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        下調(diào)EZH 2基因對胃癌細胞株SGC7901增殖作用的影響

        2018-06-13 02:17:36萬倩鄧野李弦王丹楊繼元
        癌癥進展 2018年5期
        關鍵詞:空白對照試劑盒陰性

        萬倩,鄧野,李弦,王丹,楊繼元#

        1長江大學附屬第一醫(yī)院腫瘤科,湖北 荊州434000

        2荊州市第一人民醫(yī)院中心實驗室,湖北 荊州434000

        胃癌是常見的惡性腫瘤,在中國發(fā)病率居惡性腫瘤的第3位[1]。中國胃癌防治的現(xiàn)狀是“一高三低”:發(fā)病、病死率高,早期診斷率低,手術根治率低,5年生存率低。盡管近年來胃癌的病死率有所下降,但仍嚴重威脅著人類的生命健康。中國胃癌患者往往因非特異性的消化道癥狀導致早期就診率低,大多數(shù)患者確診時已是晚期,錯過最佳手術時機,因此在基因層面研究在胃癌發(fā)生、發(fā)展、增殖中起調(diào)控作用的基因是必要的。zeste基因增強子同源物 2(enhancer of zeste homolog 2,EZH2)是PcG基因家族中PRC2復合物的催化活性亞單位,與果蠅基因同源,它定位于人染色體7q35位置上[2],通過催化組蛋白H3第27位賴氨酸三甲基化(H3K27m3)參與表觀遺傳學和基因表達的調(diào)控[3]。多項研究顯示,EZH2基因在許多腫瘤中都存在著過表達,并與腫瘤的生物學行為有關,如胃癌[4]、乳腺癌[5]等。這使其可能成為一個重要的早期診斷、評價預后的分子指標,更有可能成為腫瘤的靶向治療的新靶點。本研究以靶向干擾下調(diào)EZH2基因的表達后,觀察EZH2基因對胃癌細胞發(fā)生、發(fā)展、增殖調(diào)控的影響。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        SGC7901細胞、RPMⅠ1640培養(yǎng)基、含乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid,EDTA)胰蛋白酶、青霉素-鏈霉素均購自武漢普諾賽生命科技有限公司;胎牛血清購自四季青公司;磷酸鹽緩沖液(PBS)由荊州市第一人民醫(yī)院中心實驗室保存;Lipo6000TM轉染試劑、二甲基亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)、RⅠPA裂解液、BCA蛋白濃度測定試劑盒、CCK-8試劑盒、焦碳酸乙二酯(diethyl pyrocarbonate,DEPC)、Tween-20、SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液、Beyo ECLPlus化學發(fā)光檢測試劑、十二烷基磺酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)、四甲基乙二胺(tetramethylethylenediamine,TEMED)、Tris-HCL、過硫酸銨(ammonium persulfate,AP)、苯甲磺酰氟(phenylmethylsulfonylfluoride,PMSF)、30%Acr-Bis、RNAeasy?動物總RNA抽提試劑盒(離心柱式)、聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride,PVDF)、BeyoFast SYBR Green qPCR Mix、cDNA第一鏈合成試劑盒、蛋白分子量標準品、增強型CCK-8試劑盒均購自碧云天生物技術公司;三羥甲基氨基甲烷[Tris(hydroxymethyl)aminomethane,Tris]、甘氨酸、異丙醇購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;EZH2siRNA、EZH2引物、GAPDH引物均由百奧邁科生物技術公司合成,詳見表1;兔抗人EZH2多克隆抗體、HRP標記的羊抗兔多克隆抗體購自美國GeneTex公司,兔抗β-actin多克隆抗體、抗體稀釋液購自武漢安特捷生物技術有限公司。

        表1 EZH 2干擾RNA序列片段

        1.2 實驗方法

        1.2.1 細胞培養(yǎng) 將SGC7901細胞接種在有RPMⅠ1640培養(yǎng)基(含有10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素雙抗)的培養(yǎng)瓶中,于37℃、5%CO2恒溫飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2~3 d后,倒置顯微鏡下觀察細胞呈致密單層后,用0.25%胰蛋白酶消化傳代。

        1.2.2 細胞轉染 根據(jù)Genebank提供的EZH2基因序列(ⅠD:2146),使用在線設計軟件,通過基因序列比對,合成3條特異性EZH2siRNA。取對數(shù)生長期胃癌SGC7901細胞,以每孔1×105個接種于六孔板中,當細胞匯合率達到55%~65%時按照Lipo6000TM轉染試劑說明書進行轉染步驟對上述3對EZH2siRNA片段(EZH2siRNA-1、EZH2siRNA-2、EZH2siRNA-3)進行轉染,同時設立陰性對照組(轉染非特異性siRNA片段)和空白對照組(不轉染siRNA片段)。每孔siRNA為100 pmol,Lipo6000TM轉染試劑用量為5 μl,轉染后置入培養(yǎng)箱,6 h后換液,繼續(xù)培養(yǎng)24~72 h后收集細胞。

        1.2.3 細胞總RNA的抽提及qRT-PCR檢測 將轉染后48 h的各組細胞按照RNA抽提試劑盒和逆轉錄試劑盒說明書進行RNA的抽提和逆轉錄。紫外分光光度計檢測RNA的純度和濃度(OD260/OD280),置于-80℃冰箱保存。將總RNA逆轉錄為cDNA,以各組cDNA為模板對EZH2基因和內(nèi)參GAPDH進行實時熒光定量PCR反應,優(yōu)化實時定量多聚酶鏈式反應(real-time quantitative polymerase chain reaction,qRT-PCR)反應體系及條件,qRT-PCR反應體 系 為 20 μl,其 中 Beyo Fast SYBR Green qPCR Mix 10 μl、上下游引物各 0.5 μl、模板 2 μl、滅菌水7.2 μl,反應條件為95 ℃預變性5 min,95 ℃ 15 s,56℃15 s,72℃15 s,40個循環(huán)擴增后進行高分辨溶解曲線,每組設3個復孔。EZH2引物序列上游:5'-GCCAGACTGGGAAGAAATCTG-3',下 游 :5'-TGTGTTGGAAAATCCAAGTCA-3'。GAPDH上游:5'-GAAGGTGAAGGTCGGAGT-3',下游:5'-GAAGATGGTGATGGGATTTC-3'。實驗結果采用 2-△△Ct法計算各組EZH2mRNA表達水平的相對值,選取干擾效果最好的EZH2siRNA片段進行后續(xù)實驗。

        1.2.4 蛋白質(zhì)印跡法 取EZH2siRNA組、陰性對照組和空白對照組共3種細胞,將細胞用RⅠPA裂解液和PMSF處理,冰上孵育30 min,4℃12 000 rpm離心15 min,得上清蛋白。用BCA蛋白濃度測定試劑盒檢測蛋白濃度。根據(jù)蛋白大小灌制10%分離膠和5%濃縮膠,每泳道上樣20 μl,電泳后濕轉法至PVDF膜,根據(jù)蛋白大小將膜剪開,用含5%脫脂奶粉的TBST液(封閉液)封閉PVDF膜,室溫搖床封閉1 h后,將PVDF膜浸在一抗兔抗人EZH2多克隆抗體(1∶1000)中4℃孵育過夜,對照孵育一抗兔抗β-actin多克隆抗體(1∶5000),TBST 洗滌PVDF膜3次,每次10 min,再將PVDF膜浸在用封閉液稀釋的HRP標記的羊抗兔二抗(1∶5000)中,室溫搖床孵育1 h后用TBST洗膜3次,每次10 min,通過增強型化學熒光顯色(enhanced chemiluminescence,ECL)法進行顯影。

        1.2.5 CCK- 8法檢測細胞增殖能力 將傳代4~6代的細胞用0.25%胰蛋白酶消化后計數(shù),按每孔加入100 μl 2000個細胞的濃度接種96孔板,置37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)18 h。更新培養(yǎng)基后培養(yǎng)2 h,設置空白對照組(有細胞培養(yǎng)液和CCK-8溶液而無細胞)、陰性對照組(有細胞和CCK-8溶液而未轉染混合物)、siRNA組(有細胞、CCK-8溶液及轉染混合物),每組設3個復孔,分別于轉染后24、48、72、96 h每孔加入CCK-8溶液10 μl,在細胞培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)孵育1 h,酶標儀檢測450 nm處吸光度OD值。每組細胞測3個孔,取平均值,繪制細胞生長曲線。所有實驗均重復3次。

        1.3 統(tǒng)計學方法

        采用SPSS 18.0統(tǒng)-計軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,采用t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 轉染后EZH 2 mRNA的表達水平

        胃癌細胞SGC7901轉染EZH2siRNA后,經(jīng)實時熒光定量PCR儀檢測EZH2mRNA的表達,結果顯示,以空白對照組為內(nèi)參,siRNA-1組、siRNA-2組、siRNA-3組EZH2mRNA的相對表達量分別為(0.41±0.19)、(0.22±0.15)、(0.47±0.28),均低于陰性對照組的(1.11±0.38),差異均有統(tǒng)計學意義(P=0.008、0.002、0.011),其中siRNA-2組EZH2mRNA相對表達量最低,即EZH2siRNA-2組干擾效果最強,用于后續(xù)實驗。陰性對照組與空白對照組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P=0.458)。(圖1)

        圖1 各組胃癌SGC7901細胞轉染siRNA后EZH 2 mRNA的相對表達量

        2.2 轉染后EZH 2蛋白表達水平

        SGC7901胃癌細胞轉染最佳干擾RNA片段后,經(jīng)Western blot法檢測EZH2蛋白相對表達量,結果顯示,空白對照組、陰性對照組和siRNA干擾組的EZH2蛋白相對表達量分別為(0.362±0.026)、(0.398±0.036)、(0.036±0.017),3組比較,差異有統(tǒng)計學意義(F=157.745,P<0.01)。(圖2)

        圖2 胃癌SGC7901細胞轉染后EZH 2蛋白表達水平

        2.3 下調(diào)EZH 2基因對胃癌細胞SGC7901增殖的影響

        采用CCK-8法檢測下調(diào)EZH2表達后SGC7901細胞的增殖能力。相比于空白對照組和陰性對照組,siRNA組SGC7901細胞的增殖能力減弱,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。(表2、圖3)

        表2 SGC7901細胞轉染siRNA后隨時間變化的細胞增殖力(OD450,±s)

        表2 SGC7901細胞轉染siRNA后隨時間變化的細胞增殖力(OD450,±s)

        組別空白對照組陰性對照組siRNA組24 h 0.22±0.13 0.25±0.15 0.18±0.08 48 h 0.39±0.19 0.35±0.13 0.20±0.09 72 h 0.42±0.23 0.40±0.26 0.21±0.14 96 h 0.65±0.32 0.63±0.35 0.39±0.14

        圖3 SGC7901細胞轉染EZH 2 siRNA后的細胞增殖能力

        3 討論

        胃癌進展是多因素、多階段及多基因變異的綜合病變過程,主要是由端粒酶激活、抑癌基因失活和癌基因激活等引發(fā)[6]。Chen等[7]研究顯示胃癌組織中的EZH2陽性表達率為56.6%,且與腫瘤體積、浸潤層次、淋巴結轉移、血行轉移及臨床惡性程度呈正相關,表明EZH2基因在胃癌的發(fā)生發(fā)展中有重要作用。另外,He等[8]對117例胃癌組織及其相應的正常組織中EZH2蛋白的水平進行了分析,結果顯示:在70.1%的胃癌組織中,EZH2的表達陽性,而正常的胃黏膜上皮細胞中,只有5.4%是EZH2表達陽性,且EZH2高表達患者的平均總生存期(25.2個月)和無病生存期(20.2個月)均短于EZH2低表達的患者(40.5、35.9個月)。該結果說明EZH2可作為胃癌患者預后效果的預測和評估指標。

        有研究表明,EZH2表達下調(diào)抑制細胞增殖是通過Wnt/β-catenin通路來實現(xiàn)的,在人腎癌ACHN細胞中下調(diào)EZH2基因表達抑制細胞增殖和侵襲的同時Wnt3a和β-catenin蛋白的表達也下調(diào),相反Wnt/β-catenin通路阻滯藥糖原合成酶激酶-3β(GSK-3β)的表達會顯著提高[9],但在胃癌中的研究甚少。

        本研究著重從細胞層面探討了EZH2對胃癌細胞系SGC7901的細胞增殖調(diào)控作用。通過對細胞進行siRNA轉染,以實現(xiàn)對細胞的EZH2基因沉默,并通過熒光定量PCR以及蛋白質(zhì)印跡實驗,證實了EZH2的基因下調(diào)。在此基礎上,siRNA組的SGC7901細胞,其增殖能力較對照組下降,這也與以往的研究結果一致[9-12]。上述實驗證據(jù)說明,EZH2的基因下調(diào)抑制了SGC7901胃癌細胞系的細胞增殖,EZH2基因在胃癌的發(fā)生發(fā)展中有著重要意義,為胃癌基因治療提供一定的理論基礎,但其作用通路及機制還有待進一步研究。

        [1]陳萬青,鄭榮壽,張思維,等.2012年中國惡性腫瘤發(fā)病和死亡分析[J].中國腫瘤,2016,25(1):1-10.

        [2]Hillier LW,Fulton RS,Fulton LA,et al.The DNA sequence of human chromosome 7[J].Nature,2003,424(6945):157-164.

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        [12]Jiang T,Wang Y,Zhou F,et al.Prognostic value of high EZH2 expression in patients with different types of cancer:a systematic review with meta-analysis[J].Oncotarget,2016,7(4):4584-4597.

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