楊 敏 安 國 趙 威 馬媛媛
(1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京世紀(jì)壇醫(yī)院干部綜合科, 北京 100038;2.北京大學(xué)腫瘤醫(yī)院暨北京市腫瘤防治研究所實驗動物室,北京 100142;3.北京大學(xué)腫瘤醫(yī)院暨北京市腫瘤防治研究所細胞生物室,北京 100142;4.北京大學(xué)腫瘤醫(yī)院暨北京市腫瘤防治研究所胸外二科,北京 100142; 5.惡性腫瘤發(fā)病機制及轉(zhuǎn)化研究教育部重點實驗室,北京 100142)
潰瘍性結(jié)腸炎(ulcerative colitis, UC)是一種慢性非特異性結(jié)腸炎性反應(yīng),病變主要位于結(jié)腸的黏膜層,臨床表現(xiàn)為持續(xù)或反復(fù)發(fā)作的腹瀉、黏液膿血樣便伴腹痛,該病病程長,治愈難度大,且與結(jié)腸癌關(guān)系密切,屬于消化系統(tǒng)難治疾病之一[1]。目前研究[2]顯示,炎性細胞因子失衡是UC發(fā)病的重要機制,這些炎性因子包括腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白介素-6(interleukin-6,IL-6)、IL-1、IL-12、IL-23等。右旋葡聚糖硫酸鈉(dextran sodium sulfate,DSS)誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸炎模型是研究UC較為成熟的動物模型之一[3-5]。然而,小鼠模型建成后,免疫活力如何,免疫因子的浸潤情況以及相關(guān)機制還并未清楚。本研究將以DSS建立小鼠結(jié)腸炎,進而探討UC的病理、免疫機制,分析炎性因子在潰瘍性結(jié)腸炎中發(fā)揮的作用,為探究結(jié)腸炎的分子機制及藥物治療打下基礎(chǔ)。
8周大的C57BL/6J清潔級小鼠24只[北京華阜康生物科技股份有限公司提供,實驗動物許可證號:SCXK (京)2006-0015],飼養(yǎng)條件SPF級(屏障環(huán)境),體質(zhì)量 20~25 g,實驗動物質(zhì)量應(yīng)符合國家標(biāo)準(zhǔn)要求,采用數(shù)字表法隨機分為4組,每組6只。第1組小鼠為DSS陰性對照組,正常飼養(yǎng)5 d,記為DSS(-)組;第2組小鼠自由飲水4 d后,喂飼3%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的DSS水溶液1 d,記為DSS(1)組;第3組小鼠自由飲水2 d后,喂飼3%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的DSS水溶液3 d,記為DSS(3)組;第4組小鼠喂飼3%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))的DSS水溶液5 d,記為DSS(5)組。每日監(jiān)測動物飲水量、體質(zhì)量變化以及一般健康狀況。5 d后處死小鼠,取結(jié)腸組織,液氮凍存,并取部分組織進行甲醛固定和石蠟包埋。石蠟包埋組織HE染色后進行組織學(xué)觀察。實驗小鼠經(jīng)過北京市腫瘤醫(yī)院動物倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)文號:2016KT93)。
取小鼠盲腸端到直腸之間的結(jié)腸,分成遠端、中段和近端3部分。中段的結(jié)腸進行組織化學(xué)分析。石蠟包埋的組織進行甲苯胺藍(Sigma公司,美國)染色,以評估DSS的吸收情況。冰凍切片(10 mm厚)進行髓過氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)染色,以觀察中性粒細胞浸潤情況。
RNeasy Mini Kit (Qiagan公司,德國)提取結(jié)腸組織全細胞RNA。采用Superscript Ⅲ(Invitrogen公司,美國)合成cDNA。SYBR Premix Ex TaqTM II kit (Roche公司,德國)進行qRT-PCR實驗,實驗步驟參照試劑盒說明進行。實驗采用的設(shè)備為Light-Cycler?480 Real-Time PCR System(Roche公司, 德國)。選取β-actin為內(nèi)參基因,采用相對Ct方法檢測TNF-α、IL-1α、IL-1β、IL-6、趨化因子配體-1[chemokine (C-X-C motif) ligand 1,CXCL-1]、CXCL-2和環(huán)氧化酶-2(cyclooxygenase, COX-2)mRNA的表達水平。基因引物序列見表1。
表1 實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)實驗使用的引物Tab.1 Primers used for real-time quantitative PCR
PCR:polymerase chain reaction.
DSS(-)組小鼠飼養(yǎng)5 d后體質(zhì)量略有增加。DSS模型組小鼠隨著飲用DSS水時間的增長,體質(zhì)量逐漸降低, DSS(5)組小鼠體質(zhì)量降低最為明顯,與DSS(-)組小鼠的體質(zhì)量差異有統(tǒng)計學(xué)意義(圖1A)。結(jié)腸長度的測量結(jié)果表明,DSS(5)組的小鼠結(jié)腸長度比DSS(-)組顯著縮短,DSS(3)組小鼠的結(jié)腸長度也比DSS(-)組有所縮短(圖1B,C)。DSS造模小鼠在飲用DSS水溶液3 d和5 d后出現(xiàn)了顯著的脾增大(圖1D,E)。以上結(jié)果提示,對小鼠進行DSS水飼養(yǎng)5 d后,小鼠的體質(zhì)量減輕,結(jié)腸長度縮短,脾增大,小鼠結(jié)腸炎模型建成。
小鼠結(jié)腸組織進行HE染色分析顯示,DSS(3)組小鼠的結(jié)腸上皮細胞被明顯破壞,DSS(5) 組小鼠進展為嚴(yán)重的腸黏膜潰瘍(圖2A)。MPO染色結(jié)果顯示,DSS(5)組小鼠的腸黏膜上皮出現(xiàn)了廣泛的中性粒細胞浸潤,同時DSS(5)組MPO活性與DSS(-)組相比有顯著升高(圖2B、C)。
圖1 DSS小鼠結(jié)腸炎模型體質(zhì)量和結(jié)腸長度變化Fig.1 Body weight and length of colon in DSS mice colitis model
A: Slightly lower body weight in DSS(+) mice than in DSS(-) mice, significantly decreased body weight in the DSS(5) group;B: Shorter length of colon in DSS(+) mice than in DSS(-) mice;C: Randomly pick up and compare colon length from the four groups;D: Randomly pick up and compare spleen weight from the four groups;E: Spleen weight in four group mice. Significantly increased weight of spleen in DSS(3) group and DSS(5) group, compared to DSS(-) group(**P<0.01,***P<0.001);DSS:dextran sodium sulfate.
圖2 HE染色及MPO染色Fig.2 HE staining and MPO staining
A: HE staining(200×);B: MPO staining(200×);C: MPO activity analysis;**P<0.01vsDSS(-) group;DSS:dextran sodium sulfate;HE: hematoxylin-eosin;MPO:myeloperoxidase.
采用甲苯胺藍染色法,觀察腸黏膜細胞對DSS的吸收情況。染色結(jié)果表明,DSS(5)組小鼠的腸黏膜細胞對DSS有明顯的吸收(圖3)。
小鼠飲用DSS水溶液5 d后,結(jié)腸組織中TNF-α表達顯著升高,IL-1α、IL-1β及IL-6的表達量也比DSS(-)組小鼠有顯著升高。此外,CXCL-1、CXCL-2以及COX-2的表達也顯著升高(圖4)。
圖3 甲苯胺藍染色結(jié)果顯示,DSS(5)組的小鼠腸黏膜細胞對DSS有明顯的吸收Fig.3 Toluidine blue staining results indicates significant absorption of intestinal mucosa cells in DSS(5) group
DSS:dextran sodium sulfate.
圖4 炎性反應(yīng)因子mRNA在DSS(-) 組和DSS(5)組小鼠結(jié)腸組織中的表達量Fig.4 Inflammatory factor mRNA expression quantity in colon tissue of DSS(-) group and DSS(5) group mice
*P<0.05,**P<0.01vsDSS(-) group;DSS:dextran sodium sulfate;TNF-α:tumor necrosis factor-α;CXCL-1:chemokine(C-X-C motif) ligand 1;IL:interleukin;COX-2:cyclooxygenase-2.
UC發(fā)病機制至今尚不明確。DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎模型與人潰瘍性結(jié)腸炎癥狀相似,且該模型重復(fù)性好[5-6]。本研究以DSS誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸炎為動物模型,研究在UC發(fā)生的炎性反應(yīng),進而探討炎性反應(yīng)相關(guān)因子在結(jié)腸炎發(fā)展中的作用。
本研究中將小鼠分為4組,動態(tài)觀察小鼠在飲用DSS水溶液不同時間的病理改變。與文獻[3]報道相一致,隨著飲用DSS水溶液時間的增加,小鼠結(jié)腸黏膜受損傷的程度加重,小鼠連續(xù)自由飲用DSS水溶液5 d即可形成穩(wěn)定的結(jié)腸炎模型。張忠等[7]比較了DSS、乙酸以及幽門螺桿菌3種方法構(gòu)建小鼠UC模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)DSS誘導(dǎo)的小鼠潰瘍性結(jié)腸炎的動物模型是研究UC發(fā)病機制和藥物療效較理想的工具。
進而,對DSS小鼠的腸黏膜組織進行HE染色,可以看到飲用DSS水溶液5 d組的小鼠腸黏膜受到了嚴(yán)重破壞,出現(xiàn)腸潰瘍的癥狀,對其MPO染色可觀察到廣泛的中性粒細胞浸潤,表明DSS誘導(dǎo)出現(xiàn)了炎性反應(yīng)。筆者又進一步進行了甲苯胺藍染色,證實了DSS能直接被吸收進入腸黏膜上皮細胞并對腸黏膜屏障造成破壞。結(jié)腸黏膜的病理性損傷,在UC發(fā)病的機制中起重要作用。研究[8-9]表明,DSS不僅能直接破壞腸黏膜細胞,也能使腸內(nèi)黏液性質(zhì)發(fā)生改變,從而使細菌更容易穿過黏液層并侵襲上皮細胞導(dǎo)致炎性損傷。黏蛋白MUC13 基因敲除的小鼠在給予 DSS 誘導(dǎo)后,出現(xiàn)更嚴(yán)重的結(jié)腸炎性反應(yīng),上皮細胞凋亡更明顯[10],表明腸黏膜屏障的缺陷或功能失調(diào)在UC發(fā)病中起重要作用。
炎性細胞因子間的平衡失調(diào)是 UC發(fā)病的重要機制之一[11-13]。促炎細胞因子如 TNF-α、IL-6、IL-1、IL-12、IL-23 等的過度產(chǎn)生和抑炎因子如 IL-4、IL-10、IL-19、IL-22 等生成不足,導(dǎo)致腸道內(nèi)環(huán)境紊亂是促使炎性腸病(inflammatory bowel disease, IBD)發(fā)生的重要環(huán)節(jié)[14]。DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎模型會出現(xiàn)以脾增大為特征的系統(tǒng)性炎性反應(yīng)。本研究對小鼠模型的腸黏膜組織中多種炎性因子的表達進行了測定。單核和巨噬細胞產(chǎn)生的IL-1和IL-6屬于促炎性因子,參與細胞免疫反應(yīng)。DSS結(jié)腸炎模型中,IL-1α、IL-1β以及IL-6的mRNA表達量均比正常組小鼠顯著升高。細胞趨化因子對中性粒細胞的趨化和活化發(fā)揮重要作用[15],中性粒細胞趨化因子配體CXCL-1和CXCL-2在DSS模型中的表達量顯著升高,這可能是導(dǎo)致中性粒細胞廣泛浸潤的原因之一。TNF-α為促炎性蛋白,由單核巨噬細胞產(chǎn)生,除了抗腫瘤外,對機體代謝、免疫反應(yīng)及炎性反應(yīng)均有重要的調(diào)節(jié)介導(dǎo)作用[16]。有研究[17-18]表明,活動性UC病變部位的TNF-α是正常部位的7倍。本研究中,DSS模型組中TNF-α的mRNA表達量比正常組顯著升高。TNF-α可通過激活NF-kB通路來促進炎性反應(yīng)的進展[19]。環(huán)氧化酶2(COX-2)是催化花生四烯酸轉(zhuǎn)化為前列腺素E2(prostaglandin E2, PGE2)的關(guān)鍵酶,COX-2可被多種炎性遞質(zhì)和細胞因子所誘導(dǎo),其過表達可導(dǎo)致PGE2含量升高,而PGE2導(dǎo)致血管擴張,通透性增加,黏膜充血水腫,可能與UC患者腹痛腹瀉癥狀相關(guān)[20]。本研究中,DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎模型中COX-2的表達顯著升高,提示COX-2在該模型中發(fā)揮促炎性反應(yīng)的作用。
綜上,筆者通過誘導(dǎo)DSS小鼠結(jié)腸炎模型,進行DSS誘導(dǎo)的結(jié)腸炎病理及免疫機制研究,發(fā)現(xiàn)炎性因子在結(jié)腸炎的進展中發(fā)揮重要作用,炎性因子的過表達可促進結(jié)腸黏膜中性粒細胞的浸潤,進而引發(fā)炎性反應(yīng),造成腸黏膜破壞。該研究深化了對結(jié)腸炎模型病理、免疫機制的認(rèn)識,為結(jié)腸炎的治療提供了新的思路。