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        五倍子酯提物抗流感病毒誘導的小鼠急性肺損傷作用機制

        2018-09-10 10:25:33張彧吳東升齊堃曾麗紅張銀銀李玲鄧奕輝
        湖南中醫(yī)藥大學學報 2018年12期
        關(guān)鍵詞:小鼠模型

        張彧 吳東升 齊堃 曾麗紅 張銀銀 李玲 鄧奕輝

        〔摘要〕 目的 探索Toll樣受體4(TLR4)在A型流感病毒所致小鼠急性肺損傷中的作用,進一步探討五倍子酯提物的干預機制。方法 實驗設(shè)正常組、模型組、五倍子酯提物組和奧司他韋組,以流感病毒小鼠肺適應株A/PR/8/34滴鼻感染C57BL小鼠,建立小鼠急性肺損傷模型。病毒感染后第1天開始予以相應干預,共6 d。分別于第2、4、6天處理動物。觀察肺組織大體解剖學變化,肺組織切片病理學變化,ELISA法檢測肺泡灌洗液中白細胞介素-6(IL-6)、白細胞介素-10(IL-10)水平,Western blot法檢測肺組織中TLR4、MyD88、TRAF6的蛋白表達。結(jié)果 流感病毒感染小鼠后,模型組小鼠肺臟充血、水腫,外觀呈暗褐色,肺泡間質(zhì)水腫、肺泡腔變小,內(nèi)有大量炎細胞浸潤,肺泡灌洗液中IL-6、IL-10水平及肺組織中TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達升高,與正常組相比,差異有顯著統(tǒng)計學意義(P<0.01)。與模型組相比,五倍子酯提物組能減輕肺部病變,降低肺泡灌洗液中IL-6、IL-10水平及肺組織中TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達水平,差異有顯著統(tǒng)計學意義(P<0.01)。結(jié)論 五倍子酯提物可通過抑制TLR4的活化及下游MyD88依賴的轉(zhuǎn)導路徑,減少炎性因子的轉(zhuǎn)錄生成,減輕肺部炎癥,減緩急性肺損傷進程。

        〔關(guān)鍵詞〕 五倍子酯提物;流感病毒;Toll樣受體4;急性肺損傷;白細胞介素-6;白細胞介素-10

        〔中圖分類號〕R285.5;R563? ? ? ? 〔文獻標志碼〕A? ? ? ?〔文章編號〕doi:10.3969/j.issn.1674-070X.2018.12.003

        人感染流感病毒引起的嚴重肺部感染,會通過激活肥大細胞釋放炎性介質(zhì)引起急性肺損傷(acute lung injury,ALI),甚至發(fā)展為急性呼吸窘迫綜合征,被認為是流感病毒感染致死的主要原因[1],引起了醫(yī)學界廣泛關(guān)注。流感病毒誘導ALI機制究竟如何,是防控流感病毒必須解決的關(guān)鍵問題。有研究發(fā)現(xiàn),Toll樣受體4(TLR4)能通過識別流感病毒基因組,激活TLR分子通路,并產(chǎn)生大量的炎性因子,導致肺損傷的發(fā)生[2-3],被認為是ALI的強勁推力[4]。MyD88是TLR4信號傳導依賴的經(jīng)典途徑,也對ALI起了重要作用[5]。

        《開寶本草》中記載五倍子具有斂肺降火、澀腸止瀉、收濕斂瘡、斂汗止血的功效,用于肺虛久咳、肺熱咳嗽等[6]。現(xiàn)代藥理研究表明,五倍子具有多種藥理活性,包括抗病毒、廣譜抑菌、抗腫瘤、清除自由基抗氧化等[7]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),五倍子能抑制呼吸道合胞病毒誘導的人支氣管上皮細胞凋亡,降低病毒的復制[8];抑制流感病毒神經(jīng)氨酸酶的活性,通過控制病毒感染力[9],降低肺指數(shù),減輕肺部炎癥等方式發(fā)揮抗流感病毒作用[10]。同時,本研究旨在探索TLR4在流感病毒所致小鼠ALI中的作用,進一步探討五倍子酯提物抗流感病毒的干預機制。

        1 材料

        1.1? 實驗動物

        SPF級野生型C57BL小鼠,共48只,雌雄各半,體質(zhì)量18~20 g,小鼠及飼料、墊料均由湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供。動物許可證:SYXK(湘)2013-0005。

        1.2? 流感病毒株

        A型流感病毒小鼠肺適應株(A/PR/8/34),由湖南師范大學病毒研究室惠贈,本實驗室-75 ℃冰箱保存。復蘇后經(jīng)10日齡雞胚尿囊腔接種培養(yǎng)傳代,血凝效價1∶640以上者供實驗用。將病毒尿囊液以滅菌生理鹽水作50倍稀釋。

        1.3? 藥物制備

        五倍子購自湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院中藥房。取五倍子1 kg粉碎,以5倍量乙醇回流提取,提取物濃縮后先后以石油醚、氯仿、乙酸乙酯萃取,其中乙酸乙酯萃取液濃縮后得五倍子乙酸乙酯浸膏,干燥研成粉末避光冷藏,經(jīng)計算提取率為10.65%。磷酸奧司他韋膠囊(宜昌長江藥業(yè)有限公司,75 mg/粒)購自湖南省人民醫(yī)院門診藥房。五倍子每日人臨床劑量為6 g,動物給藥劑量按動物每公斤體質(zhì)量占人體表面積的比值計算[11],五倍子臨床等效劑量為0.865 g/kg,五倍子酯提物率為10.65%,即五倍子酯提物的臨床等效劑量為0.092 g/kg。用生理鹽水配制臨床等效劑量的陽性藥物奧司他韋水溶液21.63 mg/kg。

        1.4? 主要試劑及設(shè)備

        超凈工作臺(Thermo);SDS-PAGE電泳、轉(zhuǎn)膜設(shè)備(Bio-Rad);ELX800酶標儀(Bio-tek);TLR4、MyD88、TRAF6兔多克隆抗體(Proteintech);普通光學顯微鏡(Olympus);HRP標記的羊抗兔IgG(Proteintech);4%多聚甲醛、IL-6和IL-10ELISA試劑盒、DAB顯色試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司)。

        2 方法

        2.1? 動物分組、造模及干預

        將48只C57BL小鼠適應性喂養(yǎng)2 d,按隨機數(shù)字表法分為正常組(Sham)12只和造模組36只。模型制備方法為:小鼠在吸入乙醚輕度麻醉的狀態(tài)下,用1 mL注射器抽吸流感病毒液0.15 mL行鼻腔接種。正常組于相同條件下隔離飼養(yǎng),并按同樣方法鼻腔接種生理鹽水0.15 mL。造模后隨機分為模型組(Model)、五倍子酯提物組(Wbz)、奧司他韋組(Oseltamivir)各12只。造模當天為第0天,第1天開始第1次給藥,每天1次,每次0.4 mL,共給藥6 d。五倍子酯提物組予五倍子酯提物水溶液(0.092 g/kg),奧司他韋組予奧司他韋水溶液(21.63 mg/kg),正常組與模型組予等容量生理鹽水。

        2.2? 檢測指標及鑒定模型

        各組分別于第2、4、6天給藥后隨機處理動物,每次4只,取肺泡灌洗液及肺組織進行指標檢測。觀察小鼠感染病毒后日?;顒訝顟B(tài)、肺解剖標本、肺病理切片并檢測肺泡灌洗液內(nèi)炎性因子含量及TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達情況。

        2.2.1? 小鼠活動狀態(tài)及肺組織解剖學觀察? 每天觀察各組小鼠活動狀態(tài),對小鼠肺進行大體解剖學觀察并拍照記錄。

        2.2.2? ELISA法檢測肺泡灌洗液中炎性因子的含量? 用10%水合氯醛麻醉小鼠,切開頸部皮膚,暴露氣管,在第2~3氣管環(huán)處用手術(shù)刀片挑開一小“一”字形切口,插入清潔灌胃針頭,結(jié)扎固定,連續(xù)2次用PBS緩沖液1.5 mL灌洗肺部,收集支氣管肺泡灌洗液約2 mL,1 000 r/min離心15 min,取上清液保存于-20 ℃冰箱。用ELISA法檢測各組肺泡灌洗液中IL-6、IL-10的含量。檢測程序及方法按照ELISA試劑盒說明書進行。

        2.2.3? HE檢測小鼠肺部炎癥情況? 超凈工作臺上摘取肺組織,切成0.5 cm3大小,4%多聚甲醛固定、脫水、透明、石蠟包埋切片,5 μm厚切片,經(jīng)蘇木精和伊紅染色、中性樹膠封片。光學顯微鏡下觀察肺組織病理改變。

        2.2.4? Westren blot法定量檢測肺組織中TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達情況? 分別提取各組小鼠肺組織總蛋白。取50 μg總蛋白100 ℃水浴10 min變性后,進行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)膜,封閉處理1 h,加入一抗(TLR4、MyD88、TRAF6兔多克隆抗體,1∶1 000),4 ℃孵育過夜,PBS清洗5 min×3次,加二抗(HRP標記的羊抗兔,1∶3 000)室溫孵育1 h,PBS清洗5 min×3次,暗室加ECL化學發(fā)光劑壓片,顯影、定影后掃描X膠片。采用Image-Pro Plus圖像分析系統(tǒng)分析數(shù)據(jù),目的蛋白的表達水平以目的蛋白條帶灰度值比β-actin條帶灰度值反映。

        2.3? 統(tǒng)計分析

        采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進行分析處理,所有資料以“x±s”表示。顯著性比較用ANOVA分析,組間比較應用LSD多重分析法。顯著性以P<0.05判定。

        3 結(jié)果

        3.1? 各組小鼠一般情況和大體解剖學觀察

        與正常組相比,模型組小鼠在第2天后逐漸表現(xiàn)出精神沉郁,活動減少,食欲下降,聳毛,毛發(fā)雜亂,呼吸急促,鼻部流出有少許水樣分泌物,個別出現(xiàn)異常興奮,狂躁,攻擊性增強等狀態(tài)。與模型組比較,五倍子酯提物組小鼠精神較好,毛發(fā)光澤,活動、呼吸及飲食情況基本正常。第6天小鼠剖檢,從大體解剖學上見,除正常組外,其余各組小鼠肺組織可見明顯水腫、出血、瘀血等現(xiàn)象(箭頭所示),其中五倍子酯提物組小鼠肺組織的水腫、出血明顯輕于模型組;說明五倍子酯提物在一定程度上減輕了ALI嚴重程度。見圖1。

        3.2? 各組小鼠肺泡灌洗液中IL-6、IL-10水平比較

        由表1-2可知:模型組小鼠肺泡灌洗液中IL-6和IL-10含量明顯升高,與正常組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),第4天達到炎癥高峰。第4天藥物組小鼠肺組織中IL-6和IL-10表達水平均低于模型組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

        3.3? 各組小鼠肺組織病理觀察

        由圖2可知:正常組小鼠第2、4、6天小鼠肺組織未見明顯變化。模型組小鼠第2天后可見支氣管上皮部分脫落,管壁水腫,管壁有以淋巴細胞、漿細胞為主的炎細胞浸潤,管腔內(nèi)可見大量脫落的組織、細胞及滲出物;第4天后,肺泡間質(zhì)水腫、增厚、肺泡腔變小,內(nèi)有大量炎細胞浸潤,出現(xiàn)間質(zhì)性肺炎病變,支氣管壁擴張充血;第6天后,大量的炎細胞浸潤,病變擴大,炎癥進一步發(fā)展(圖2箭頭所示)。五倍子酯提組與模型組相比,表現(xiàn)為相同的病理學變化,間質(zhì)水腫、炎細胞浸潤、間質(zhì)性肺炎等變化,但相應損傷程度較小。

        3.4? 各組小鼠TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達情況

        由圖3可知:正常組可以檢測到少量的TLR4、MyD88、TRAF6的蛋白表達。模型組TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達最強,提示流感病毒感染后TLR4-MyD88-TRAF6信號通路被激活。五倍子酯提物組和奧司他韋組TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達均低于模型組。其中奧司他韋組TLR4、MyD88、TRAF6蛋白表達最低。

        4 討論

        TLR4信號通路是炎癥反應過程中的關(guān)鍵,也是流感病毒感染時機體時被激活的重要信號通路之一。其基本過程是[5,12-13]:流感病毒感染時,Toll樣受體識別并結(jié)合病毒蛋白或核酸,受體發(fā)生構(gòu)象變化形成異源或同源二聚體,與MyD88結(jié)合,依次激活下游信號分子,如白介素受體相關(guān)激酶、腫瘤壞死因子受體相關(guān)因子(TRAF6),TRAF6可使NF-?資B活化,促進基因轉(zhuǎn)錄,調(diào)控產(chǎn)生眾多細胞因子(如IL-6、IL-10、 TNF-α、IL-1β等),啟動促炎與抗炎性反應,同時也造成了組織損傷。臨床研究發(fā)現(xiàn)[14],ALI患者血清中的IL-6水平增高,且與多器官功能衰竭的發(fā)病機制密切相關(guān)。在肺損傷的動物模型中,L-10的含量升高,抑制某些炎性因子的產(chǎn)生。

        本研究結(jié)果表明,流感病毒感染模型組小鼠后,小鼠肺組織嚴重損傷,肺泡灌洗液中炎性因子IL-6和IL-10含量升高,肺組織中TLR4、MyD88、TRAF6的蛋白表達水平顯著升高,且成時間相關(guān)性。本研究結(jié)果證實TLR4在流感病毒誘導的ALI發(fā)病機制中有著重要的作用,其可能的機制是流感病毒激活TLR4下游的MyD88依賴的信號通路,激活TRAF6,促進基因轉(zhuǎn)錄,調(diào)控IL-6、IL-10等炎性因子釋放,因子與因子、因子與組織之間相互作用造成肺部炎癥,推動ALI發(fā)生。與模型組相比,五倍子酯提物組小鼠肺組織受損較輕,肺泡灌洗液中IL-6和IL-10的釋放減少,TLR4、MyD88、TRAF6的蛋白表達水平下調(diào)。提示五倍子酯提物可通過抑制TLR4的活化及下游MyD88依賴的轉(zhuǎn)導路徑,減少炎性因子的轉(zhuǎn)錄生成,減輕肺部炎癥,減緩ALI進程。綜上所述,TLR4在A型流感病毒誘導的ALI起了重要作用。五倍子酯提物能降低TLR4的活化,抑制下游MyD88依賴的轉(zhuǎn)導路徑,減少炎性因子的釋放,減緩ALI進程,發(fā)揮抗病毒作用。

        值得注意的是,奧司他韋對流感病毒感染小鼠后導致的急性肺損傷在第2、3天干預效果明顯,可能是奧司他韋對流感病毒神經(jīng)氨酸酶特異性靶點治療發(fā)揮了重要作用。而五倍子酯提物在第5、6天效果明顯,是否是五倍子酯提物在時效關(guān)系的作用下發(fā)揮對機體有宏觀調(diào)控或多靶點治療作用,值得進一步探究。

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