何俊瑜,任艷芳,,*,陳元有,王艷玲,林 肖,劉 冬

(1.常州大學(xué)環(huán)境與安全工程學(xué)院,江蘇常州 213164; 2.貴州大學(xué)農(nóng)學(xué)院,貴州貴陽 550025)

芒果(MangiferaindicaL.)是世界上重要的熱帶水果,不僅風(fēng)味獨(dú)特、色澤誘人,而且富含多種營養(yǎng)成分,因此深受消費(fèi)者喜愛,被譽(yù)為“果中之王”[1]。然而,芒果采后生理代謝依然十分旺盛,后熟軟化迅速,不僅導(dǎo)致果實(shí)品質(zhì)降低,而且軟化的果實(shí)更易引起病原微生物的侵染,給貯藏、運(yùn)輸、銷售等環(huán)節(jié)帶來極大困難,造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[2]。據(jù)估計(jì),芒果從采收到消費(fèi)階段,損失率可以達(dá)到25%～40%[3]。因此,采取有效措施延緩采后芒果軟化和品質(zhì)劣變,是目前芒果貯藏保鮮中亟待解決的重要問題。

一氧化氮(Nitric oxide,NO)是存在于植物體內(nèi)的一種重要的信號(hào)分子,其廣泛參與植物的生長、發(fā)育、成熟、衰老等生理過程[4-6]。近年來,有關(guān)外源NO調(diào)控果蔬成熟、抗病和保鮮的研究報(bào)道越來越多,已成為采后生物學(xué)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)之一。已有研究表明,適宜濃度的NO處理可有效延緩桃子[7]、番茄[8]、木瓜[5]、荔枝[9]、香蕉[10]、柑橘[11]等采后果蔬的成熟衰老,延緩果實(shí)的褐變,維持果實(shí)貯藏品質(zhì)和提高其對采后冷害和病害的抵抗能力。此外,研究表明,NO可以通過調(diào)節(jié)果實(shí)中的細(xì)胞壁水解酶,如多聚半乳糖醛酸酶(Polygalacturonases,PG)、果膠甲酯酶(Pectin methylesterase,PME)、纖維素酶(Cellulose,CX)、β-半乳糖苷酶(β-galactosidase,β-Gal)活性和基因的表達(dá),從而延緩果實(shí)的軟化進(jìn)程[8,13-16]。

目前,NO在芒果保鮮上的作用效果已有報(bào)道[17-19],但對于其在芒果后熟軟化和細(xì)胞壁代謝方面的研究報(bào)道還較為缺乏。本實(shí)驗(yàn)在前期實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上[1],研究SNP處理對芒果常溫后熟軟化和細(xì)胞壁代謝的影響,探討采后NO處理延緩芒果果實(shí)軟化的作用機(jī)理,旨在為采后芒果的貯藏保鮮提供的理論和實(shí)踐依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

“臺(tái)農(nóng)”芒果(MangiferaindicaL. cv. Tainong) 貴陽市石板鎮(zhèn)農(nóng)產(chǎn)品批發(fā)市場,購買當(dāng)天運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行處理;硝普鈉(SNP)、柑橘果膠、D-(+)-半乳糖醛酸、羧甲基纖維素鈉、對硝基苯-α-D-阿拉伯呋喃糖苷、對硝基酚、對硝基苯-β-D-半乳糖苷 美國Sigma公司。

GY-1型水果硬度計(jì) 杭州托普儀器有限公司;HH-S6數(shù)顯電熱恒溫水浴鍋 金壇市國旺儀器廠;T6新世紀(jì)紫外可見分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;5804R型高速冷凍離心機(jī) 上海艾本德中國有限公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 芒果果實(shí)的處理方法 選擇大小、成熟度基本一致(硬度14.4 kg/cm2,可溶性固形物8.5%)、無病蟲害、無畸形、無機(jī)械損傷、未經(jīng)過催熟處理的芒果果實(shí),以0.5%次氯酸鈉溶液(有效氯≥10%)浸泡3 min,清水沖洗干凈。將挑選出的芒果果實(shí)隨機(jī)分為2組,分別置于清水(CK)和0.25 mmol/L SNP溶液中浸泡20 min后[1],自然晾干。將芒果果實(shí)裝入鋪有多層軟紙的塑料框中,于常溫(20±2 ℃)條件下貯藏20 d。每個(gè)處理60個(gè)果實(shí),重復(fù)3次。貯藏期間每5 d取樣一次,每個(gè)重復(fù)取5個(gè)芒果,用于測定果實(shí)硬度、果膠物質(zhì)含量、纖維素含量和細(xì)胞壁水解酶活性。

1.2.2 相關(guān)指標(biāo)的測定方法

1.2.2.1 硬度 果實(shí)硬度采用果實(shí)硬度計(jì)測定。單果取去皮赤道部位果肉4個(gè)點(diǎn)測定,取平均值,以kg/cm2表示。

1.2.2.2 果膠物質(zhì)含量 原果膠含量及水溶性果膠含量的測定采用咔唑比色法[20]。以半乳糖醛酸標(biāo)品作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.5139x+0.2127(R2=0.9981),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算半乳糖醛酸質(zhì)量,以樣品中生成的半乳糖醛酸質(zhì)量占樣品質(zhì)量的百分?jǐn)?shù)(%)表示原果膠和水溶性果膠含量。

1.2.2.3 纖維素含量 纖維素含量測定采用蒽酮比色法[21]。以葡萄糖標(biāo)品作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.031x+0.0306(R2=0.9987),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算葡萄糖含量,以樣品中葡萄糖含量占樣品質(zhì)量的百分?jǐn)?shù)(%)表示纖維素含量。

1.2.2.4 細(xì)胞壁水解酶 取果肉2.0 g,樣品放于冷凍過的研缽內(nèi),加入6 mL Tris-HCl溶液(50 mmol/L,pH7.0),內(nèi)含 2 mol/L NaCl、10 mmol/L EDTA 和 5 g/L(W/V)PVPP,冰浴上研磨勻漿,于4 ℃、12000 r/min離心20 min,取上清液用于酶活性測定。

PG活性的測定采用3,5-二硝基水楊酸比色法[20]。以D-(+)半乳糖醛酸為標(biāo)樣作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.1061x-0.0388(R2=0.9995)。以每小時(shí)每克鮮樣37 ℃分解多聚半乳糖醛酸鈉產(chǎn)生1 mg游離半乳糖醛酸為1個(gè)PG活力單位(U),即表示為U/(h·g FW)。

PME活性的測定參考徐曉波[22]的方法。反應(yīng)液含有2 mL 0.5%柑橘果膠、0.3 mL 0.01%溴麝香草酚蘭,加水使總體積為3 mL,最后加入400 μL酶液,測定波長620 nm處吸光值。以每克鮮樣每分鐘620 nm處吸光值變化0.01為一個(gè)酶活力單位(U),即表示為U/(min·g FW)。

CX活性的測定采用3,5-二硝基水楊酸比色法[20]。以葡萄糖為標(biāo)樣作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.1196x-0.0205(R2=0.9994)。以每毫升酶液每分鐘產(chǎn)生相當(dāng)于1 mg葡萄糖的還原糖為1個(gè)酶活性單位(U),即表示為U/(h·g FW)。

β-Gal活性的測定參考Ali等[23]的測定方法。以對硝基酚為標(biāo)樣作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.2238x-0.2101(R2=0.9998)。以每分鐘每克鮮樣37 ℃分解對硝基苯-β-D-半乳糖苷產(chǎn)生1 μmol對硝基酚量為1個(gè)β-Gal酶活性單位(U),即表示為U/(h·g FW)。

α-阿拉伯呋喃糖苷酶(α-L-arabinofuranosidase,α-L-Af)活性的測定參考Ali等[23]的測定方法。以對硝基酚為標(biāo)樣作標(biāo)準(zhǔn)曲線,y=0.0623x+0.0137(R2=0.9989)。以每分鐘每克鮮樣37 ℃分解對硝基苯-α-D-阿拉伯呋喃糖苷產(chǎn)生1 μmol對硝基酚量表示為1個(gè)α-L-Af酶活性單位(U),即表示為U/(h·g FW)。

1.3 數(shù)據(jù)處理

運(yùn)用SPSS 20.0軟件對試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,p<0.05、p<0.01分別表示差異顯著、極顯著。采用Origin Pro 8.0 軟件繪制曲線。

2 結(jié)果與分析

2.1 SNP對芒果果實(shí)硬度的影響

硬度是衡量果實(shí)軟化衰老程度的重要指標(biāo)。圖1表明,貯藏期間芒果果實(shí)硬度呈現(xiàn)逐漸降低的趨勢。與貯藏前相比,在貯藏5 d時(shí),對照和SNP處理中果實(shí)硬度分別降低了27.2%和14.9%。隨著貯藏時(shí)間的延長,對照和SNP處理的果實(shí)硬度迅速降低。然而與對照相比,整個(gè)貯藏期間,SNP處理顯著延緩了果實(shí)硬度下降的程度。至貯藏第20 d時(shí),SNP處理中果實(shí)硬度為對照的3.0倍,極顯著高于對照(p<0.01)。這與NO對“Kensington Pride”芒果[17]和Keitt芒果[24]的研究結(jié)果相一致。

圖1 貯藏期間芒果果實(shí)硬度的變化Fig.1 Changes in firmness of mango fruit during storage注:“*”和“**”分別表示同一時(shí)間點(diǎn)不同處理間存在 顯著差異(p<0.05)和極顯著差異(p<0.01);圖2～圖7同。

2.2 SNP對芒果果實(shí)果膠含量的影響

果膠是構(gòu)成細(xì)胞壁和胞間層的主要成分,采后果實(shí)中原果膠會(huì)在相關(guān)酶的作用下發(fā)生水解,導(dǎo)致細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)溶解,細(xì)胞間粘合力下降,果實(shí)軟化[25]。由圖2A可以看出,隨著芒果貯藏時(shí)間的延長,對照和SNP處理果實(shí)中可溶性果膠的含量均呈增加趨勢。與對照相比,SNP處理果實(shí)中可溶性果膠的增加較少,至貯藏第20 d時(shí),SNP處理中可溶性果膠含量僅為對照的83.8%,差異達(dá)到顯著水平(p<0.05)。與可溶性果膠含量的變化趨勢相反,貯藏期間,對照和SNP處理果實(shí)中原果膠的含量均逐漸降低(圖2B)。然而,SNP處理明顯降低了原果膠的水解程度,在貯藏第20 d時(shí),SNP處理中原果膠含量為對照的1.8倍,極顯著高于對照(p<0.01)。相關(guān)性分析表明:果實(shí)硬度與原果膠含量具有極顯著的正相關(guān)性(r=0.989,p<0.01),而與可溶性果膠含量呈極顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.959,p<0.01)(表1)。由此可見,果實(shí)軟化與果膠物質(zhì)的降解極顯著相關(guān)(p<0.01)。SNP通過抑制果實(shí)中原果膠的降解,減少可溶性果膠的增加,維持了細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的完整性,從而這有助于延緩果實(shí)軟化進(jìn)程。SNP對芒果果實(shí)細(xì)胞壁果膠物質(zhì)的作用效果與NO在肥城桃[13]和鴨梨[15]上的效果相一致。

圖2 貯藏期間芒果果實(shí)可溶性果膠含量(A) 和原果膠含量(B)的變化Fig.2 Changes in soluble pectin content(A) and propectin content(B)of mango fruit during storage

2.3 SNP對芒果果實(shí)纖維素含量的影響

纖維素參與構(gòu)成植物細(xì)胞壁網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),對細(xì)胞起著骨架支持和保護(hù)作用,在果實(shí)成熟過程中,纖維素會(huì)發(fā)生降解,從而導(dǎo)致細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的解體和果實(shí)的軟化。圖3結(jié)果表明,隨著芒果采后貯藏時(shí)間的延長,果實(shí)中纖維素含量逐漸降低,這與Yashoda等[26]和Chourasia等[2]在芒果上的研究結(jié)果相一致。當(dāng)芒果貯藏至第20 d時(shí),對照果實(shí)中纖維素含量僅為貯藏前的36.4%。然而,SNP處理顯著減輕了果實(shí)中纖維素的損失,此時(shí),SNP處理中纖維素含量為貯藏前的57.4%,為對照的1.6倍,極顯著高于對照(p<0.01)。相關(guān)性分析結(jié)果表明:纖維素含量與果實(shí)硬度、原果膠含量均呈極顯著正相關(guān)(r=0.925,p<0.01;r=0.922,p<0.01)(表1),而與可溶性果膠含量呈極顯著負(fù)相關(guān)性(r=-0.817,p<0.01)。趙云峰等[27]認(rèn)為,纖維素降解會(huì)導(dǎo)致構(gòu)成細(xì)胞壁纖維素微纖絲-半纖維素交聯(lián)網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)松弛,果膠物質(zhì)外露,這將有利于細(xì)胞壁水解酶攻擊底物,從而促進(jìn)了細(xì)胞壁組分的解聚。本研究結(jié)果表明,SNP處理能夠有效減緩芒果貯藏期間纖維素降解,從而保護(hù)果膠物質(zhì)免受水解酶的作用,從而減少了原果膠的降解和可溶性果膠的增加,維持果實(shí)正常的細(xì)胞壁結(jié)構(gòu),延緩了果實(shí)軟化進(jìn)程。這與朱樹華等[13]在肥城桃和高維亞等[28]在蓮霧果上的研究結(jié)論相一致。

圖3 貯藏期間芒果果實(shí)纖維素含量的變化Fig.3 Changes in cellulose content of mango fruit during storage

2.4 SNP對芒果果實(shí)PG和PME活性的影響

PG是果實(shí)成熟軟化的關(guān)鍵酶之一,主要作用是將果實(shí)細(xì)胞壁果膠糖中多聚半乳糖醛酸降解為半乳糖醛酸,使細(xì)胞壁中膠層解體,導(dǎo)致果實(shí)軟化[29]。由圖4A可以看出,隨著芒果貯藏時(shí)間的延長,對照和SNP處理果實(shí)中PG活性整體表現(xiàn)為增加的趨勢。然而,SNP處理能明顯推遲PG活性的升高,顯著降低PG活性(p<0.05)。在整個(gè)貯藏期間,SNP處理果實(shí)中PG活性平均為對照的85.9%。相關(guān)性分析表明,PG活性與硬度、原果膠和纖維素含量均呈極顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.870,p<0.01;r=-0.844,p<0.01;r=-0.919,p<0.01),但與可溶性果膠含量呈極顯著正相關(guān)(r=0.836,p<0.01),表明PG與芒果果實(shí)軟化和細(xì)胞壁物質(zhì)的降解和轉(zhuǎn)化密切相關(guān)。SNP處理可以通過調(diào)節(jié)PG活性,延緩貯藏芒果細(xì)胞壁的降解,進(jìn)而降低果實(shí)軟化程度。這與Zaharah等[17]在Kensington Pride芒果上的研究結(jié)論相一致。

PME主要作用是水解果膠分子中甲酯化的C6羧基,使之生成多聚半乳糖醛酸和甲醇,增加了果膠在水中的溶解性,是PG作用的必要前提[30]。圖4B表明,貯藏后的5 d內(nèi),對照中PME活性明顯增加,隨后PME活性呈波動(dòng)式降低。然而,與對照相比,SNP處理顯著抑制了貯藏前期果實(shí)中PME活性的升高(p<0.05),在貯藏第5 d時(shí),SNP處理中PME活性僅為對照的84.5%。隨后PME活性緩慢升高,至貯藏第15 d時(shí)達(dá)到最大值,之后快速降低。進(jìn)一步分析可知,盡管SNP處理降低了果實(shí)貯藏前期(0～5 d)PME活性的增加,但是卻保持了貯藏后期(10～20 d)果實(shí)中較高的PME活性。這可能是由于，在貯藏前期SNP處理通過對PME活性的抑制,減少了PG作用底物,從而降低果膠水解,而后期一方面保持較高的PME活性,另一方面抑制PG活性的增加,從而導(dǎo)致水解產(chǎn)物果膠酸積累，并與游離的鈣離子結(jié)合,強(qiáng)化了細(xì)胞壁結(jié)構(gòu),因此減緩了果實(shí)的軟化[17,31]。Vázquez-Celestino等[31]研究也表明,NO+涂蠟處理在減緩Manila芒果采后軟化過程中保持了較高的PME活性。相關(guān)性分析表明,PME活性與果實(shí)硬度具有正相關(guān)性(r=0.484),但未達(dá)到顯著水平(表1),說明PME參與果實(shí)軟化進(jìn)程,但可能不是關(guān)鍵酶。Zaharah等[17]研究發(fā)現(xiàn)，NO處理降低貯藏期間“Kensington Pride”芒果果實(shí)硬度的損失與其保持果實(shí)中較高的PME活性具有明顯的正相關(guān)性。然而在肥城桃[13]、木瓜[16]和日本李[32]的研究中,卻發(fā)現(xiàn)NO對果實(shí)硬度的保持與抑制PME活性有關(guān)。這可能與不同果實(shí)細(xì)胞壁組成和成熟軟化特性之間存在的差異有關(guān)。

圖4 貯藏期間芒果果實(shí)中PG活性(A) 和PME活性(B)的變化Fig.4 Changes in PG activity(A)and PME activity(B)of mango fruit during storage

2.5 SNP對芒果果實(shí)CX活性的影響

纖維素酶能促進(jìn)纖維素的降解,在果實(shí)軟化和衰老等過程中起著重要的調(diào)節(jié)作用[33]。已有研究表明,隨著芒果果實(shí)的成熟軟化,CX活性逐漸增加[2,34]。圖5結(jié)果表明,隨著芒果貯藏時(shí)間的延長,對照和SNP處理中果實(shí)CX活性均表現(xiàn)為先增加后降低的變化趨勢。對照果實(shí)中,CX活性在貯藏前期升高較快,于貯藏第10 d達(dá)到最大值,隨后快速降低。而SNP處理極顯著降低了貯藏前期(0～5 d)果實(shí)中CX活性的增加(p<0.01),并且推遲CX活性的峰值到貯藏第15 d。相關(guān)性分析表明,CX活性與果實(shí)硬度、原果膠和纖維素含量呈顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.557,p<0.05;r=-0.612,p<0.05;r=-0.534,p<0.05)(表1)。由此可見,SNP處理能夠通過調(diào)節(jié)果實(shí)中CX活性的變化,維持細(xì)胞壁中纖維素和果膠的結(jié)構(gòu),從而延緩果實(shí)的軟化進(jìn)程。NO對果實(shí)CX活性的作用效果也在香蕉[14]、木瓜[16]和“Kensington Pride”芒果[17]的研究中得到證實(shí)。朱樹華等[13]認(rèn)為，在果實(shí)中NO會(huì)部分地被氧化為亞硝酸,從而降低CX中色氨酸微域的pH,導(dǎo)致一些色氨酸更加暴露;配基結(jié)合改變了色氨酸的微環(huán)境,同時(shí)使酶分子構(gòu)象發(fā)生變化,從而引起CX構(gòu)象和生理功能的改變。

表1 果實(shí)硬度、細(xì)胞壁組分和水解酶活性變化的相關(guān)性分析Table 1 Correlation analysis between fruit firmness,cell wall components and cell wall enzymes

圖5 貯藏期間芒果果實(shí)中CX活性的變化Fig.5 Changes in CX activity of mango fruit during storage

2.6 SNP對芒果果實(shí)β-Gal活性的影響

β-Gal是與細(xì)胞壁多糖組分降解相關(guān)的重要糖苷酶之一,可通過降解具有支鏈的多聚醛酸,使細(xì)胞壁組分變得不穩(wěn)定,從而使果膠降解或溶解[35]。已有研究表明,在芒果成熟期間,果實(shí)中的β-Gal活性會(huì)明顯升高,并伴隨有果膠的溶解和果實(shí)的軟化[34,36-37]。本研究結(jié)果表明,在芒果貯藏期間,對照果實(shí)中，β-Gal活性迅速增加,至貯藏第10 d達(dá)到最大值,隨后逐漸降低(圖6),這與前人研究結(jié)果相似[34,36-37]。SNP處理中β-Gal活性變化趨勢與對照相似,但是在貯藏前期,β-Gal活性上升速度較為緩慢,在貯藏10 d內(nèi)活性極顯著低于對照(p<0.01),而其活性最大值出現(xiàn)在貯藏第15 d。相關(guān)性分析結(jié)果表明,β-Gal活性變化與硬度、原果膠含量和纖維素含量呈極顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.962,p<0.01;r=-0.966,p<0.01;r=-0.848,p<0.01),而與可溶性果膠含量呈極顯著正相關(guān)(r=0.937,p<0.01)(表1)。因此,β-Gal可能在芒果軟化和細(xì)胞壁成分降解中具有重要的作用。SNP處理對芒果果實(shí)中β-Gal活性的影響可以進(jìn)一步說明果膠溶解性降低(圖2A和2B)和果實(shí)硬度提高(圖1)的原因。Liu等[15]研究也發(fā)現(xiàn),NO處理可以明顯抑制鴨梨冷藏期間果實(shí)中β-Gal活性,從而維持較高的果實(shí)硬度,這與本研究結(jié)果一致。

圖6 貯藏期間芒果果實(shí)中β-Gal活性的變化Fig.6 Changes in β-Gal activity of mango fruit during storage

2.7 SNP對芒果果實(shí)α-L-Af活性的影響

α-L-Af主要是通過降解植物細(xì)胞壁果膠和半纖維素多聚體中阿拉伯糖支鏈,從而破壞細(xì)胞壁的完整性,參與調(diào)節(jié)果實(shí)的成熟軟化[35,38-39]。已有研究發(fā)現(xiàn),多種果實(shí)采后成熟軟化與α-L-Af活性作用具有明顯的相關(guān)性[40-42]。圖7結(jié)果表明,隨著芒果貯藏時(shí)間的延長,對照組中α-L-Af活性快速增加,至貯藏第10 d達(dá)到最大值,隨后逐漸降低。然而Ali等[23]研究卻發(fā)現(xiàn)，在“Harumanis”芒果成熟軟化過程中，α-L-Af活性并沒有明顯的變化。其原因可能與不同品種的果實(shí)中細(xì)胞壁的組成和結(jié)構(gòu)不同有關(guān)[43]。由圖7也可以看出,SNP處理中α-L-Af活性總體表現(xiàn)為增加的趨勢,然而與對照相比,貯藏5～10 d時(shí)，SNP處理極顯著降低了貯藏前期果實(shí)中α-L-Af活性的增加(p<0.01),并推遲其最大值出現(xiàn)的時(shí)間至20 d。相關(guān)性分析結(jié)果表明,α-L-Af活性變化與硬度、原果膠含量均呈極顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.710,p<0.01,r=-0.759,p<0.01),與纖維素含量呈顯著負(fù)相關(guān)(r=-0.632,p<0.05),而與可溶性果膠含量呈顯著正相關(guān)(r=0.636,p<0.05)(表1)。因此,SNP減緩果實(shí)軟化與其抑制α-L-Af活性相關(guān)。目前還未見其他有關(guān)NO調(diào)節(jié)果實(shí)成熟軟化過程中α-L-Af活性的報(bào)道。

圖7 貯藏期間芒果果實(shí)中α-L-Af活性的變化Fig.7 Changes in α-L-Af activity of mango fruit during storage

3 討論與結(jié)論

芒果采后極易軟化,而果實(shí)硬度的降低與細(xì)胞壁原果膠含量和纖維素含量的下降具有極顯著正相關(guān)性(p<0.01),而與可溶性果膠含量的增加極顯著負(fù)相關(guān)(p<0.01)。因此,果膠物質(zhì)和纖維素等細(xì)胞壁組分的降解可能是采后芒果軟化的重要原因。

芒果軟化過程中有多種細(xì)胞壁水解酶的參與。硬度的降低與PG、β-Gal和α-L-Af活性的增加具有極顯著的負(fù)相關(guān)性(p<0.01),與CX活性的增加具有顯著的負(fù)相關(guān)性(p<0.05),而與PME具有一定的正相關(guān)性,但相關(guān)性不顯著(p>0.05)。表明PG、CX、β-Gal和α-L-Af在果實(shí)軟化過程中起重要作用,PME雖然參與果實(shí)軟化進(jìn)程,但可能不是關(guān)鍵酶。

SNP處理明顯降低了貯藏期間“臺(tái)農(nóng)”芒果果實(shí)中PG、CX、β-Gal和α-L-Af的活性,降低貯藏前期PME活性,而保持貯藏后期較高的PME活性,從而降低了細(xì)胞壁中果膠物質(zhì)和纖維素的水解和轉(zhuǎn)化,較好地維持細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的完整性,減緩了果實(shí)軟化的進(jìn)程。