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        基于BSA法開發(fā)CAPS標(biāo)記定位甜瓜果面溝相關(guān)基因研究

        2018-06-11 02:24:10王學(xué)征陳克農(nóng)
        關(guān)鍵詞:裂果甜瓜染色體

        王學(xué)征,邱 果,陳克農(nóng),孫 慧,白 銀

        (1.農(nóng)業(yè)部東北地區(qū)園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點實驗室,哈爾濱 150030;2.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,哈爾濱 150030)

        甜瓜(Cucumis melon.L)是葫蘆科黃瓜屬甜瓜亞屬一年生草本植物,種質(zhì)資源與變異類型豐富。目前,甜瓜果實性狀、葉片性狀、抗病性狀等重要農(nóng)藝學(xué)性狀已有相關(guān)性分析與基因定位。

        甜瓜果皮相關(guān)性狀中,Obando等利用近等基因系與親本比較發(fā)現(xiàn),控制果皮顏色QTL數(shù)量至少為13個[1]。楊光華等以黃綠皮、白肉、無覆紋自交系K1-7為母本,黃皮、橘紅肉、無覆紋自交系K3-92-1為父本雜交,構(gòu)建F2代群體,采用復(fù)用鳥槍基因分型法(Multiplexed shotgun genotyping,MSG)對F2群體作基因分型,將果皮底色基因定位在4號染色體,在相同區(qū)域定位到一個與果皮覆紋有關(guān)基因[2]。周慧文以厚皮甜瓜品系M4-5為母本,薄皮M1-15為父本,構(gòu)建F1和F2代群體,推測甜瓜外果皮類型性狀為質(zhì)量性狀[3]。外果皮厚度分離存在超親遺傳現(xiàn)象,該性狀為數(shù)量性狀,將兩個控制甜瓜果皮厚度QTL位點分別定位在第7和第11連鎖群。在甜瓜果肉相關(guān)性狀研究中,Monforte等通過F2代群體與雙單倍體群體作QTL分析,將控制甜瓜綠色果肉基因定位在第1號連鎖群,推測該基因與之前所記載gf基因吻合,控制橘紅色果肉基因被定位在第2號連鎖群和第12號連鎖群上,推測控制該性狀基因可能更復(fù)雜,需更大群體精細定位[4]。Cuevas等以甜瓜近等基因系群體為材料,初步定位到8個控制β-胡蘿卜素QTL位點,分布在4條連鎖群體上,解釋該性狀存在表型變異,發(fā)現(xiàn)控制甜瓜橘紅果肉和白色果肉位點位于第9連鎖群中部,該位點呼應(yīng)雙基因假說中wf基因[5]。Paris等在第2連鎖群上定位甜瓜果肉厚度QTL位點,在CU160(10 cM)與OPAL9_750(34 cM)之間[6]。欒非時等以厚皮甜瓜M4-5為母本,M1-15為父本,雜交獲得F1、F2代群體,定位到7個與果型指數(shù)相關(guān)QTL位點,分別位于第1連鎖群、第2連鎖群、第4連鎖群(2個)、第7連鎖群、第9連鎖群和第10連鎖群,采用不同試驗群體研究性狀,同樣定位7個與果型指數(shù)相關(guān)QTL位點,并在第6連鎖群上獲得一個距離最小QTL位點[7-8]。甜瓜果實是否存在果面溝是甜瓜果皮類型呈現(xiàn)多樣性因素之一。果面溝影響甜瓜果皮結(jié)構(gòu)、物質(zhì)積累、果實受力及甜瓜果實裂果。保證成熟甜瓜果實完整無損、無裂果,有利于甜瓜運輸與貯藏,也是甜瓜遺傳育種研究重點。因此,開展甜瓜果面溝性狀遺傳規(guī)律及相關(guān)基因定位研究,對甜瓜種質(zhì)資源改良和加快分子育種進程具有重要意義。

        現(xiàn)有測序方法難以準確檢測生命體完整遺傳信息,在分子遺傳育種中遺傳標(biāo)記被廣泛應(yīng)用,CAPS標(biāo)記又稱酶切擴增多態(tài)性序列標(biāo)記,廣泛用于基因分型、定位、克隆和分子鑒定,該方法兼顧共顯性和位點特異性,且操作簡便,成本低廉[9]。CAPS主要對PCR擴增DNA片段限制性酶切分析,基于EST或已發(fā)表基因序列設(shè)計特異性引物,將特異性PCR與限制性酶切結(jié)合檢測多態(tài)性[10]?;驹硎抢靡阎稽cDNA序列設(shè)計一系列特異性PCR產(chǎn)物(19~27 bp),擴增該位點某一DNA片段,再用限制性內(nèi)切酶切割擴增產(chǎn)物,利用凝膠電泳分離酶切片段,染色并RFLP分析。CAPS具有簡潔解釋個體多態(tài)性、可區(qū)分純合基因型和雜合基因型、對所需DNA要求不高、擴增結(jié)果穩(wěn)定、自動化程度高等優(yōu)點[11]。

        群體分離分析法(Bulked segregant analysis)即BSA法,是快速定位與目標(biāo)基因連鎖分子標(biāo)記有效方法。原理是在F2代群體挑選兩組性狀極端值,建DNA混池,計算每個SNP位點SNP-index,將兩個SNP-index作差計算ΔSNP-index,ΔSNP-index中顯著偏離0位點為候選位點。BSA定位目標(biāo)基因方法已廣泛應(yīng)用于作物育種,張云輝等用BSA法在第11號染色體上定位到2個與水稻條紋葉枯病抗性有明顯關(guān)系的SSR分子標(biāo)記[12]。李曉娜利用SSR分子標(biāo)記結(jié)合BSA法在第3條染色體上定位到一個控制玉米雄穗穗頸長主效基因位點[13]。

        本試驗以無果面溝甜瓜品系M4-5為母本,有果面溝甜瓜品系M1-15為父本,通過雜交、回交以及自交獲得 P1、P2、F1、F2、BC1P1、BC1P2六世代群體,分析果面溝遺傳規(guī)律,并與裂果性狀作相關(guān)性分析。在F2代群體內(nèi)挑選有果面溝和無果面溝兩個極端性狀群體,BSA法確定控制該性狀基因所在區(qū)域,再將該區(qū)域SNP位點轉(zhuǎn)化為CAPS位點構(gòu)建遺傳圖譜并定位目標(biāo)基因,為進一步開展甜瓜果面溝性狀基因克隆及種質(zhì)資源創(chuàng)新提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 田間試驗材料

        本試驗選用厚皮甜瓜M4-5為母本材料,又稱伊麗莎白瓜,隸屬短毛甜瓜亞種,雄花兩性花同株,中早熟品系,果皮黃色,光滑,無果面溝,果肉厚。選用薄皮甜瓜品系M1-15作為父本材料,隸屬短毛甜瓜亞種,雄花兩性花同株,早熟品系,果皮綠色,有果面溝,果肉薄。以上試驗材料均由東北農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院西甜瓜分子育種實驗室提供。利用雙親雜交配制六世代群體。

        1.2 田間試驗設(shè)計

        2016年5~9月,在東北農(nóng)業(yè)大學(xué)向陽實驗實習(xí)基地大棚播種父母本、F1群體、BC1P1群體、BC1P2群體及 F2代群體。P1、P2、F1、BC1P1、BC1P2采用完全隨即區(qū)組設(shè)計,各種植30株,每小區(qū)10株,3次重復(fù),F(xiàn)2隨機種植300株(保苗285株,實際收獲282株)。2017年5~9月,在東北農(nóng)業(yè)大學(xué)向陽實驗實習(xí)基地大棚種植100株甜瓜自然群體。待果實成熟后收獲所有群體果實,統(tǒng)計果面溝性狀。田間管理采用埋土施肥、滴灌、雙蔓整枝。田間布局如圖1所示。

        圖1 田間布局Fig.1 Distribution in plastic greenhouse

        1.3 果實性狀調(diào)查方法

        沿果實中軸橫切,觀察果肉外圍是否凹陷,判斷是否存在果面溝。觀察是否裂果。

        1.4 分子標(biāo)記試驗內(nèi)容與方法

        1.4.1 分子試驗材料

        選用M4-5和M1-15雜交、自交、回交產(chǎn)生六世代群體及甜瓜自然群體,采集幼嫩葉片,提取DNA備用。

        1.4.2 DNA提取

        采用改良CTAB法[14]提取雙親材料M4-5和M1-15、 F1、 BC1P1、 BC1P2、 F2群 體 和 甜 瓜 自 然 群 體DNA。提取過程中應(yīng)用氯仿異戊醇溶液(24∶1)抽提3次,避免移液過程中槍頭吸取蛋白質(zhì)。

        1.4.3 BSA法定位基因位點

        在F2代群體中,各選出有果面溝和無果面溝20個果實組成兩個池,將對應(yīng)植株DNA稀釋到華大基因所需濃度,自行混合成DNA池,華大基因作BSA定位。

        1.4.4 CAPS分子標(biāo)記開發(fā)

        根據(jù)BSA結(jié)果圖上顯示基因位置,確定目標(biāo)染色體。在該染色體上,參照已公布甜瓜基因組數(shù)據(jù),利用東北農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院西甜瓜分子育種實驗室自編Perl腳本選取SNP位點前后大約500 bp堿基序列,通過SNP2CAPS軟件獲得酶切位點處有差異候選序列,將SNP位點轉(zhuǎn)化為CAPS標(biāo)記。將目標(biāo)染色體平均分成15等份,在每等份相同或相似位置上挑選CAPS位點,引物命名方式為:M+染色體序號+引物序號。CAPS分子標(biāo)記加密時同樣使用此方法,初定位兩個標(biāo)記間設(shè)計引物。

        1.4.5 CAPS標(biāo)記篩選與驗證

        采用降落式PCR反應(yīng)對引物作PCR擴增,擴增體系為1 μL模板DNA 、0.1 μL Taq酶,、正反向引物各 0.5 μL、0.5 μL dNTP Mix、1 μL 10×PCR Buffer(緩沖液)和6.75 μL雙蒸水。PCR擴增程序為:94℃預(yù)變性7 min、94℃變性1 min、60℃復(fù)性30 s、每個循環(huán)降低0.5℃、72℃延伸90 s、30個循環(huán)、72℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測合格后,利用4種限制性核酸內(nèi)切酶 Eco R I、Hind III、Bam H I、Pst I,分別對相應(yīng)PCR產(chǎn)物酶切驗證,體系為:5 μL PCR產(chǎn)物、0.3 μL限制性內(nèi)切酶(濃度為10 U·mL-1)、1.5 mol·L-1Tango buffer(酶對應(yīng)緩沖液)、8.2 μL 雙蒸水,酶切反應(yīng)置于37℃恒溫水浴鍋或37℃恒溫箱中,確保酶切反應(yīng)高效運行。酶切產(chǎn)物1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

        1.5 遺傳連鎖圖譜構(gòu)建

        利用QTL IciMapping對具有多態(tài)性且應(yīng)用于F2代群體基因分型的分子標(biāo)記繪制遺傳連鎖圖譜,依據(jù)CAPS標(biāo)記在染色體上編號及與連鎖群對應(yīng)關(guān)系,將連鎖群命名為Chromosome+染色體序號。

        1.6 目的基因定位方法

        Microsoft?Excel 2007統(tǒng)計果面溝性狀田間調(diào)查數(shù)據(jù),SPSS 19.0軟件作相關(guān)性分析,QTL IciMapping軟件將其與分子數(shù)據(jù)相合對F2群體定位,采用復(fù)合區(qū)間作圖法,以1.0 cM為步移單位在全基因組范圍內(nèi)掃描。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 甜瓜果面溝性狀遺傳分析

        母本M4-5田間表型均無果面溝,父本M1-15田間表型均有果面溝,F(xiàn)1代田間表型表現(xiàn)為均有果面溝,F(xiàn)2代群體產(chǎn)生性狀分離,共種植300株F2代群體,由于環(huán)境原因,共收獲282株甜瓜,其中有果面溝∶無果面溝比例為213∶69,基本符合3∶1遺傳規(guī)律,BC1P1共收獲30株果實,其中有果面溝∶無果面溝為18∶12,BC1P2共收獲30株果實,所有果實表現(xiàn)均為有果面溝??梢酝茢?,甜瓜果實果面溝性狀為顯性遺傳,受一對基因調(diào)控。

        2.2 甜瓜果面溝性狀與裂果相關(guān)性分析

        甜瓜母本M4-5為易裂果,父本M1-15為不易裂果甚至不裂果,在F1代表型中,大多果實不裂果,極小部分果實呈輕微裂果狀,在F2群體中,不裂果與裂果數(shù)量比為206∶76,比值為2.7,趨于3∶1。因裂果受外界因素影響嚴重,無法判定該性狀遺傳規(guī)律。通過觀測F2代果實,發(fā)現(xiàn)其他變量相同或相似時,有果面溝甜瓜多為不裂果,無果面溝甜瓜多為裂果。利用SPSS 19.0軟件對果面溝與裂果性狀作相關(guān)性分析,結(jié)果如表1所示,果面溝與裂果呈極顯著負相關(guān)。

        表1 果面溝與裂果相關(guān)性分析Table 1 Correlation analysis of surface groove and dehiscent fruit

        2.3 甜瓜遺傳連鎖圖譜構(gòu)建

        2.3.1 甜瓜試驗材料DNA提取

        利用改良CTAB法提取甜瓜基因組DNA,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,電泳結(jié)果見圖2。經(jīng)檢測,雙親材料、F1、F2、BC1P1、BC1P2、自然群體(Natural population)DNA濃度和純度均可用于分子標(biāo)記檢測,基本不含有RNA和蛋白質(zhì),極少量雜質(zhì)對分子標(biāo)記檢測無影響。

        2.3.2 BSA法定位結(jié)果

        將有果面溝和無果面溝兩個性狀DNA混池送華大基因測序,獲得一張BSA初定位結(jié)果圖(見圖3)。結(jié)果顯示,第6號和第11號染色體具有明顯波動峰值。推斷控制果面溝基因位點可能存在于第6號或第11號染色體上。相比于第6號染色體,第11號染色體定位范圍更小,峰值波動更大,目標(biāo)基因在第11號染色體上存在可能性更大。

        2.3.3 CAPS引物篩選與驗證

        根據(jù)雙親基因組重測序結(jié)果,第6號和第11號染色體各設(shè)計30對CAPS引物(將染色體基因組長度均分為15段,在每段切割位點或其近似地方各設(shè)計2對引物),用雙親及F1單株DNA對其作PCR反應(yīng)和酶切驗證。其中第6號染色體具有多態(tài)性引物24對(每段分割點及其相似位置處均保證有一個多態(tài)性引物),多態(tài)率為80%,第11號染色體具有多態(tài)性引物28對,多態(tài)率達93.3%,在上述結(jié)果中等區(qū)段分割處選出存在多態(tài)性引物15對。篩選多態(tài)性引物部分結(jié)果如圖4所示。

        圖2 甜瓜試驗材料DNAFig.2 DNA of test material in melon

        圖3 甜瓜果面溝BSA分析結(jié)果Fig.3 BSA result of the surface groove in melon

        圖4 CAPS引物在P1、P2、F1代多態(tài)性表現(xiàn)Fig.4 Polymorphism of CAPS primers among P1,P2and F1generation

        2.3.4 甜瓜遺傳連鎖圖譜構(gòu)建

        以M4-5和M1-15為遺傳研究背景,以含有282株單株F2代群體為繪圖群體,以QTL IciMapping軟件分別在第6號和第11號染色體上用15對具有多態(tài)性CAPS標(biāo)記繪制一張?zhí)鸸线z傳連鎖圖譜。圖譜結(jié)果顯示,第6號染色體上未定位到與果面溝性狀相關(guān)位點,因此排除控制果面溝基因位點在第6號染色體上可能性。利用CAPS標(biāo)記分析第11號染色體,如圖5所示,圖譜長度為181.87 cM,共包含15對CAPS標(biāo)記,定位到2個控制果面溝性狀位點,其中一個qYG-1-1位點位于標(biāo)記M11-5和M11-3之間,但是該位點所在位置與CAPS標(biāo)記所在區(qū)域順序不符,且分析數(shù)據(jù)表明該位點貢獻率幾乎為0,說明該位點存在錯誤。另一個位點為qYG-1-2,位于兩標(biāo)記M11-51和M11-53之間,兩標(biāo)記之間距離為3.42 cM。

        為獲得更近基因位點,在M11-51和M11-53標(biāo)記之間平均設(shè)計10對引物,其中具有多態(tài)性為3對。用5對引物對該群體進一步構(gòu)建CAPS標(biāo)記遺傳圖譜,遺傳圖譜結(jié)果如圖6所示。圖譜覆蓋長度為5 cM,定位到一個與果面溝性狀有關(guān)位點,qGroove-1-1,位于CAPS標(biāo)記M11-01與M11-51之間,兩標(biāo)記之間距離為1.1 cM,加性效應(yīng)值為-0.2407,表明該基因位點對果面溝起反向加性效應(yīng)。

        圖5 果面溝性狀在11號染色體上的位點Fig.5 Locus of fruit surface groove on chromosome 11 in melon

        圖6 甜瓜果面溝性狀在11號染色體上加密后位點Fig.6 Exact locus of fruit surface groove on chromosome 11 in melon

        2.4 CAPS標(biāo)記在自然群體中有效性檢驗

        利用甜瓜自然群體對CAPS標(biāo)記M11-01和M11-51作有效性檢驗,通過這兩個標(biāo)記對100株甜瓜自然群體PCR擴增和酶切分析顯示,分子數(shù)據(jù)與田間性狀符合率為74.67%和75.99%,結(jié)果表明果面溝性狀可穩(wěn)定遺傳,上述2個CAPS標(biāo)記可用于甜瓜果面溝分子標(biāo)記輔助選擇育種。

        3 討論與結(jié)論

        3.1 利用BSA法定位基因優(yōu)劣

        BSA法最早用于抗病基因定位[15],隨研究不斷深入,BSA法逐漸應(yīng)用于質(zhì)量性狀單基因或數(shù)量性狀主效基因定位,僅由一對具有相對性狀親本雜交,其產(chǎn)生分離群體理論上適用于BSA法[16]。優(yōu)點是可快速找到與目的基因緊密連鎖分子標(biāo)記,初步定位目標(biāo)基因所在染色體,無需繪制全部基因組長度遺傳連鎖圖譜,減少工作量,縮短工作時間。近年來,BSA方法已應(yīng)用于黃瓜[17]、番茄[18]、甜瓜[19]等園藝植物,且成功定位部分目標(biāo)基因。但該技術(shù)也有不足之處,無法精細定位基因區(qū)間,目標(biāo)基因初步定位后還需進一步結(jié)合遺傳圖譜、分子標(biāo)記或擴大群體等精細定位[20]。甜瓜果面溝性狀由一對基因控制質(zhì)量性狀,因此可利用BSA法定位。本試驗結(jié)果也證實BSA法無法將目標(biāo)基因準確定位在具體某一位點[20]。本試驗將控制甜瓜果面溝性狀基因初定位在第11號染色體后半段,根據(jù)親本重測序數(shù)據(jù),在該區(qū)域開發(fā)CAPS標(biāo)記,通過加密第11號染色體遺傳圖譜,最終將控制甜瓜果面溝性狀基因定位在距離為1.1 cM兩個CAPS標(biāo)記之間。本研究中,BSA法同時將目標(biāo)基因定位在兩條染色體上,出現(xiàn)該結(jié)果可能是兩個基因池間存在其他性狀差異導(dǎo)致,因此,應(yīng)用BSA法建立極端性狀池時應(yīng)考慮不同性狀差異。

        3.2 甜瓜果面溝性狀調(diào)查方法

        因為果面溝在F2果實中表型存在深淺差異,應(yīng)沿果實中心軸橫切,觀察橫截面判定果實是否具有果面溝。馬雙武認為果實表面存在條形覆紋處即是果面溝[21],但通過對F2群體調(diào)查過程發(fā)現(xiàn),存在果實表面有條形覆紋但果皮光滑,無果面溝,說明果皮覆紋與果面溝之間并無必然聯(lián)系。同一植株果實,果面溝也存在深淺不一情況,推斷果面溝可能受其他因素(果實成熟度和坐果位置等)影響。

        3.3 果面溝與裂果相關(guān)性分析

        甜瓜果面溝性狀與裂果呈顯著負相關(guān),說明存在果面溝甜瓜果實不易裂果,對于甜瓜采后貯藏與運輸具有重要作用。但甜瓜是否裂果受環(huán)境影響較大,該性狀可能由果面溝與其他環(huán)境因素共同導(dǎo)致,需在擴大群體并盡量保證其他因素一致前提下,深入研究確定兩個性狀間更準確相關(guān)性。

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