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        梅毒螺旋體特異性抗體檢測方法在血清學診斷中的應用評估

        2018-07-31 08:24:30莊亦暉許曉峰盧仁泉
        檢驗醫(yī)學 2018年7期
        關(guān)鍵詞:層析印跡梅毒

        莊亦暉,龔 燕,許曉峰,盧仁泉,高 翔,郭 林

        (復旦大學附屬腫瘤醫(yī)院檢驗科 復旦大學上海醫(yī)學院腫瘤學系,上海 200032)

        梅毒是一種嚴重危害人體健康的性傳播疾病,現(xiàn)已成為全世界顯著的公共衛(wèi)生問題之一[1],其病原體為梅毒螺旋體(Treponema pallidum,TP)。目前,TP尚不能在體外培養(yǎng),因此測定血清中的TP抗體就成為臨床診斷梅毒感染的主要途徑。血清學診斷方法主要分為2類:第1類為非TP抗原血清試驗,檢測的是針對類脂抗原的抗體,即反應素,常用方法有性病研究實驗室試驗、快速血漿反應素環(huán)狀卡片(rapid plasma reagin,RPR)試驗、甲苯胺紅不加熱血清試驗(tolulized red unheated serum test,TRUST)等;第2類為TP抗原血清試驗,檢測的是TP的特異性抗體,主要有梅毒螺旋體血凝試驗、梅毒螺旋體明膠凝集試驗(Treponema pallidum particle assay,TPPA)、熒光密螺旋體抗體吸附試驗、酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA)、免疫層析法、化學發(fā)光法(chemiluminescence immunoassay, CLIA)及免疫印跡法等。如果第1類試驗有反應性,需經(jīng)第2類試驗證實,以排除假陽性。本研究擬評估免疫層析法和化學發(fā)光微粒子免疫分析法(chemiluminescent microparticle immunoassay,CMIA)在檢測TP特異性抗體中的應用價值。

        1 材料和方法

        1.1 樣本來源

        350份血清樣本均來自復旦大學附屬腫瘤醫(yī)院門診及住院術(shù)前檢查患者,其中男性樣本194例、女性樣本156例,年齡45~67歲。

        1.2 儀器與試劑

        TPPA試劑購自日本伯樂富士瑞必歐株式會社。Determine Syphilis TP抗體膠體硒法試劑(免疫層析法)購自美國雅培公司。ARCHITECT Syphilis TP試劑(CMIA)購自美國雅培公司,檢測儀器為ARCHITECT i2000SR全自動化學發(fā)光免疫分析儀(美國雅培公司)。免疫印跡法試劑購自歐蒙醫(yī)學診斷(中國)有限公司。TRUST試劑購自上海榮盛生物有限公司。

        1.3 方法

        350份樣本首先采用TPPA和TRUST測定,然后采用免疫層析法和CMIA平行檢測,2種方法檢測結(jié)果不一致的樣本再用免疫印跡法復核。所有操作和結(jié)果判讀均嚴格參照試劑和儀器說明書。免疫層析法以檢測試紙條上質(zhì)控線和檢測線均出現(xiàn)為樣本有反應性。CMIA以相對發(fā)光值(relative light unit,RLU)與校準品臨界值的比值(S/CO)報告,S/CO≥1.0為樣本有反應性。根據(jù)TPPA檢測結(jié)果分組:第1組125份樣本,為TPPA有反應性;第2組25份樣本,為TPPA 1∶80弱反應性;第3組200份樣本,為TPPA陰性。第1組和第2組合計150份樣本用于方法敏感性評價。第3組200份樣本用于方法特異性評價。

        1.4 統(tǒng)計學方法

        采用GraphPad Prism 5.0版進行統(tǒng)計分析。數(shù)據(jù)以率表示,組間比較采用χ2檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        第1組和第2組150份樣本中,免疫層析法檢出有反應性樣本145份,5份未檢出(樣本號為1~5號),敏感性為96.7%(145/150);CMIA檢出有反應性樣本150份,敏感性為100.0%(150/150),2種方法的敏感性差異無統(tǒng)計學意義(χ2=3.3,P>0.05)。第3組200份樣本中,免疫層析法檢出弱反應性樣本8份(樣本號為6~13號),CMIA檢出有反應性樣本16份(樣本號為6、7、10、11、13~24號)。免疫層析法與TPPA有13份樣本的檢測結(jié)果不一致,2種方法的一致率為96.3%(337/350);CMIA與TPPA有16份樣本的檢測結(jié)果不一致,2種方法的一致率為95.4%(334/350)。見表1。

        對24份檢測結(jié)果不一致的樣本采用免疫印跡法進行復核。第1組和第2組中免疫層析法未檢出的5份樣本(樣本號為1~5號)免疫印跡法結(jié)果均為有反應性,其中1、3、5號樣本在TpN47條帶處顯示較淡條帶。在第3組免疫層析法有反應性的8份樣本(樣本號為6~13號)中,7號和10號樣本的免疫印跡法結(jié)果為有反應性;在CMIA有反應性的16份樣本(樣本號為6、7、10、11、13~24號)中,7、10、17、21和23號樣本的免疫印跡法結(jié)果為有反應性,但這5份樣本缺乏臨床信息來支持疾病的進一步明確診斷,為不確定結(jié)果,需要今后跟蹤隨訪,因此這5份暫不作為陰性樣本;此外,6、13、14、16、18和20號樣本的免疫印跡法結(jié)果為臨界,作為陰性結(jié)果處理。因此,最終校正后的方法特異性如下:免疫層析法的特異性為98.5%(192/195),CMIA的特異性為94.4%(184/195),2種方法的特異性差異無統(tǒng)計學意義(χ2=3.6,P>0.05)。見表2、表3。

        表1 免疫層析法和CMIA的檢測結(jié)果

        表2 24份檢測結(jié)果不一致樣本的免疫印跡法結(jié)果

        續(xù)表2

        表3 24份檢測結(jié)果不一致樣本的免疫印跡法結(jié)果匯總

        3 討論

        在過去30多年中,TP細胞壁脂蛋白的分離與提純以及基因重組技術(shù)的出現(xiàn),使TP的實驗室檢測技術(shù)飛速發(fā)展,其中最常見的4個用于TP特異性抗體檢測的特異性多肽是TpN15、TpN17、TpN45和TpN47[2]。本研究評估的免疫層析法和CMIA包被抗原中均包含TpN47。TpN47具有免疫原性強、誘導早期體液免疫及其抗體存在于未治療梅毒的各個階段等特點[3]。

        本研究結(jié)果顯示免疫層析法的敏感性和特異性分別為96.7%、98.5%;CMIA的敏感性和特異性分別為100.0%、94.4%,2種方法的敏感性和特異性差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05),可以滿足不同實驗室的檢測需求。

        在敏感性方面,CMIA檢測出了所有TPPA有反應性和1∶80弱反應性的樣本,顯示出很高的敏感性,與文獻報道[4-5]一致。這可能與其試劑中聯(lián)合包被3種重組抗原(TpN15、TpN17、TpN47)有關(guān),與免疫層析法試劑僅包被TpN47抗原相比,更廣的抗原譜提升了對TP特異性抗體的檢測能力。免疫層析法未檢出的5份TPPA有反應性的樣本,免疫印跡法均出現(xiàn)了2條以上的特異性條帶,結(jié)果為有反應性,其中有3份樣本的TpN47條帶較淡,因此樣本中相應抗體的濃度較低。由此推測這5份樣本均有可能是因為抗體濃度過低、降低了抗原抗體反應的強度而導致免疫層析法出現(xiàn)假陰性結(jié)果。

        在特異性方面,CMIA在梅毒低危人群中有一定比例的假陽性。這種現(xiàn)象最先由美國疾病預防控制中心報道:在梅毒低危人群中,如ELISA或CLIA檢測TP特異性抗體有反應性,但RPR試驗或TRUST檢測無反應性且TPPA也無反應性,則可排除TP感染[6-7]。出現(xiàn)這種假陽性現(xiàn)象的原因至今不甚明了,有可能是體內(nèi)共生螺旋體產(chǎn)生的交叉抗體[8]。本研究結(jié)果顯示,在去除免疫印跡法結(jié)果為臨界的5份樣本后,在其他195份TPPA無反應性樣本中,CMIA有11份樣本(5.6%)可能為假陽性結(jié)果,這11份樣本免疫印跡法結(jié)果為6份可疑、5份陰性;免疫層析法有4份樣本為弱反應性,其中3份樣本的免疫印跡法結(jié)果出現(xiàn)單條TpN47條帶,確切原因未知。BAKER-ZANDER等[9]的研究結(jié)果顯示,正常人血清中可存在少量與TpN47發(fā)生反應的免疫球蛋白。這可能是免疫層析法出現(xiàn)弱反應性的原因之一。

        聯(lián)合國開發(fā)規(guī)劃署、世界銀行、世界衛(wèi)生組織的性傳播疾病診斷規(guī)劃組對6種檢測TP特異性抗體的快速診斷產(chǎn)品的聯(lián)合評估結(jié)果顯示,免疫層析法的敏感性和特異性分別為97.2%、94.1%[10],與本研究結(jié)果相似。因免疫層析法具有操作簡便、結(jié)果直觀、可采用全血進行檢測的特點,所以被世界衛(wèi)生組織推薦至疾病高發(fā)地區(qū)或發(fā)展中國家的基層診所或?qū)嶒炇疫M行進一步評估。由此可見,在梅毒高發(fā)人群中可以先用免疫層析法進行篩查,并結(jié)合TRUST或RPR試驗確定患者是否為新發(fā)感染。SIEDNER等[11]采用免疫層析法檢測了梅毒高風險患者的全血樣本,結(jié)果顯示敏感性和特異性均為100% 。

        篩查TP感染以往最普遍的方法是TRUST或RPR試驗,考慮到其生物假陽性現(xiàn)象,需用TPPA加以確認,而基層醫(yī)療機構(gòu)中往往因樣本量少以及試劑、儀器、人員、技術(shù)等因素而不開展TPPA,因此更趨于選擇對操作者技術(shù)要求不高的免疫層析法。在大型綜合性醫(yī)院、專科醫(yī)院以及采供血醫(yī)療機構(gòu)中,日益增加的樣本量使得以手工操作為主的TPPA面臨嚴峻挑戰(zhàn),而可以實現(xiàn)自動化操作的ELISA和CLIA能滿足實驗室高通量檢測的需求,因此TP的實驗室篩查逐漸由傳統(tǒng)流程轉(zhuǎn)向反向流程[12]。

        綜上所述,免疫層析法具有操作簡便、無需額外儀器,獲取結(jié)果時間短的優(yōu)點,適用于基層醫(yī)療機構(gòu)和邊遠地區(qū)的產(chǎn)前篩查。CMIA具有高通量、數(shù)據(jù)易于保存等諸多優(yōu)點,在梅毒反流程篩查方案中可作為一線篩查試驗,適用于樣本量大的大型實驗室。總之,CMIA、免疫層析法具有很好的敏感性和特異性,且與TPPA具有較好的一致性,可用于臨床檢測。

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