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        玉米赤霉烯酮對(duì)體外培養(yǎng)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡的影響

        2018-08-15 06:08:56李欣虹鄭若愚辜彥霏陶思邑任志華王亞超鄧俊良
        關(guān)鍵詞:染毒膜電位脾臟

        李欣虹 鄭若愚 辜彥霏 陶思邑 任志華 王亞超 鄧俊良*

        (1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,成都 611130;2.西南科技大學(xué),綿陽(yáng) 621010)

        玉米赤霉烯酮(ZEA)又稱F-2毒素,是由鐮刀菌(主要是禾谷鐮刀菌,此外還有三線鐮刀菌、木賊鐮刀菌、雪腐鐮刀菌以及粉紅鐮刀菌等)產(chǎn)生的一種類雌激素樣霉菌毒素,在霉變的谷類作物和動(dòng)物性食品中廣泛存在。ZEA可促進(jìn)細(xì)胞凋亡。Kim等[1]研究發(fā)現(xiàn),ZEA可導(dǎo)致小鼠精細(xì)胞嚴(yán)重?fù)p害,出現(xiàn)不同程度的凋亡小體,且隨著作用時(shí)間延長(zhǎng)和濃度增加而加重,精原細(xì)胞和精母細(xì)胞表現(xiàn)更明顯。余增麗等[2]對(duì)乳腺癌的MCF-7細(xì)胞研究發(fā)現(xiàn)ZEA對(duì)細(xì)胞的增殖活性是通過(guò)調(diào)節(jié)B淋巴細(xì)胞瘤-2(Bcl-2)基因和Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bax)基因的表達(dá)抑制了細(xì)胞凋亡所獲得的,且ZEA可以顯著提高細(xì)胞色素P450家族1亞科A多肽1(CYP1A1)酶的活性及其mRNA表達(dá)。鄧友田等[3]也研究得出ZEA能夠促進(jìn)Bc1-2 mRNA和蛋白表達(dá),而抑制Bax的表達(dá),ZEA可提高人乳腺癌細(xì)胞系——MCF27細(xì)胞增殖活力并促進(jìn)有絲分裂指數(shù),并通過(guò)對(duì)Bc1-2和Bax表達(dá)的調(diào)節(jié)作用,抑制雌激素耗盡所誘導(dǎo)的MCF27細(xì)胞凋亡。符達(dá)[4]給大鼠飼喂不同劑量的ZEA發(fā)現(xiàn),ZEA可對(duì)大鼠p53基因第8外顯子的構(gòu)象產(chǎn)生影響,導(dǎo)致外顯子中2個(gè)條帶上堿基對(duì)出現(xiàn)以嘧啶與嘌呤的互換突變?yōu)橹鞯耐蛔?。而p53基因與細(xì)胞周期生長(zhǎng)的調(diào)節(jié)、細(xì)胞轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)、DNA復(fù)制及誘導(dǎo)程序性死亡有密切關(guān)系,p53基因通過(guò)Bal-2家族作用調(diào)控細(xì)胞凋亡[5]。在Yu等[6]關(guān)于ZEA誘導(dǎo)小鼠RAW264.7巨噬細(xì)胞死亡機(jī)制的研究中,ZEA染毒處理導(dǎo)致細(xì)胞線粒體膜電位的損失及Bcl-2和Bax蛋白在線粒體的變化,細(xì)胞質(zhì)釋放細(xì)胞色素C和凋亡誘導(dǎo)因子,過(guò)氧化氫酶抑制ZEA誘導(dǎo)RAW264.7細(xì)胞減少。

        ZEA作用于免疫系統(tǒng)的主要靶器官是脾臟,可導(dǎo)致脾臟淋巴細(xì)胞凋亡,進(jìn)而使機(jī)體免疫功能降低。馬勇江等[7]研究ZEA對(duì)離體培養(yǎng)脂多糖活化小鼠脾臟淋巴細(xì)胞具有顯著促凋亡作用,且促進(jìn)強(qiáng)度與其劑量呈依賴性關(guān)系。但目前關(guān)于ZEA對(duì)雞脾臟細(xì)胞凋亡方面的研究較少。因此,本研究以原代培養(yǎng)雞脾臟淋巴細(xì)胞為模型,從細(xì)胞水平上研究鐮刀菌毒素ZEA染毒對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞的凋亡及其調(diào)控基因的影響,以便闡明ZEA染毒對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞的影響及其分子機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        試驗(yàn)動(dòng)物:東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院動(dòng)物中心提供的40~60日齡健康的伊莎公雞。

        胎牛血清(FBS)購(gòu)自Gibco公司;4-羥乙基哌嗪乙磺酸(Hepes)、ZEA及無(wú)酚紅的RPMI1640培養(yǎng)基均購(gòu)自Sigma公司;細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒[用異硫氰酸熒光素標(biāo)記的膜聯(lián)蛋白V(Annexin V-FITC)和碘化丙啶(PI)雙染]購(gòu)自ACTGene公司;2′,7′-二氫二氯熒光黃雙乙酸鈉(DCFH-DA)與羅丹明123(Rh123)購(gòu)自Sigma公司;Trizol試劑盒、M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶、DNA抽提試劑盒及RNA酶均購(gòu)自Invitrogen公司;rTaq酶等PCR反應(yīng)試劑購(gòu)自TaKaRa(大連)生物公司;溴化乙錠(EB)購(gòu)自Sigma公司;雞的Bax、Bak-1、Bcl-2、p53及半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3(caspase-3)酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)檢測(cè)試劑盒均購(gòu)自上海生工生物公司。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 脾臟淋巴細(xì)胞懸液的制備、培養(yǎng)及處理

        在無(wú)菌條件下,將雞脾臟取出,放入盛有磷酸鹽緩沖液(PBS)的培養(yǎng)皿里,用PBS輕輕洗滌脾臟周?chē)难簹堅(jiān)屑?xì)剝?nèi)テ⑴K周?chē)Y(jié)締組織,將其移入另一個(gè)盛有PBS并浸泡有200目網(wǎng)篩的培養(yǎng)皿中,用鑷子將脾臟放在200目銅網(wǎng)上,用20 mL一次性注射器的內(nèi)芯輕輕研磨,過(guò)濾,將濾液適當(dāng)稀釋成一定濃度的細(xì)胞懸液,再將細(xì)胞懸液移入預(yù)先裝有雞淋巴分離液離心管里,即緩緩以1∶1體積比將細(xì)胞懸液移入到雞淋巴分離液上層,2 000 r/min常溫離心15 min,用巴氏吸管移取淋巴細(xì)胞,加入冷的PBS洗滌,1 500 r/min 4 ℃離心5 min,棄去上清液,加入不含毒素的RPMI1640完全培養(yǎng)液(加FBS)再洗滌1次,重懸,計(jì)數(shù),并用臺(tái)盼藍(lán)檢測(cè)細(xì)胞活力大于95%。

        前期試驗(yàn)已檢測(cè)染毒48 h時(shí),ZEA的半抑制濃度(IC50)為(23.91±4.96) μg/mL。通過(guò)IC50篩選出ZEA的作用濃度為對(duì)照組0、Z1組0.10 μg/mL、Z2組0.40 μg/mL、Z3組1.60 μg/mL、Z4組6.25 μg/mL和Z5組25.00 μg/mL[8]。

        1.2.2 流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞凋亡率和壞死率

        染毒培養(yǎng)48 h時(shí),收集細(xì)胞,1 500 r/min離心3 min,用PBS洗滌細(xì)胞3次。離心后,加500 μL Binding Buffer制備細(xì)胞懸液,再加入10 μL Annexin V-FITC和5 μL PI,室溫避光反應(yīng)5~15 min,用流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞凋亡率和細(xì)胞壞死率,同時(shí)以不加Annexin V-FITC及PI作為試劑對(duì)照。激發(fā)波長(zhǎng)為488 nm,Annexin V-FITC的綠色熒光通過(guò)異硫氰酸熒光素(FITC)通道(FL-1,530 nm)檢測(cè),PI的紅色熒光通過(guò)PI通道(FL-2,585 nm)檢測(cè)。每個(gè)樣品以10 000個(gè)細(xì)胞計(jì)數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),數(shù)據(jù)由流式細(xì)胞儀的標(biāo)準(zhǔn)計(jì)算機(jī)程序分析獲得。

        1.2.3 細(xì)胞內(nèi)活性氧(ROS)含量的測(cè)定

        染毒培養(yǎng)48 h,收集細(xì)胞,1 500 r/min離心3 min,后用PBS洗滌細(xì)胞3次。選用對(duì)細(xì)胞內(nèi)過(guò)氧化氫(H2O2)特異性結(jié)合的熒光染料DCFH-DA對(duì)細(xì)胞內(nèi)ROS進(jìn)行檢測(cè),用PBS懸浮細(xì)胞,加入DCFH-DA染液使其終濃度為100 μmol/L,混勻,37 ℃避光孵育30 min,PBS洗滌3次,在流式細(xì)胞儀測(cè)定其平均熒光強(qiáng)度(激發(fā)波長(zhǎng)488 nm,發(fā)射波長(zhǎng)530 nm)。

        1.2.4 細(xì)胞線粒體膜電位的測(cè)定

        染毒培養(yǎng)48 h,收集細(xì)胞,1 500 r/min離心3 min,后用PBS洗滌細(xì)胞2~3次。選用對(duì)線粒體特異性結(jié)合的熒光染料羅丹明123對(duì)線粒體膜電位進(jìn)行檢測(cè),用PBS懸浮細(xì)胞,加入羅丹明123染液使其終濃度為5 μg/mL,混勻,37 ℃避光孵育30 min,PBS洗滌3次,在流式細(xì)胞儀測(cè)定其平均熒光強(qiáng)度(激發(fā)波長(zhǎng)488 nm,發(fā)射波長(zhǎng)530 nm)。

        1.2.5 上清液中Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3含量測(cè)定(ELISA法)

        染毒培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,3 000 r/min離心20 min,吸取上清,-20 ℃保存?zhèn)溆?,按ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)測(cè)定上清液中Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3的含量。

        1.2.6 細(xì)胞內(nèi)凋亡調(diào)控基因Bc1-2、p53、Bax、Bak-1及caspase-3的mRNA表達(dá)測(cè)定

        按RNA提取試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,最終獲得組織總RNA;取組織總RNA適量,按PrimeScript RT-PCR Kit說(shuō)明書(shū)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,將提取的RNA轉(zhuǎn)化為cDNA,cDNA保存于-80 ℃?zhèn)溆没蛄⒓从糜赑CR。根據(jù)GenBank中發(fā)表的雞的β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)、Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3的全基因序列,應(yīng)用Prime 5.0軟件設(shè)計(jì)特異的上、下游引物,并經(jīng)GenBank Blast進(jìn)行同源性檢索后由Invitrogen公司(上海)合成。引物序列及參數(shù)見(jiàn)表1。

        表1 引物序列及參數(shù)Table 1 Primer sequences and parameters

        相關(guān)基因cDNA的PCR反應(yīng)體系包括cDNA、上游與下游引物、高保真酶、Premix和ddH2O,反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性30 s,按95 ℃ 變性5 s,60 ℃退火34 s,40個(gè)循環(huán),4 ℃終止反應(yīng);取PCR擴(kuò)增產(chǎn)物于1.5%瓊脂糖凝膠電泳2 h,凝膠成像儀拍照記錄PCR結(jié)果。

        1.3 數(shù)據(jù)分析

        采用REST軟件(Pfaffl)分析毒素處理樣品各目的基因mRNA的表達(dá)豐度,應(yīng)用SPSS 13.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行顯著性F檢驗(yàn)及相關(guān)性分析;其中上述各項(xiàng)指標(biāo)的測(cè)定重復(fù)3個(gè)不同批次的細(xì)胞,每批細(xì)胞每個(gè)樣本重復(fù)3次,數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。

        2 結(jié) 果

        2.1 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡率和壞死率的影響

        ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡率和壞死率的影響見(jiàn)表2。ZEA染毒時(shí),細(xì)胞凋亡率各組間差異顯著(P<0.05)。細(xì)胞壞死率除Z2組和Z3組差異不顯著(P>0.05)外,其余各組間差異均極顯著(P<0.01)。當(dāng)ZEA濃度達(dá)到6.25 μg/mL以上,細(xì)胞凋亡和壞死均有所減緩。

        除Z5組較Z4組淋巴細(xì)胞的凋亡率和壞死率均有所下降外,其余試驗(yàn)組的細(xì)胞凋亡率和壞死率均隨ZEA濃度的升高而升高,各ZEA組細(xì)胞凋亡率和壞死率均極顯著高于對(duì)照組(P<0.01);且同濃度下,脾臟淋巴細(xì)胞的凋亡率均高于壞死率,表明ZEA染毒主要導(dǎo)致脾臟淋巴細(xì)胞凋亡。

        2.2 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞內(nèi)ROS含量與線粒體膜電位的影響

        ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞內(nèi)ROS含量與線粒體膜電位的影響見(jiàn)表3。ZEA染毒48 h,雞脾臟淋巴細(xì)胞ROS含量隨毒素濃度的升高而增加,各ZEA組ROS含量極顯著高于對(duì)照組(P<0.01);而線粒體膜電位隨毒素濃度的升高而降低(Z3組除外),各ZEA組線粒體膜電位極顯著低于對(duì)照組(P<0.01)。ROS含量除Z3組與Z4組間差異不顯著(P>0.05)外,其余各組間差異顯著(P<0.05);ZEA組間線粒體膜電位差異顯著(P<0.05)。

        表2 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡率和壞死率的影響Table 2 Effects of ZEA on the apoptotic rate and necrotic rate of chicken splenic lymphocytes %

        同列數(shù)據(jù)肩標(biāo)不同大寫(xiě)字母表示差異極顯著(P<0.01),不同小寫(xiě)字母表示差異顯著(P<0.05),相同小寫(xiě)字母表示差異不顯著(P>0.05)。下表同。
        In the same column, values with different capital letter superscripts mean extremely significant difference (P<0.01), and with different small letter superscripts mean significant difference (P<0.05), while with the same small letter superscripts mean no significant difference (P>0.05). The same as below.

        表3 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞內(nèi)ROS含量與線粒體膜電位的影響Table 3 Effects of ZEA on intracellular ROS content and mitochondrial membrane potential in chicken splenic lymphocytes

        2.3 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞培養(yǎng)上清液中Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3含量的影響

        ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞培養(yǎng)上清液中Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3含量的影響見(jiàn)表4。針對(duì)Bcl-2含量,除Z1組與Z2組間差異不顯著(P>0.05)外,其余各組間差異均極顯著(P<0.01);針對(duì)p53含量,各組間均差異顯著(P<0.05);針對(duì)Bax含量,Z1組、Z2組、Z3組和對(duì)照組之間差異均不顯著(P>0.05),Z4組和Z5組之間及與上述各組間差異極顯著(P<0.01);針對(duì)Bak-1含量,各組間差異均顯著(P<0.05);針對(duì)caspase-3含量,除Z3組和Z4組間差異不顯著(P>0.05)外,其余各組間均差異顯著(P<0.05)。

        由此表明,p53、Bax、Bak-1和caspase-3含量隨毒素濃度的升高而增加,Bcl-2含量隨毒素濃度的升高而降低,具有顯著的劑量依賴關(guān)系。

        2.4 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3 mRNA表達(dá)的影響

        ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3 mRNA表達(dá)的影響見(jiàn)表5。針對(duì)Bcl-2 mRNA表達(dá)量,Z1組、Z2組和Z3組間Bax/Bcl-2值差異不顯著(P>0.05),但顯著高于對(duì)照組(P<0.05),Z4組和Z5組極顯著高于其他各組(P<0.01);針對(duì)p53 mRNA表達(dá)量,各ZEA組極顯著高于對(duì)照組(P<0.01);針對(duì)BaxmRNA表達(dá)量,各組間差異顯著(P<0.05);針對(duì)Bak-1 mRNA表達(dá)量,除Z2組和Z3組間差異不顯著(P>0.05)外,其余各組間差異極顯著(P<0.01);針對(duì)caspase-3 mRNA表達(dá)量,對(duì)照組、Z1組、Z2組和Z3組間差異不顯著(P>0.05),Z4組和Z5組極顯著高于其他各組(P<0.01),且2組間差異極顯著(P<0.01)。

        由此表明,除caspase-3 mRNA表達(dá)量在Z1組、Z2組和Z3組略小于對(duì)照組外,Bax/Bcl-2值以及Bax、Bak-1和caspase-3的mRNA表達(dá)量隨毒素濃度的升高而增加,具有顯著的劑量依賴關(guān)系。

        表4 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞培養(yǎng)上清液中Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3含量的影響Table 4 Effects of ZEA on contents of Bc1-2, p53, Bax, Bak-1 and caspase-3 in supernatants of chicken splenic lymphocytes

        表5 ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞Bc1-2、p53、Bax、Bak-1和caspase-3 mRNA表達(dá)的影響Table 5 Effects of ZEA on mRNA expression of Bc1-2, p53, Bax, Bak-1 and caspase-3 in chicken splenic lymphocytes

        3 討 論

        本實(shí)驗(yàn)室前期研究表明,ZEA在體內(nèi)試驗(yàn)中可以誘導(dǎo)小鼠腎臟細(xì)胞、腦細(xì)胞和肝臟細(xì)胞的凋亡[8-11],在體外試驗(yàn)中可以誘導(dǎo)豬脾臟淋巴細(xì)胞凋亡[12]。在本試驗(yàn)中,ZEA可以誘導(dǎo)體外培養(yǎng)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡,結(jié)果和前期試驗(yàn)結(jié)果一致。

        線粒體在氧化代謝過(guò)程中產(chǎn)生大量ROS。在自由基產(chǎn)生過(guò)多或抗氧化防御系統(tǒng)作用減弱時(shí),機(jī)體不能有效清除線粒體內(nèi)ROS,造成蓄積,過(guò)量蓄積的ROS可氧化線粒體滲透性轉(zhuǎn)運(yùn)孔上的相應(yīng)氧化還原敏感位點(diǎn),導(dǎo)致線粒體膜電位降低、線粒體腫脹和進(jìn)一步產(chǎn)生ROS,進(jìn)而造成線粒體的氧化損傷[13]。本研究結(jié)果表明ZEA染毒使雞脾臟淋巴細(xì)胞內(nèi)ROS大量積累,線粒體膜電位極顯著下降,和上述研究一致。

        細(xì)胞凋亡的信號(hào)傳導(dǎo)途徑是經(jīng)過(guò)特殊的死亡信號(hào)激活半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶系統(tǒng)來(lái)實(shí)現(xiàn)的[14]。caspase-3是在多種誘導(dǎo)劑刺激后導(dǎo)致凋亡的關(guān)鍵酶,它的活化預(yù)示著細(xì)胞凋亡執(zhí)行階段的開(kāi)始。正常情況下,它以酶原形式存在于胞質(zhì)中,當(dāng)細(xì)胞接受凋亡刺激時(shí),它被系列反應(yīng)激活,進(jìn)而誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生凋亡[15-17]。ZEA可誘導(dǎo)豬卵巢顆粒細(xì)胞凋亡依賴半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶凋亡通路[18]。本研究結(jié)果顯示,ZEA能夠誘導(dǎo)體外培養(yǎng)雞脾臟淋巴細(xì)胞caspase-3的mRNA表達(dá)量增加,分泌在上清液中的caspase-3蛋白也增加,且呈劑量效應(yīng)關(guān)系,和上述試驗(yàn)結(jié)果一致。

        在細(xì)胞凋亡過(guò)程中,p53蛋白起著至關(guān)重要的作用。p53蛋白主要集中于核仁區(qū),能與DNA特異結(jié)合,具有明顯的細(xì)胞轉(zhuǎn)化抑制作用,對(duì)保護(hù)細(xì)胞基因組DNA的完整性具有重要作用。如果DNA受到外來(lái)?yè)p傷,p53可作為轉(zhuǎn)錄因子誘導(dǎo)一系列下游基因的表達(dá),介導(dǎo)細(xì)胞停止在G期,使DNA有足夠的時(shí)間得到修復(fù)。如果DNA損傷嚴(yán)重,修復(fù)失敗、并且不可逆則p53啟動(dòng)凋亡程序誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[19]。Ayed Boussema等[20]研究ZEA對(duì)人的肝細(xì)胞是激活p53,通過(guò)p53途徑以劑量依賴方式誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。Yu等[6]研究ZEA對(duì)RAW264.7巨噬細(xì)胞的毒性作用,其中p53的激活起到了關(guān)鍵作用。Bouaziz等[21]研究ZEA對(duì)人的肝癌細(xì)胞的毒性,得出ZEA引發(fā)p53依賴的凋亡通路致細(xì)胞凋亡的分子機(jī)制。本試驗(yàn)結(jié)果也表明ZEA從基因水平改變了雞脾臟淋巴細(xì)胞p53的表達(dá),干擾了p53凋亡通路的調(diào)控,從而誘發(fā)雞脾臟淋巴細(xì)胞凋亡。

        Bcl-2家族蛋白在調(diào)節(jié)通過(guò)線粒體使細(xì)胞凋亡過(guò)程中起著至關(guān)重要的作用,Bcl-2蛋白主要分布于線粒體膜、核膜及內(nèi)質(zhì)網(wǎng)膜上,參與維持線粒體膜的完整性,防止細(xì)胞色素C的釋放,阻止凋亡的“內(nèi)源性激活”,是細(xì)胞的抗凋亡成員[22]。當(dāng)Bax形成同源二聚體Bax-Bax時(shí),誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,隨著B(niǎo)cl-2表達(dá)量的上升,越來(lái)越多的Bax二聚體分開(kāi),與Bcl-2形成比Bax-Bax二聚體更穩(wěn)定的Bax-Bcl-2的異二聚體,從而中和了Bax-Bax二聚體調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡的作用,即細(xì)胞內(nèi)Bax/Bcl-2的值對(duì)于決定細(xì)胞接受刺激信號(hào)后存活與否起關(guān)鍵作用。Bcl-2過(guò)量表達(dá)細(xì)胞存活,Bax過(guò)量表達(dá)則細(xì)胞凋亡[23]。Yuan等[24]研究得出ZEA誘導(dǎo)小鼠雄性生殖細(xì)胞的凋亡基因Bax的mRNA的表達(dá)增加,Bcl-2的mRNA表達(dá)減少。Yu等[25]研究ZEA對(duì)人的乳腺癌MCF-7細(xì)胞的研究,發(fā)現(xiàn)ZEA顯著抑制細(xì)胞凋亡,存在劑量依賴性,Western blot和多重RT-PCR分析顯示,抗凋亡的Bcl-2蛋白和mRNA水平上調(diào),促凋亡的Bax下調(diào),說(shuō)明ZEA具有雌激素活性,并能促進(jìn)MCF-7細(xì)胞通過(guò)細(xì)胞周期由G0/G1期減少和S期的顯著增加的進(jìn)展,通過(guò)Bcl-2表達(dá)調(diào)控抑制細(xì)胞凋亡。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,在ZEA對(duì)雞脾臟淋巴細(xì)胞作用下,Bak-1的表達(dá)均有所升高,Bax/Bcl-2值也增加,其蛋白含量也隨之增加或減少。

        4 結(jié) 論

        ① 本試驗(yàn)表明,隨ZEA濃度升高,細(xì)胞凋亡調(diào)控蛋白p53、Bax、Bak-1和caspase-3的含量升高,Bcl-2含量卻下降;ZEA上調(diào)Bcl-2家族基因(Bax和Bak-1)、p53基因和caspase-3基因表達(dá),抑制Bcl-2家族基因中Bcl-2基因表達(dá)。

        ② ZEA通過(guò)激活p53和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶通路而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡增加,并且凋亡是由氧化應(yīng)激引起。

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