬相比,相同的酯類包括苯甲酸乙酯、亞油酸乙酯、亞油酸甲酯、肉豆蔻酸乙酯、十五酸乙酯、棕櫚酸乙酯。BM4中酯類化合物總含量約為BM1和BM2的3 倍和5 倍,表明M1和M2菌株共同發(fā)酵對大豆醬酯類物質(zhì)有增效作用;而BM5和BM6中酯類物質(zhì)總含量較單一菌株發(fā)酵樣品的含量降低,M1和M3、M2和M3兩菌株共同發(fā)酵對酯類總量具有減效作用。具有水果香的苯甲酸乙酯未在BM1中檢出,表明M1不產(chǎn)該種酯類。肉豆蔻酸乙酯具有溫和鸞尾花香氣并帶有油脂香,其是由糖發(fā)酵產(chǎn)生的[25],本實驗在5 種樣品中均檢出微量的該酯。微量的乙酸乙酯、正己酸乙酯、2,2-二甲基丙酸-2-苯基乙酯,分別在BM6、BM4、BM5中被檢出。辛酸乙酯擁有白蘭地酒香[26],未在含有M1菌株的BM1、BM4和BM5中檢出,表明M1菌株具有抑制該種酯合成的作用。具有香甜紅玫瑰似香氣及濃厚蜂蜜風味的丙酸-2-苯乙酯在BM6和BM7中檢出,在單一菌發(fā)酵的樣品中未發(fā)現(xiàn),可能是菌株之間互作的產(chǎn)物。M1菌株產(chǎn)酞酸二乙酯,僅在BM1中產(chǎn)生,含量較少;乙酸苯乙酯和月桂酸乙酯只在BM3中被檢出,表明其來源于M3菌株。
表5 優(yōu)勢菌發(fā)酵大豆醬中主要揮發(fā)性成分分析Table 5 Volatile compounds in fermented soybean paste samples identi fi ed by HS-SPME-GC-MS
大豆醬中酵母菌[27]在發(fā)酵麥芽糖、葡萄糖可產(chǎn)生異戊醇、乙醇等。BM3中醇類物質(zhì)含量最高為269.13 ng/g,約為BM1和BM2的8 倍和16 倍,這證明菌株M3主要產(chǎn)醇類化合物。BM7中醇類物質(zhì)總含量為383.53 ng/g,與BM1、BM2、BM3的總含量之和差異較小,表明3 株菌株發(fā)酵的樣品在醇類化合物合成上具有等效作用。在BM7中鑒定出2-甲基-1-丁醇,呈清快香氣,含量為38.55 ng/g,僅在3 種菌株共同作用下才能產(chǎn)生;被廣泛用在食品中的增香劑苯乙醇,給人愉悅的玫瑰花香,在所有樣品中均被檢出;3 種菌株共同發(fā)酵時,對于苯乙醇的合成具有明顯的協(xié)同增效作用。喬鑫[28]認為苯乙醇是苯丙氨酸在微生物作用下經(jīng)Strecker降解產(chǎn)生醛后進一步還原生成,有很好的嗅感,可增加醬的醇香。BM4中檢出少量的1-辛酸-3-醇,僅在M1和M2兩株菌共同發(fā)酵時產(chǎn)生,該種化合物在大豆醬中未見檢出報道。僅在BM1中未檢出具有蘋果白蘭地香氣的3-甲基-1-丁醇[29],而在其余樣品中均含有該醇,這表明菌株M1自身代謝不生成該種化合物。同時,復合菌發(fā)酵的BM5和BM6中,該化合物的含量較單一菌發(fā)酵的BM3中的含量低,菌株M3與M1和M2共同發(fā)酵可抑制其產(chǎn)生。
脂肪分解可產(chǎn)生醛類和酮類化合物,葡萄球菌可分泌脂肪酶,促進大豆脂肪的分解。復合菌發(fā)酵的BM4中醛酮類化合物的含量比單一發(fā)酵的BM1和BM2的總量高15 倍左右,菌株M1和M2共同發(fā)酵對樣品中醛酮類化合物的生成有明顯的增效作用。在所有的樣品中,具有類似風信子和水果甜香氣的苯乙醛[30]均檢出,BM4中含量最高為47.08 ng/g,約為BM5的14 倍,這可能是表皮葡萄球菌代謝脂肪酶促進脂肪分解,氧化的最終產(chǎn)物為醛[31]。3-甲氧基苯乙酮僅在BM4中檢出,表明菌株M1和M2代謝合成該酮。3 種菌株中,M2菌株產(chǎn)生醛酮化合物的能力較強,表明寶泉嶺大醬中醛酮類化合物主要來源于M2菌株。同時,BM4中醛酮化合物的含量約為BM2的8 倍,約為BM1的15 倍,表明菌株M1和M2互作對醛酮類化合物總量的生成具有明顯的增效作用。
3 種菌株發(fā)酵的BM7中酸酚化合物的總含量最高,為其他樣品的35 倍以上;3 菌株混合發(fā)酵對大豆醬酸酚化合物總量的生成具有增效作用。大豆醬中酸主要由嗜鹽四聯(lián)球菌、乳酸菌產(chǎn)生,且可與醇生成酯,為酯類風味和美拉德反應(yīng)的前體物質(zhì)[28]。本實驗中僅檢出1 種酸,為α-甲基氫肉桂酸,存在于含有M3菌株的樣品中。具有煙熏香味的對乙烯基愈創(chuàng)木酚在7 種樣品中均檢出,但含量不同,其中BM7的含量最高,為36.96 ng/g。
為進一步確定不同優(yōu)勢菌對大豆醬揮發(fā)性成分的影響,利用因子分析將主要揮發(fā)性成分歸為少量的因子變量,以便確定不同菌株發(fā)酵的大豆醬風味的差異。由表6可知,KMO值為0.835,在0.5~1之間,相關(guān)性較大,證明表5的數(shù)據(jù)可進行因子分析[10]。根據(jù)表7、8可知,前2 個主成分的累計貢獻率達到97.059%,其涵蓋了6 種香氣成分的所有信息。第1個公因子代表酯類、醇類,不同菌株發(fā)酵的大豆醬中的酯和醇含量及種類也不相同,因此,二者對豆醬的香氣成分貢獻較大,含量越多,醇酯香就越濃郁,豆醬香氣就更佳;第2個公因子代表酸類、酚類、醛類、酮類、其他類,盡管這幾類化合物對大豆醬的香氣貢獻較小,但其均可作為醇和酯化合物的前體物質(zhì)并豐富大豆醬風味的多樣性[15]。
表6 KMO和Bartlett’s檢驗Table 6 KMO and Bartlett’s test
表7 優(yōu)勢菌接種大豆醬香氣成分的特征值和方差貢獻率Table 7 Eigenvalues and variance contributions of aroma components of different soybean pastes
表8 旋轉(zhuǎn)后的載荷矩陣和因子得分系數(shù)矩陣Table 8 Loading and component score coefficient matrix after rotation
表9 因子綜合得分Table 9 Component composite scores
綜上所述,并結(jié)合表9可知,不同菌接種大豆醬的因子分析排序為BM6>BM7>BM3>BM2>BM5>BM4>BM1,這與感官評價的結(jié)果相一致,B. amyloliquefaciens BSB.170120和S. epidermidis BSS.17312發(fā)酵的BM6醇酯香更濃郁,香氣更好;同時,也進一步證實這2 株菌可產(chǎn)生大量的醇和酯。
本實驗采用感官評價、電子鼻技術(shù)和HS-SPME-GCMS法,對不同組合菌種發(fā)酵的大豆醬的風味屬性和揮發(fā)性成分的種類、含量進行較全面的分析。接種魯氏酵母和表皮葡萄球菌混合發(fā)酵的BM6整體品質(zhì)更易被人接受。電子鼻的分析結(jié)果顯示,7 種發(fā)酵樣品的香氣特征成分與成品寶泉醬的差異性相對較小,BM6的風味屬性更接近發(fā)酵34 d寶泉成品醬。單一菌發(fā)酵的樣品與成品大豆醬相比,苯甲酸乙酯、肉豆蔻酸乙酯、棕櫚酸乙酯和苯乙醇主要來源Z. rouxii BSZ.16910;2-羥基-5-甲基苯乙酮來源于S. epidermidis BSS.17312。從組合菌發(fā)酵的樣品來看,與成品大豆醬相比,苯甲酸乙酯、2-甲基-1-丁醇、苯乙醇的含量在3 種優(yōu)勢菌的作用下含量增加;B. amyloliquefaciens BSB.170120和S. epidermidis BSS.17312組合發(fā)酵具有促進亞油酸乙酯、苯乙醛的含量增加的作用;S. epidermidis BSS.17312和Z. rouxii BSZ.16910組合可促進亞油酸甲酯的產(chǎn)生,而抑制肉豆蔻酸乙酯?;谝蜃臃治?,優(yōu)勢菌M2(S. epidermidis BSS.17312)和M3(Z. rouxii BSZ.16910)對寶泉醬香氣成分酯和醇的產(chǎn)生貢獻較大,是大豆醬發(fā)酵的有益菌株,有利于大豆醬風味的形成,因此具有在大豆醬發(fā)酵中應(yīng)用的潛質(zhì)。