周珊瑤 陳睿 譚夕 佘燕玲 雷斯
【摘要】目的探討Necrostatin1(Nec1)在二氯化鈷(CoCl2)誘導缺氧的條件下對骨骼肌細胞損傷修復的保護作用。方法采用小鼠骨骼肌C2C12成肌細胞為體外模型,CoCl2誘導缺氧,Nec1為缺氧保護劑。將培養(yǎng)分化72h后的細胞分為4組,分別加入等量培養(yǎng)基(Control組)、200μMCoCl2(CoCl2組)、150μMNec1(Nec1組)、200μMCoCl2+150μMNec1(CoCl2+Nec1組),于光鏡下觀察不同處理組細胞的肌管形態(tài),采用蛋白免疫印跡技術檢測肌細胞生成素(Myog)、肌細胞增強因子2A(MEF2A)蛋白表達的變化,統(tǒng)計細胞周期S期比例,劃痕實驗觀察細胞的損傷修復能力。結果CoCl2可誘導肌細胞形態(tài)異常,減少肌管分化,與Control組比較,CoCl2組Myog、MEF2A蛋白表達量降低(P均<001),同時,S期細胞比例下降(P<001),劃痕面積修復能力下降(P均<001)。加入Nec1干預后,細胞形態(tài)恢復,肌管分化增多,與CoCl2組比較,CoCl2+Nec1組Myog、MEF2A蛋白表達量及S期細胞比例上調(diào)(P均<005),細胞劃痕面積恢復(P<005)。結論CoCl2模擬缺氧可抑制肌細胞增殖、分化功能,導致肌細胞損傷修復能力下降。Nec1可增強缺氧條件下肌細胞的增殖和分化能力,對肌細胞的損傷修復有保護作用,可能通過抑制程序性壞死來促進肌細胞的損傷修復。
【關鍵詞】二氯化鈷;缺氧;C2C12;Necrostatin1;損傷修復
EffectofNec1onrepairofskeletalmusclecellinjuryundersimulatedhypoxiaZhouShanyao,ChenRui,TanXi,SheYanling,LeiSiGuangdongTraditionalMedicalandSportsInjuryRehabilitationResearchInstitute,GuangdongSecondProvincialGeneralHospital,Guangzhou510317,China
Correspondingauthor,ChenRui,Email:ruicmed@163com
【Abstract】ObjectiveToinvestigatetheprotectiveeffectofNecrostatin1(Nec1)ontherepairofskeletalmusclecellinjuryundersimulatedhypoxiainducedbyCobaltouschloride(CoCl2)MethodsInthisstudy,mouseskeletalmuscleC2C12cellswereusedasaninvitromodel,CoCl2wasutilizedtoinducehypoxiaandNec1wasutilizedasahypoxicprotectiveagentFollowingcultureandisolationfor72h,thecellsweredividedinto4groups,whichweresupplementedwithanequalvolumeofculturemedium(controlgroup),200μMCoCl2(CoCl2group),150μMNec1(Nec1group),and200μMCoCl2+150μMNec1(CoCl2+Nec1group),respectivelyThemorphologyofmyotubeswasobservedunderlightmicroscopeThechangesoftheexpressionlevelsofmyogenin(Myog),myocyteenhancerfactor2A(MEF2A)proteinswerequantitativelydetectedbyWesternblottingTheproportionofcellsintheSphasewasstatisticallycalculatedWoundhealingassaywasadoptedtoevaluatetheabilityofcelldamagerepairResultsCoCl2couldinducethemyoblastabnormalitiesanddecreasedthedifferentiationofmyotubesComparedwiththecontrolgroup,theexpressionlevelsofMyogandMEF2Aproteinsweresignificantlydownregulated(bothP<001),theproportionofSphasecellsandtherepairabilityweresignificantlydecreasedintheCoCl2group(bothP<001)FollowingtheNec1intervention,thecellularmorphologywasrestoredandthedifferentiationofmyotubeswasenhancedComparedwiththeCoCl2group,theexpressionlevelsofMyogandMEF2AproteinsandtheproportionofSphasecellsweresignificantlyupregulated(bothP<005),andtheareaofcellscarwassignificantlyrestored(P<005)afterthesupplementofNec1ConclusionsCoCl2simulatedhypoxiacaninhibittheproliferationanddifferentiationofmyocytes,leadingtodecreasedabilityofcellinjuryrepairNec1canenhancetheproliferationanddifferentiationofmyocytesandprotectmyocytesfrominjuryunderhypoxicconditionsandpromotetheinjuryrepairofmyocytesbysuppressingprogrammednecrosis
【Keywords】CoCl2;Hypoxia;C2C12;Necrostatin1;Injuryrepair
氧在細胞呼吸和能量代謝中起著重要的作用。臨床上,運動性損傷、缺血缺氧性疾病或組織炎癥性改變常伴隨氧灌注不足或攝氧障礙,低氧環(huán)境可使組織功能進一步下降、甚至發(fā)生萎縮或變性壞死[12]。近年來,程序性壞死(Necroptosis)作為非凋亡的細胞死亡信號途徑成為缺血缺氧性損傷研究的新熱點,越來越多研究者發(fā)現(xiàn),程序性壞死在多系統(tǒng)缺血缺氧性損傷后的炎癥反應、損傷修復過程中發(fā)揮重要作用[3]。相關研究表明,受體交互作用蛋白激酶1(RIP1)特異性抑制劑——壞死性凋亡抑制劑Necrostatin1(Nec1)能顯著改善缺血缺氧性損傷,對細胞、組織的增殖分化、損傷修復功能有保護作用[46]。但筆者見Nec1在骨骼肌缺氧損傷修復中作用的相關報道很少,故利用小鼠骨骼肌C2C12成肌細胞構建缺氧細胞模型,觀察缺氧對肌細胞的影響及Nec1的保護作用。
材料與方法
一、主要儀器與試劑
二氧化碳培養(yǎng)箱(美國ThermoFisherScientific公司),光學電子顯微鏡(美國LifeTechnologies公司),流式細胞儀(美國BeckmanCoulter公司),電泳轉印系統(tǒng)(北京凱元信瑞儀器有限公司),化學發(fā)光成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司)。C2C12小鼠骨骼肌細胞系購于中國科學院干細胞庫,高糖DMEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司),胎牛血清、馬血清(美國Hyclone公司)。二氯化鈷(CoCl2)、Nec1(德國Sigma公司)。細胞周期檢測試劑盒、電化學發(fā)光(ECL)試劑盒(江蘇凱基生物技術有限公司)。肌細胞生成素(Myogenin,Myog)一抗(德國MerckMillipore公司)。肌細胞增強因子2A(MEF2A)一抗(美國CST公司)。Tubulin一抗、辣根過氧化物酶標記山羊抗兔(美國ABclonal公司)。
二、實驗方法
1細胞培養(yǎng)
將C2C12小鼠骨骼肌細胞系置于含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基中,于37℃、5%二氧化碳的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),隔日換液,觀察細胞形態(tài)和生長情況。當細胞達到90%~100%融合時吸去完全培養(yǎng)液,使用含2%馬血清的高糖DMEM培養(yǎng)基進行誘導分化,隔日換液。分化72h后將細胞分為4組,分別加入等量培養(yǎng)基(Control組)、200μMCoCl2(CoCl2組)、150μMNec1(Nec1組)、200μMCoCl2+150μMNec1(CoCl2+Nec1組)。48h后收集細胞,進行后續(xù)實驗。
2光學顯微鏡下觀察肌管融合情況
加入CoCl2、Nec1處理48h后,在40倍光學顯微鏡下觀察細胞形態(tài)、肌管融合情況。
3細胞劃痕實驗
采用Maeker筆在培養(yǎng)板底部均勻劃線做標記,控制細胞數(shù)為5×105個,待細胞生長至90%時,用200μl槍頭沿標記線垂直劃痕,用磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗3次,去除劃痕損傷后不貼壁的細胞,重新加入相應培養(yǎng)基進行培養(yǎng),采用顯微鏡拍照記錄不同時間段劃痕面積,使用ImageJ軟件統(tǒng)計劃痕面積。
4細胞周期
用2%胰酶消化、離心、收集細胞,用PBS洗滌2次,調(diào)整細胞濃度為1×106/ml,制成單細胞懸液。加入70%冷乙醇500μl固定2h,用PBS洗去固定液,加入500μl碘化丙啶/核糖核酸酶A(PI/RNaseA)染色工作液,避光室溫孵育60min。應用PI染色法流式細胞分析不同處理下的C2C12細胞周期變化。
5蛋白免疫印跡檢測
細胞培養(yǎng)板中加入含蛋白酶抑制劑、磷酸蛋白酶抑制劑的細胞組織(RIPA)裂解液,于冰上裂解30min,4℃,12000轉/分離心10min。用二喹啉甲酸(BCA)法檢測蛋白含量。取30μg蛋白,進行電泳,再將蛋白電轉移至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上,室溫封閉1h。加入一抗于4℃孵育過夜。洗膜5次后于室溫孵育二抗。洗膜5次后,使用ECL液顯色,用天能系列全自動化學發(fā)光成像分析系統(tǒng)掃描成像。以Tubulin作為內(nèi)參,目的蛋白條帶與內(nèi)參比較作為條帶的相對表達值。
三、統(tǒng)計學處理
采用SPSS210對數(shù)據(jù)進行分析,同時用GraphPadPrism50進行繪圖。重復3次實驗數(shù)據(jù),計量資料采用±s表示,正態(tài)分布的計量資料多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較采用LSDt檢驗,以P<005為差異有統(tǒng)計學意義。
結果
一、Nec1、CoCl2對C2C12細胞肌管形成的影響
實驗中,Control組、Nec1組肌細胞分化情況良好,可見大量長條狀肌管形成。經(jīng)CoCl2處理后,分化停滯,肌管萎縮、斷裂,少見長條狀肌管形成。而加入CoCl2+Nec1處理后,可見細胞分化情況較CoCl2組改善,肌管形成增多,見圖1。
二、Nec1、CoCl2對Myog、MEF2A表達水平的影響
CoCl2處理可誘導肌生成、分化標志基因Myog、MEF2A蛋白表達下降(P均<001),加入Nec1處理后,可逆轉CoCl2的抑制作用,上調(diào)Myog(P<005)及MEF2A的表達(P<0001),見圖2、表1。
三、Nec1、CoCl2對細胞周期的影響
結果顯示,CoCl2組[(1247±106)%]和CoCl2+Nec1組[1889±352)%]S期細胞比例均較Control組[(3569±267)%]少(P均<0001),但CoCl2+Nec1組較CoCl2組多(P=0039),見圖3。
四、Nec1、CoCl2對C2C12細胞劃痕愈合的影響
實驗結果顯示,不同處理組的劃痕愈合程度不同,見圖4。隨時間推移,劃痕面積逐漸縮小,Control組、Nec1組及CoCl2+Nec1組愈合速度較快,在72h時幾乎完全愈合,而CoCl2組愈合速度相對較慢。
實驗結果采用單因素方差分析,對比各個時間點不同處理組之間的變化差異。在0h時,各處理組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>005);在24、48、72h時,CoCl2組細胞劃痕損傷面積均大于Control組、Nec1組(P均<0001);而加入Nec1處理逆轉了CoCl2引起的細胞損傷,CoCl2+Nec1組劃痕損傷面積減小,劃痕愈合程度較CoCl2組高(P<0001),見表2、圖5。
討論
本研究采用CoCl2模擬低氧環(huán)境,觀察小鼠C2C12成肌細胞的變化。CoCl2是常用的缺氧模擬化合物,在組織中通過鈷離子競爭血紅蛋白卟啉環(huán)中的鐵離子,抑制氧合血紅蛋白的形成而喪失與氧結合的能力,在細胞中通過抑制脯氨酰羥化酶的羥化作用,從而誘發(fā)一系列類似缺氧反應,在細胞增殖、分化以及損傷應激研究中被廣泛應用[78]。
通過CoCl2模擬缺氧后,可觀察到肌細胞形態(tài)學異常,肌細胞的分化標志物Myog和MEF2A表達下調(diào)。Myog屬于生肌調(diào)節(jié)因子(MRF)家族成員,具有控制成肌細胞融合的起始,促使成肌細胞增殖,促進單核成肌細胞轉變?yōu)槎嗪思±w維的作用,是肌細胞終末分化的決定因素[9]。本課題組的前期研究也顯示,MRF的表達對肌細胞的分化、融合有重要的作用[10]。Myog具有堿性螺旋環(huán)螺旋(bHLH)結構,MEF2的MADSbox區(qū)域可與bHLH相互作用,從而激活Myog的表達,進而實現(xiàn)對骨骼肌發(fā)育的調(diào)控。本研究結果提示,CoCl2模擬缺氧可抑制肌細胞的分化。
缺氧可使多種細胞生長停滯,并使其代謝、功能和形態(tài)結構發(fā)生異常變化,并出現(xiàn)凋亡、壞死、自噬、程序性壞死等[78,11]。本研究結果顯示,CoCl2誘導可導致細胞周期阻滯,劃痕損傷修復能力減弱,推測缺氧對細胞增殖有抑制作用。此外,亦有文獻報道,短時間或低劑量的缺氧環(huán)境可激活細胞應激保護機制,上調(diào)血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)、轉化生長因子β1(TGFβ1)等因子的表達量,減少細胞凋亡、加速細胞增殖分化,促進修復[1213]。
近年來,程序性壞死是細胞死亡領域新的研究熱點,具有壞死的細胞形態(tài)特點和自噬的活化,主動耗損能量,且能被一系列信號傳導通路高度調(diào)控[14]。有研究表明,CoCl2誘導缺氧能使程序性壞死活化[1516]。Nec1是程序性壞死的特異性抑制劑,文獻報道Nec1可改善缺血缺氧損傷,通過抑制程序性壞死對缺血缺氧模型的腦、肝、心肌組織具有保護作用,減少病理損傷,促進組織的損傷修復,對臨床治療指導意義重大[14,1719]。本研究結果顯示,與CoCl2處理組相比,加入Nec1干預能使細胞形態(tài)恢復正常,Myog、MEF2A蛋白表達水平上調(diào),S期細胞比例上升,劃痕實驗后的損傷面積修復能力改善,說明Nec1在缺氧條件下對骨骼肌細胞增殖分化有保護作用。由此推測,Nec1可能通過抑制肌細胞程序性壞死的發(fā)生,從而逆轉缺氧狀態(tài)對細胞增殖分化的損害。
綜上所述,CoCl2模擬缺氧可誘導肌細胞損傷,抑制其增殖、分化功能,Nec1對缺氧條件下的肌細胞損傷修復有保護作用,可能通過抑制程序性壞死來促進肌細胞的損傷修復。然而,本研究僅驗證了Nec1對化學誘導缺氧下的骨骼肌細胞具有保護作用,缺乏對物理缺氧模型的研究,未來將在后續(xù)的研究中進一步探討其在物理缺氧的體內(nèi)外模型的作用,研究Nec1的藥理作用及機制,為肌組織缺氧損傷相關疾病的治療提供理論依據(jù)。
參考文獻
[1]KawamuraI,TakemuraG,KanamoriH,TakeyamaT,KawaguchiT,TsujimotoA,GotoK,MaruyamaR,WatanabeT,ShirakiT,AoyamaT,F(xiàn)ujiwaraT,F(xiàn)ujiwaraH,MinatoguchiSRepeatedphlebotomyaugmentsangiogenesistoimprovebloodflowinmurineischemiclegsAmJPhysiolHeartCircPhysiol,2010,299(2):H372H378
[2]葉偉鳳,陳亮,熊敏,付曉燕,汪建不同缺氧方式對大鼠缺氧誘導因子1α及腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子的表達和認知功能影響醫(yī)學研究生學報,2017,30(6):569573
[3]DegterevA,HuangZ,BoyceM,LiY,JagtapP,MizushimaN,CunyGD,MitchisonTJ,MoskowitzMA,YuanJChemicalinhibitorofnonapoptoticcelldeathwiththerapeuticpotentialforischemicbraininjuryNatChemBiol,2005,1(2):112119
[4]米明珊,鮑劍峰,許勇,張偉波,杜鵬,彭興國,任磊程序性壞死特異性抑制劑1促進大鼠脊髓損傷修復的研究中華實驗外科雜志,2015,32(9):22142216
[5]支中文,楊龍,杜波,周延龍,耿德勤,程言博Necrostatin1對大鼠腦缺血再灌注損傷后小膠質(zhì)細胞和炎癥因子的影響中華神經(jīng)醫(yī)學雜志,2015,14(8):757763
[6]歐陽資章,劉曉萍,江晟,鐘志華,肖誠胤,鄧惠容Nec1對于環(huán)孢素A導致的細胞毒性的保護作用與機制研究中國生化藥物雜志,2017,11(7):10051678
[7]MohamedAS,HanafiNI,SheikhAbdulKadirSH,MdNoorJ,AbdulHamidHasaniN,AbRahimS,SiranRUrsodeoxycholicacidprotectscardiomyocytesagainstcobaltchlorideinducedhypoxiabyregulatingtranscriptionalmediatorofcellsstresshypoxiainduciblefactor1αandp53proteinCellBiochemFunct,2017,35(7):453463
[8]HeF,WuQ,XuB,WangX,WuJ,HuangL,ChengJSuppressionofStim1reducedintracellularcalciumconcentrationandattenuatedhypoxia/reoxygenationinducedapoptosisinH9C2cellsBiosciRep,2017,37(6):R20171249
[9]李碩,郝斐,吳海青,畢兆偉,張志鵬,劉東軍,倉明山羊MyoG啟動子的克隆和活性檢測中國農(nóng)業(yè)科學,2014,47(5):984994
[10]陳睿,佘燕玲,周珊瑤,史華彩,黎程TNFα與ERK1/2在心臟毒素誘導的肌損傷再生修復中的作用研究新醫(yī)學,2016,47(4):231236
[11]ChenR,JiangT,SheY,XuJ,LiC,ZhouS,ShenH,ShiH,LiuSEffectsofcobaltchloride,ahypoxiamimeticagent,onautophagyandatrophyinskeletalC2C12myotubesBiomedResInt,2017,2017:7097580
[12]AkenoN,CzyzykKrzeskaMF,GrossTS,ClemensTLHypoxiainducesvascularendothelialgrowthfactorgenetranscriptioninhumanosteoblastlikecellsthroughthehypoxiainduciblefactor2alphaEndocrinology,2001,142(2):959962
[13]孫崇毅,姚猛,劉慶鵬,吉光榮,王巖松缺氧培養(yǎng)對大鼠神經(jīng)干細胞體外增殖影響及其機制的研究現(xiàn)代生物醫(yī)學進展,2006,6(11):1819
[14]YangR,HuK,ChenJ,ZhuS,LiL,LuH,LiP,DongRNecrostatin1protectshippocampalneuronsagainstischemia/reperfusioninjuryviatheRIP3/DAXXsignalingpathwayinratsNeurosciLett,2017,651:207215
[15]WangHY,ZhangBCobaltchlorideinducesnecroptosisinhumancoloncancerHT29cellsAsianPacJCancerPrev,2015,16(6):25692574
[16]RovettaF,StacchiottiA,F(xiàn)aggiF,CatalaniS,ApostoliP,F(xiàn)anzaniA,AleoMFCobalttriggersnecroticcelldeathandatrophyinskeletalC2C12myotubesToxicolApplPharmacol,2013,271(2):196205
[17]ItoK,EguchiY,ImagawaY,AkaiS,MochizukiH,TsujimotoYMPP+inducesnecrostatin1andferrostatin1sensitivenecroticdeathofneuronalSHSY5YcellsCellDeathDiscov,2017,3:17013
[18]KimSJ,LeeSMNecrostatin1protectsagainstDgalactosamineandlipopolysaccharideinducedhepaticinjurybypreventingTLR4andRAGEsignalingInflammation,2017,40(6):19121923
[19]GengF,YinH,LiZ,LiQ,HeC,WangZ,YuJQuantitativeanalysisofnecrostatin1,anecroptosisinhibitorbyLCMS/MSandthestudyofitspharmacokineticsandbioavailabilityBiomedPharmacother,2017,95:14791485