宿飛飛,孫慕華,李 勇,劉尚武,劉振宇,王紹鵬,萬(wàn)書(shū)明,陳 曦,高云飛,張靜華,秦斐斐,胡林雙,呂典秋*
(1.黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院博士后科研工作站,黑龍江哈爾濱 150030;2.黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物脫毒苗木研究所,黑龍江哈爾濱 150030;3.北大荒黑土薯業(yè)有限公司,黑龍江哈爾濱 150030;4.山東省花生研究所,山東青島 266100)
分根交替灌溉(partial root-zone drying,PRD)是對(duì)作物不同區(qū)域根系進(jìn)行干濕交替灌溉的新型節(jié)水灌溉方式。這種灌溉是一種適度的干旱作用于作物根系,植株從而產(chǎn)生干旱信號(hào)誘導(dǎo)產(chǎn)生相應(yīng)的生理和應(yīng)答基因活化,對(duì)于保證作物產(chǎn)量及提高灌溉水利用率均具有很重要作用。國(guó)內(nèi)外關(guān)于逆境脅迫對(duì)植物細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)變化的研究亦有報(bào)道,大量研究發(fā)現(xiàn)逆境脅迫對(duì)植物細(xì)胞的膜脂過(guò)氧化有促進(jìn)作用,主要表現(xiàn)在葉綠體、線粒體等細(xì)胞器的超微結(jié)構(gòu)破壞和葉綠素降解等[1-3]。目前,不同灌溉模式下的植物適應(yīng)能力研究仍比較少。
分根交替灌溉的研究領(lǐng)域主要集中應(yīng)用于在葡萄[4]、西紅柿[5-7]、辣椒[8]、梨[9]、芒果[10]等蔬菜和果樹(shù)作物研究,側(cè)重于提高水分利用率及節(jié)約灌溉水資源。而在馬鈴薯抗旱研究應(yīng)用較少,且對(duì)抗旱誘導(dǎo)所要求的細(xì)胞微觀和生理活性的研究還鮮見(jiàn)報(bào)道。鑒于此,筆者研究了馬鈴薯分根交替灌溉下葉片的超微結(jié)構(gòu)和各項(xiàng)生理活性指標(biāo)變化規(guī)律,挖掘分根交替灌溉技術(shù)潛力,將作物水分生理調(diào)控機(jī)制與作物高效用水技術(shù)緊密結(jié)合,為研發(fā)出非充分灌溉下的馬鈴薯高效抗旱節(jié)水栽培技術(shù)提供理論依據(jù)。
1.1材料供試材料是費(fèi)烏瑞它的馬鈴薯早熟品種,原種級(jí)別,由黑龍江省馬鈴薯工程技術(shù)研究中心提供,規(guī)格為50 g,整薯播種,試驗(yàn)在黑龍江省馬鈴薯工程技術(shù)研究中心智能溫室。
1.2方法選取規(guī)格大小45 cm×35 cm×17 cm花盆,為了防止花盆內(nèi)植株兩側(cè)根系區(qū)域內(nèi)土壤水分發(fā)生滲透,在盆沿上劃線并標(biāo)記將盆用硬質(zhì)塑料板均勻分成2部分。每個(gè)花盆稱取重量相同試驗(yàn)土5 kg,試驗(yàn)土配比為草炭∶爐灰∶土=3∶1∶2。試驗(yàn)共設(shè)2個(gè)處理,分別為正常澆水對(duì)照(CK)和干旱誘導(dǎo)處理(PRD)。干旱誘導(dǎo)處理(PRD)半邊澆水量為對(duì)照處理(CK)的70%。每個(gè)花盆種植1株,每個(gè)處理15株,3次重復(fù),共90株。
試驗(yàn)按照正常管理,直到植株長(zhǎng)到7~8片葉(定植40 d)時(shí)開(kāi)始采取控水處理。具體處理方法如下:控水處理當(dāng)天對(duì)試驗(yàn)植株進(jìn)行澆透水處理,對(duì)照植株供水方式與常規(guī)灌溉一致,每隔5 d澆水1次,使土壤相對(duì)含水量始終保持在75%~80%。干旱誘導(dǎo)處理是每隔5 d澆水到花盆的半邊,另半邊花盆保持干旱狀態(tài),之后輪流更替。對(duì)花盆兩側(cè)進(jìn)行前后2次澆水處理,分別在兩次半邊含水量80%、60%、40%時(shí)進(jìn)行6次取樣,在控水15 d之后進(jìn)行復(fù)水,復(fù)水后土壤含水量60%和40%時(shí)再取樣,樣品選取頂部葉片以下的第2~3片功能葉片。在不同生長(zhǎng)時(shí)期各稱取葉片制作透射、掃描電鏡樣品,用于測(cè)定植株細(xì)胞微觀形態(tài)指標(biāo),并稱取0.5 g植株的葉片,將其用錫箔紙包被,放于液氮中速凍,再放-80 ℃超低溫冰箱中,用于生理指標(biāo)測(cè)定。
1.3測(cè)定項(xiàng)目與方法
1.3.1產(chǎn)量測(cè)定。采收時(shí)期馬鈴薯塊莖全部收獲,并稱其鮮重。
1.3.2氧化酶分析。將檢測(cè)樣品從-80 ℃冰箱中取出,放入已進(jìn)行預(yù)冷處理的研缽中,加入7 mL內(nèi)含1%的PVP、濃度為0.05 mol/L、pH 7.8的磷酸緩沖液7 mL(分次加入,不要一次性加入),并加入適量石英砂,于冰浴中研磨,研磨完全后轉(zhuǎn)移至離心管中,12 000 r/min 4 ℃離心處理15 min得到上清液,即為酶提取液,將其定容至10 mL,放至有刻度的試管中,并置于4 ℃冰箱的冰浴中備用,用于測(cè)定氧化酶活性。
1.3.2.1超氧化物歧化酶(SOD)活性。超氧化物歧化酶的提取主要參照李合生NBT光還原法[11]。把備用酶液取出0.1 mL,分別編號(hào)并設(shè)2個(gè)對(duì)照,對(duì)照管以0.05 mol/L磷酸緩沖液代替酶液,在每個(gè)樣品中依次加入0.05 mol/L磷酸緩沖液1.5 mL,130 mmol/L甲硫氨酸0.3 mL,750 μmol/L氮藍(lán)四唑0.3 mL,100 μmoL/LEDTA二鈉0.3 mL,20 μmoL/L核黃素0.3 mL,混合均勻定容至3 mL。將對(duì)照管于黑暗處,而處理各管在4 000 lx光照下反應(yīng)5 min。反應(yīng)結(jié)束后,將各個(gè)試管遮光放置,并以無(wú)光照的對(duì)照試管為空白,分別測(cè)定其他各管560 nm處的吸光度。
SOD活性公式:
(1)
式中,SOD活性是以鮮重酶單位每克表示;ACK表示有光強(qiáng)的CK管吸光度;AE為測(cè)試品管吸光度;V為測(cè)試品液體積,單位為mL;Vt為測(cè)試品用量,單位為mL;W為測(cè)試品鮮重,單位為g。
1.3.2.2過(guò)氧化物酶(POD)活性。過(guò)氧化酶測(cè)定采用張志良愈創(chuàng)木酚的方法[12]。將100 mol/L磷酸緩沖液50 mL和愈創(chuàng)木酚28 μL共2種液體混合,攪拌加熱溶解后進(jìn)行冷卻,達(dá)到室溫狀態(tài)加入19 μL 30%H2O2混合備用。取編號(hào)的試管,將混合液提取3.0 mL加入緩沖液0.7 mL和酶液0.3 mL,對(duì)照為混合液提取3.0 mL加入1.0 mL的提取緩沖液。每隔60 s 測(cè)定1次波長(zhǎng)吸光值,直至300 s,共測(cè)定5次。以每60 s內(nèi)A470變化0.01為1個(gè)H2O2酶活性單位U,單位用g/min表示。
POD活性計(jì)算公式如下:
POD總活性=(ΔA470×VT)/(W×V1×0.01×t)
(2)
公式中:△A470表示反應(yīng)時(shí)間內(nèi)吸光度值的變化;W表示測(cè)樣品的鮮重,單位g;t表示比色反應(yīng)時(shí)間,單位min;VT表示酶液總體積,單位mL;V1表示測(cè)定酶液體積,單位mL。
1.3.2.3過(guò)氧化氫酶(CAT)活性。過(guò)氧化氫酶提取參照郝再彬高錳酸鉀滴定法[13]。取玻璃管樣品數(shù)加上1個(gè)對(duì)照管,在所有試管中加入pH 7.5的0.05 mol/L磷酸緩沖液4.5 mL,再加入H2O23.0 mL,在樣品管中加入0.6 mL的酶液,在對(duì)照管中加入0.6 mL的0.05 mol/L磷酸緩沖液,混合后再加入0.1 mol/L過(guò)氧化氫0.9 mL,立即記錄時(shí)間,混勻,在240 nm處測(cè)定吸光值,每隔1 min讀數(shù)1次,共測(cè)4 min,全部測(cè)定后,計(jì)算酶活性。CAT活性計(jì)算公式如下:
CAT活性=(ΔA240×3.0×VT)/(0.043 6×V1×t×FW)
(3)
式中,ΔA240表示吸光值變化在240 nm波長(zhǎng);3.0表示體系體積;VT表示酶液總體積,單位mL;V1是測(cè)定粗酶液容積,單位mL;FW表示待測(cè)樣品鮮重,單位g;0.043 6表示240 nm處1 μmol/L H2O2吸光值;t為加H2O2到最后一次讀數(shù)時(shí)間,單位min。
1.3.2.4丙二醛(MDA)含量。丙二醛含量測(cè)定采用何文亮等[14]硫代巴比妥酸比色方法。稱取硫代巴比妥酸0.6 g,并加入1 mol/L的NaOH溶液10 mL,再加入1.0 mol/L的鹽酸溶液11 mL,定容到100 mL的容量瓶。從容量瓶中取出3 mL TBA溶液分別放于編好號(hào)的樣品管及2個(gè)對(duì)照管中,在樣品管中加入1.5 mL 0.05 mol/L磷酸緩沖液及1.5 mL相對(duì)應(yīng)編號(hào)的酶液,在對(duì)照管中則直接加入3 mL 0.05 mol/L磷酸緩沖液,加完各溶液后混勻,放于鐵架上置于沸水浴中反應(yīng)15 min,在沸水浴中反應(yīng)時(shí)要用保鮮膜蓋上試管口。為了防止蒸發(fā),反應(yīng)結(jié)束后迅速倒入編好號(hào)的離心塑料管中,直接插入冰盒中,在10 000 g離心15 min,取上清液分別測(cè)定OD450、OD532和OD600的吸光值。
MDA活性=[6.45×(OD532-OD600)-0.56×OD450]×VT/W
(4)
式中,MDA活性表示以mol/kg;W表示樣品鮮重,單位g;VT表示提取酶液總體積,單位mL。
1.4超微結(jié)構(gòu)觀察分別在土壤含水量80%、60%、40%和另半邊含水量80%、60%、40%及植株復(fù)水后含水量60%、40%時(shí)取樣,取樣部位為頂部葉片以下的2~3片功能葉片,根據(jù)以下操作制作透射和掃描電鏡樣品。首先將樣品置于載玻片上,切成3 mm×1 mm規(guī)格的樣條,隨后將其放入戊二醛(2.5%)中固定2 h,并用0.1 mol/L的磷酸緩沖液(pH 7.4)漂洗3次,每次10 min,漂洗后在通風(fēng)櫥用1%的四氧化鋨固定3 h,再用0.1 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.4)漂洗3次,每次10 min。再分別用濃度為30%、50%、70%、90%、100%的乙醇對(duì)樣品進(jìn)行對(duì)水處理,其中濃度為30%、50%、70%的處理5~10 min,濃度為90%、100%的處理10~15 min,濃度為100%的脫水處理3次,其余各進(jìn)行l(wèi)次脫水處理。用濃度為100%的乙醇∶丙酮(比例1∶l)進(jìn)行置換1次,然后使用濃度100%的丙酮進(jìn)行置換1次,每次置換10 min。
經(jīng)過(guò)置換后則進(jìn)行滲透處理,方法為用丙酮∶Epon812樹(shù)脂(3∶1)滲透2 h,丙酮∶Epon512樹(shù)脂(1∶l)滲透4 h,丙酮∶Epon812樹(shù)脂(1∶3)滲透4 h,純Epon812樹(shù)脂則滲透過(guò)夜。在樣品過(guò)夜?jié)B透處理時(shí),同時(shí)將包埋板放入35、45、60 ℃的恒溫箱內(nèi)加溫聚合過(guò)夜處理。然后在修塊機(jī)上利用超薄切片機(jī)對(duì)位于處理好的帶有梯形尖端的包埋塊內(nèi)的組織進(jìn)行切片,厚度為5 000~7 000 nm。用含支持膜的樣品載網(wǎng)將制好的切片撈出,將其放入墊有消毒后的濾紙培養(yǎng)皿中。隨后進(jìn)行染色處理,方法為醋酸鈾一檸檬酸鉛雙染色法,具體如下:首先用醋酸雙氧鈾對(duì)樣品常溫染色20 min,再用雙重蒸餾水進(jìn)行3次洗滌,隨后用檸檬酸鉛常溫染色15 min,再用雙重蒸餾水進(jìn)行3次洗滌,最后用濾紙吸取水分,將處理完成的樣品放入培養(yǎng)皿中待檢。在掃描電鏡下觀察被處理過(guò)的葉片的氣孔數(shù)量及開(kāi)放程度,測(cè)量氣孔的長(zhǎng)、寬用于計(jì)算氣孔的密度,統(tǒng)計(jì)氣孔的開(kāi)閉情況。觀察時(shí),選取具有代表性的視野拍照,每個(gè)處理的電鏡觀察統(tǒng)計(jì)至少為8個(gè)視野,取其平均值。用透射電鏡觀察處理后葉片的葉綠體、線粒體變化情況,并選取有代表性視野進(jìn)行分析。
2.1不同灌溉處理下馬鈴薯細(xì)胞層超微結(jié)構(gòu)比較
2.1.1不同灌溉處理及梯度土壤含水量下氣孔形態(tài)比較。對(duì)比圖1中a和d,b和e,c和f可知,在同等土壤含水量的情況下,2種處理的樣品中氣孔器的密度差異明顯,其中PRD灌溉處理的馬鈴薯葉片氣孔器密度較同等土壤含水量中CK處理的馬鈴薯葉片氣孔器密度低。由此可見(jiàn),PRD灌溉處理的馬鈴薯葉片對(duì)于干旱環(huán)境的應(yīng)激反應(yīng)更加強(qiáng)烈,在同等干旱條件下,PRD灌溉培養(yǎng)的馬鈴薯會(huì)更大限度地通過(guò)關(guān)閉氣孔減少蒸騰作用來(lái)減弱與緩沖干旱傷害。即在同等干旱條件下,PRD灌溉馬鈴薯會(huì)更大限度通過(guò)關(guān)閉氣孔減少蒸騰作用來(lái)減弱與緩沖干旱傷害。
注:a.CK處理80%含水量;b.CK處理60%含水量;c.CK處理40%含水量;d.PRD處理80%含水量;e.PRD處理60%含水量;f.PRD處理40%含水量Note:a.80% moisture content in CK treatment;b.60% moisture content in CK treatment;c.40% moisture content in CK treatment;d.80% moisture content in PRD treatment;e.60% moisture content in PRD treatment;f.40% moisture content in PRD treatment 圖1 不同處理對(duì)植物氣孔器密度影響Fig.1 Effects of different treatments on the stomatal density of plant
由圖2可知,在80%含水量時(shí),PRD與CK處理的2種植物葉片氣孔的閉合程度差異不大,但隨著土壤含水量的降低,PRD灌溉處理的馬鈴薯葉片氣孔的閉合度顯著增加。在同等土壤含水量情況下,2種處理樣品中氣孔器的閉合程度差異明顯,其中PRD灌溉處理的馬鈴薯葉片氣孔器出現(xiàn)較明顯的閉合。由此可見(jiàn),PRD灌溉處理的馬鈴薯葉片對(duì)于干旱環(huán)境的應(yīng)激反應(yīng)更加強(qiáng)烈,因此在同等干旱條件下,PRD灌溉培養(yǎng)的馬鈴薯會(huì)更大限度地通過(guò)關(guān)閉氣孔減少蒸騰作用來(lái)減弱與緩沖干旱傷害。因此在同等干旱條件下,PRD灌溉培養(yǎng)的馬鈴薯會(huì)更大限度的通過(guò)關(guān)閉氣孔減少蒸騰作用來(lái)減弱與緩沖干旱傷害。
2.1.2不同灌溉處理及梯度土壤含水量下葉片細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)比較。由圖3可知,含水量80%時(shí)2種不同處理下馬鈴薯葉片各細(xì)胞器結(jié)構(gòu)清晰完整,葉肉細(xì)胞排列比較疏松,中央液泡膜完整且液泡充盈,細(xì)胞核、核膜清晰可見(jiàn)。線粒體以較為規(guī)則的形態(tài)少量清晰分布于細(xì)胞質(zhì)中,雙層被膜結(jié)構(gòu)完整,嵴清晰可見(jiàn)。
注:a.CK處理80%含水量;b.CK處理60%含水量;c.CK處理40%含水量;d.PRD處理80%含水量;e.PRD處理60%含水量;f.PRD處理40%含水量Note:a.80% moisture content in CK treatment;b.60% moisture content in CK treatment;c.40% moisture content in CK treatment;d.80% moisture content in PRD treatment;e.60% moisture content in PRD treatment;f.40% moisture content in PRD treatment 圖2 不同處理對(duì)植物氣孔器閉合程度的影響Fig.2 Effects of different treatments on the stomatal closure degree of plant
注:a.CK處理80%含水量;b.CK處理60%含水量;c.CK處理40%含水量;d.PRD處理80%含水量;e.PRD處理60%含水量;f.PRD處理40%含水量;Ch.葉綠體;CW.細(xì)胞壁;G1.基粒片層;M.線粒體;N.細(xì)胞核;S.淀粉粒;V.液泡Note:a.80% moisture content in CK treatment;b.60% moisture content in CK treatment;c.40% moisture content in CK treatment;d.80% moisture content in PRD treatment;e.60% moisture content in PRD treatment;f.40% moisture content in PRD treatment;Ch.Chloroplast;CW.Cell wall;G1.Grana lamella;M.Mitochondria;N.Nucleus;S.Starch grain;V.Vacuole 圖3 不同處理對(duì)植物細(xì)胞結(jié)構(gòu)的影響Fig.3 Effects of different treatments on the cell structure of plant
在試驗(yàn)初期含水量80%時(shí),2個(gè)處理下的馬鈴薯葉片基粒片層排列有序且緊密,同時(shí)可以清晰看到較厚的基粒片層平行于葉綠體的長(zhǎng)軸方向,對(duì)于植物光合作用十分有利。隨著土壤含水率的下降,干旱刺激加重迫使馬鈴薯葉片葉綠體內(nèi)的基粒片層膨脹溶解直至部分消融。此現(xiàn)象是葉片細(xì)胞嚴(yán)重受損、光合作用嚴(yán)重受阻的標(biāo)志與信號(hào)。由圖3可知,PRD處理下葉片細(xì)胞的受損程度低于CK處理。
由圖3可知,在含水量80%時(shí),片層清晰且有序排列、被膜和類(lèi)囊體結(jié)構(gòu)清晰的長(zhǎng)橢圓形葉綠體緊貼細(xì)胞壁;含水量60%時(shí)葉綠體結(jié)構(gòu)并未出現(xiàn)明顯異常變化,這是因?yàn)轳R鈴薯對(duì)于外界的干旱刺激有一定的自我調(diào)節(jié)能力。隨著土壤含水量的降低,葉綠體結(jié)構(gòu)受到不同程度的影響。含水量40%時(shí)葉綠體的超微結(jié)構(gòu)開(kāi)始變化,首先葉綠體基粒上的類(lèi)囊體發(fā)生膨脹,從而導(dǎo)致間質(zhì)片層的空間變大?;5呐帕胁辉俦3钟行?,趨于隨機(jī)的分布在葉綠體中。
含水量80%時(shí)2個(gè)處理對(duì)線粒體的影響較小,隨著土壤含水量的逐漸下降,部分線粒體的嵴開(kāi)始消融,線粒體腫脹,同時(shí)出現(xiàn)了葉綠體和線粒體部分彼此嵌合的現(xiàn)象。當(dāng)土壤含水量降低至40%時(shí),大部分線粒體已被膜結(jié)構(gòu)包圍直至降解消融。而另半邊含水量的處理也與之相同。但PRD處理比CK的損害小,復(fù)水后干旱脅迫對(duì)線粒體造成的損害并沒(méi)有恢復(fù)。
2.2不同灌溉處理對(duì)馬鈴薯抗氧化保護(hù)機(jī)制的影響當(dāng)植物體受到外界的干旱刺激時(shí),自身含氧自由基的生成和消融平衡會(huì)遭受到一定程度的破壞,對(duì)植物體造成損害。而抗氧化酶的存在可以促進(jìn)含氧自由基的消融,有助于維持含氧平衡。SOD是植物體內(nèi)重要的抗氧化酶中的一種,它的功效就是可以催化含氧自由基的消融反應(yīng)。植物體內(nèi)重要的抗氧化酶中還有POD,它與CAT均可以吸收和促進(jìn)消融植物體內(nèi)的H2O2,在干旱條件下有效保護(hù)了植物組織。然而,當(dāng)含氧自由基產(chǎn)生的量超出了植物體抗氧化酶的處理能力時(shí),含氧自由基過(guò)多積累會(huì)導(dǎo)致膜脂過(guò)氧化水平增高,這會(huì)使具有改變細(xì)胞膜功能的丙二醛(MDA)含量上升,導(dǎo)致細(xì)胞膜相對(duì)通透性變大,從而引起植物各種生理變化,對(duì)植物細(xì)胞造成傷害。
2.2.1不同灌溉處理對(duì)超氧化物歧化酶(SOD)活性的影響。SOD能夠消除新陳代謝過(guò)程中生物體產(chǎn)生的有害物質(zhì),它是生命體固有的活性物質(zhì)。SOD是植物處于逆境中最主要的一種抗氧化酶,防止超氧自由基對(duì)生物膜系統(tǒng)的氧化。它能夠清除預(yù)防植物細(xì)胞的老化的活性氧和超氧陰離子自由基。
由圖4可知,馬鈴薯在不同灌溉處理和不同時(shí)期SOD活性呈先逐漸上升后又逐漸下降,復(fù)水后逐漸上升的變化趨勢(shì)。第一個(gè)含水量周期,即含水量80%~40%時(shí)SOD活性呈先緩慢上升后逐漸下降的變化趨勢(shì),且在土壤含水量60%時(shí)SOD氧化酶活性達(dá)到最大。這說(shuō)明隨著土壤含水量降低誘導(dǎo)葉片組織中SOD氧化酶表達(dá),緩解由于干旱導(dǎo)致植株體內(nèi)超氧離子的傷害,土壤含水量在60%以后逐漸下降,各個(gè)處理SOD活性下降,由于干旱脅迫嚴(yán)重導(dǎo)致緩解氧化傷害的能力降低。在復(fù)水生長(zhǎng)過(guò)程中,又重新誘導(dǎo) SOD活性上升,抵御活性氧對(duì)植株膜系統(tǒng)再次產(chǎn)生的傷害。2個(gè)灌溉處理中,PRD處理誘導(dǎo)SOD活性均顯著高于CK處理,PRD處理對(duì)O2-清除能力較CK處理強(qiáng),說(shuō)明PRD處理誘導(dǎo)的SOD的抗氧化能力強(qiáng)于CK處理。
圖4 不同處理對(duì)馬鈴薯SOD的影響Fig.4 Effects of different treatments on the SOD of potato
2.2.2不同灌溉處理對(duì)過(guò)氧化物酶(POD)活性的影響。過(guò)氧化酶POD是植物體內(nèi)活性較高的一種氧化還原催化酶,它關(guān)系到植物體內(nèi)多種生命活動(dòng)作用,并直接影響著植物的生長(zhǎng)發(fā)育狀態(tài)。隨著植物體的逐漸成熟,POD在植物體內(nèi)的活性逐漸降低,因此POD活性劑含量狀態(tài)是可間接用于檢測(cè)植物體組織老化情況的一種指標(biāo)。
由圖5可知,PRD處理后的POD活性在各個(gè)時(shí)期均高于CK處理,且POD活性變化趨勢(shì)相同。第一輪(含水量80%~40%)2種灌溉處理誘導(dǎo)的POD活性呈先逐漸上升后逐漸下降的變化趨勢(shì),當(dāng)60%土壤含水量在POD活性達(dá)到最高值,之后隨著干旱程度的加重POD活性逐漸下降。第二輪隨著土壤含水量的逐漸降低POD活性也是呈先逐漸上升后逐漸下降的趨勢(shì),當(dāng)含水量60%時(shí)POD的活性也達(dá)到最高。特別是復(fù)水后誘導(dǎo)了POD活性逐漸上升,抵御了活性氧對(duì)植株膜系統(tǒng)產(chǎn)生的傷害。
圖5 不同處理對(duì)馬鈴薯POD的影響Fig.5 Effects of different treatments on the POD of potato
這說(shuō)明適度的干旱可誘導(dǎo)POD活性上升,土壤含水量過(guò)高或過(guò)度干旱都會(huì)導(dǎo)致POD活性降低;此外還發(fā)現(xiàn),與CK處理相比,經(jīng)過(guò)PRD處理后的植株體內(nèi)POD活性各時(shí)期均得到很大程度提高,說(shuō)明植株在經(jīng)過(guò)PRD誘導(dǎo)處理后會(huì)表現(xiàn)出更強(qiáng)的抗氧化能力。
2.2.3不同灌溉處理對(duì)過(guò)氧化氫酶(CAT)活性影響。過(guò)氧化氫酶(CAT)是一種酶類(lèi)清除劑,它作為一種催化劑可在反應(yīng)中促使H2O2的歧化分解,避免植物體內(nèi)含氧自由基含量過(guò)高,對(duì)植物體造成損害。過(guò)氧化氫酶是催化過(guò)氧化氫分解成氧和水的酶,存在于細(xì)胞的過(guò)氧化物酶體內(nèi)。
由圖6可以看出,PRD處理后CAT活性在各個(gè)時(shí)期均高于CK處理,且CAT活性變化趨勢(shì)相同。馬鈴薯植株在第一輪含水量處理中,即含水量80%~40%時(shí),PRD和CK 2個(gè)灌溉處理中CAT活性變化總體呈先上升后下降的趨勢(shì),第二輪含水量處理中也同樣;植株復(fù)水后,呈上升的變化趨勢(shì)。因此,在馬鈴薯生長(zhǎng)控水期間,適度干旱可誘導(dǎo)CAT活性升高,PRD處理能增強(qiáng)馬鈴薯CAT抗氧化活性,提高馬鈴薯植株對(duì)過(guò)氧化氫的清除能力,更有利于抵御過(guò)氧化氫積累對(duì)馬鈴薯植株造成的氧化傷害。
圖6 不同處理對(duì)馬鈴薯CAT的影響Fig.6 Effects of different treatments on the CAT of potato
2.2.4不同灌溉處理對(duì)丙二醛(MDA)活性影響。丙二醛含量是植物體過(guò)氧化程度的重要評(píng)價(jià)指標(biāo)之一。丙二醛是植物體過(guò)氧化反應(yīng)的產(chǎn)物,因此當(dāng)植物體過(guò)氧化程度較高時(shí),丙二醛增加導(dǎo)致植物體內(nèi)受損嚴(yán)重。植物體在逆境條件下易因細(xì)胞、組織、器官膜等過(guò)氧化嚴(yán)重受損而產(chǎn)生丙二醛。
從圖7可以看出,隨著土壤含水量下降,導(dǎo)致植株干旱程度逐漸加重,馬鈴薯植株MDA活性逐漸上升,植株復(fù)水后,干旱情況得到緩解,MDA活性又下降。在分根交替灌溉和對(duì)照2個(gè)灌溉處理中,不同土壤含水量時(shí)期PRD處理誘導(dǎo)的MDA活性均低于CK處理。
在不同的灌溉處理下,PRD和CK處理的丙二醛含量變化趨勢(shì)是逐漸上升,即隨著土壤含水量降低,植物受到活性氧傷害更加明顯。由于PRD處理誘導(dǎo)的抗氧化酶活性增強(qiáng),因而降低了丙二醛對(duì)植株的傷害。
2.3不同灌溉處理對(duì)馬鈴薯產(chǎn)量的影響從圖8可以看出,在2種灌溉處理中,PRD處理產(chǎn)量高于CK處理,但是兩者差異并不顯著。該試驗(yàn)結(jié)果表明,在植株生長(zhǎng)前期PRD處理使植株受到輕度的水分虧缺,從而可提高產(chǎn)量,原因是植株適度的水分虧缺誘導(dǎo)體內(nèi)生化反應(yīng),復(fù)水后獲得補(bǔ)償生長(zhǎng)效應(yīng),故分根交替灌溉有利于提高馬鈴薯產(chǎn)量。
圖7 不同處理對(duì)馬鈴薯MDA的影響Fig.7 Effects of different treatments on the MDA of potato
圖8 不同處理對(duì)產(chǎn)量的影響比較Fig.8 Effects of different treatments on the yield
目前,不同植物的葉綠體、線粒體等超微結(jié)構(gòu)在干旱等復(fù)雜環(huán)境下的變化,以及對(duì)外界刺激產(chǎn)生的自身調(diào)節(jié)生理機(jī)制得到了廣泛研究。研究人員發(fā)現(xiàn)在干旱刺激下,葉片內(nèi)較多的膜狀結(jié)構(gòu)會(huì)生成,較多的泡狀結(jié)構(gòu)填充在葉肉細(xì)胞中會(huì)代替葉綠體、線粒體等原有細(xì)胞器,導(dǎo)致液泡以及內(nèi)膜系統(tǒng)降解葉肉細(xì)胞器,降低作物抗旱能力[15-20]。有研究表明,干旱刺激下葉肉細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)變化與抗旱性呈正相關(guān),但關(guān)于分根交替灌溉馬鈴薯葉片及葉綠體超微結(jié)構(gòu)變化與抗旱性關(guān)系至今仍鮮見(jiàn)報(bào)道。
該研究分根交替灌溉影響馬鈴薯植株的細(xì)胞指標(biāo),主要體現(xiàn)在對(duì)于植株葉片氣孔器、葉綠體、線粒體形態(tài)的影響,在同等土壤含水量中氣孔器密度較CK處理低,隨著土壤含水量降低,氣孔器出現(xiàn)明顯閉合,PRD處理葉片細(xì)胞中葉綠體和線粒體的受損程度均低于CK處理,使馬鈴薯植株具有更好的抗旱性,并因此鍛煉?cǎi)R鈴薯對(duì)于干旱刺激的應(yīng)激反應(yīng)程度,提高馬鈴薯的抗旱能力。
根據(jù)Mehdy[21]提出的生物自由基傷害學(xué)說(shuō),當(dāng)植物處于某種(如干旱)逆境條件下,植物細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生活性氧自由基和清除代謝的平衡遭受破壞,使產(chǎn)生活性氧自由基的能力增強(qiáng),進(jìn)而加劇細(xì)胞的膜脂過(guò)氧化,給植物造成一定傷害[22-23]。同時(shí)植物在遭受干旱脅迫時(shí),可以通過(guò)提高抗氧化酶活性來(lái)有效地防御和清除自由基保護(hù)細(xì)胞免受氧化傷害。該研究通過(guò)不同灌溉處理對(duì)抗氧化酶活性分析結(jié)果看出,隨著土壤含水量的降低,葉片SOD、CAT和POD和MDA活性均是前期逐漸上升后期逐漸下降,其中PRD處理各項(xiàng)抗氧化酶活性均較CK處理高,MDA和活性氧的活性較對(duì)照處理低。這也證實(shí)前人的研究成果,即在水分脅迫強(qiáng)度比較輕、水分虧缺速度比較慢的情況下,馬鈴薯葉片中誘導(dǎo)抗氧化酶POD、SOD、CAT活性都是上升趨勢(shì),隨著土壤水分脅迫逐漸加重,植株體內(nèi)誘導(dǎo)抗氧化酶類(lèi)POD、SOD和CAT活性下降,而MDA和活性氧等活性增強(qiáng)[24-27],這與該試驗(yàn)的結(jié)論一致。
綜上所述,分根交替灌溉可以提高馬鈴薯抗旱能力。氣孔器密度PRD處理較同等土壤含水量中CK處理低。隨著土壤含水量的降低,馬鈴薯葉片氣孔器出現(xiàn)明顯閉合現(xiàn)象,PRD處理的葉片細(xì)胞中葉綠體和線粒體的受損程度均低于CK處理,從而更好保證了植株細(xì)胞器的功能,使馬鈴薯植株具有更好的抗旱性。分根交替灌溉能夠增強(qiáng)馬鈴薯植株的抗氧化性。馬鈴薯植株受到不同程度干旱脅迫時(shí),隨著土壤含水量的降低,PRD處理的SOD、POD、CAT誘導(dǎo)活性均顯著高于CK處理,即PRD處理對(duì)O2-、 H2O2清除能力強(qiáng),更能抵御O2-、H2O2的積累對(duì)馬鈴薯植株造成的氧化傷害。同時(shí),隨著土壤含水量的降低,PRD處理誘導(dǎo)MDA活性均低于CK處理,說(shuō)明植物受到活性氧毒害作用逐漸增強(qiáng),PRD處理由于增強(qiáng)了抗氧化酶的活性,從而減少了丙二醛的積累。分根交替灌溉可在用水量降低的情況下保證馬鈴薯產(chǎn)量。馬鈴薯植株對(duì)干旱缺水反應(yīng)敏感,PRD處理存在著補(bǔ)償生長(zhǎng)效應(yīng),PRD處理對(duì)馬鈴薯植株生長(zhǎng)起促進(jìn)作用。在植株生長(zhǎng)前期PRD處理中,輕度的水分虧缺可提高產(chǎn)量,在同一生長(zhǎng)期高于CK處理,PRD處理適當(dāng)?shù)乃痔澣笨梢源龠M(jìn)馬鈴薯葉片的生長(zhǎng),在復(fù)水處理獲得了一定補(bǔ)償生長(zhǎng)效應(yīng),加強(qiáng)了生理活性和干物質(zhì)累積,因此適度水分虧缺后及時(shí)復(fù)水可使作物獲得補(bǔ)償生長(zhǎng)效應(yīng),提高產(chǎn)量。
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