韓曉梅,王晨笑,楊鑫,王博,桑亞新,孫紀(jì)錄,*
(1.河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,河北保定071001;2.中糧營養(yǎng)健康研究院有限公司營養(yǎng)健康與食品安全北京市重點實驗室,北京102209;3.中糧營養(yǎng)健康研究院有限公司老年營養(yǎng)食品研究北京市工程實驗室,北京102209)
隨著人工養(yǎng)殖技術(shù)的發(fā)展,我國螃蟹產(chǎn)量逐年遞增,在加工或食用過程中產(chǎn)生大量的蟹殼。長期以來,蟹殼除少量被低值化利用之外,多是作為垃圾扔掉,既浪費資源,又污染環(huán)境。實際上,蟹殼中含有豐富的化學(xué)物質(zhì),其中包括蛋白質(zhì)、礦物質(zhì)和甲殼素,礦物質(zhì)含量約占50%,甲殼素含量約為15%~25%。
甲殼素(chitin)又稱幾丁質(zhì),廣泛存在于甲殼類海洋節(jié)肢動物中[1]。甲殼素是一種高分子的糖化合物,吸濕性強,能夠吸附重金屬離子,無毒無味,可以作為食品填充劑、穩(wěn)定劑、脫色劑等,已在醫(yī)藥、農(nóng)業(yè)、輕紡、環(huán)保等領(lǐng)域廣泛應(yīng)用[2-4]。在工業(yè)上從蟹殼中提取甲殼素,主要過程為在機械攪拌下用鹽酸對蟹殼脫鈣,用堿脫蛋白質(zhì)[5],目前,甲殼素及其衍生物的制備廣受關(guān)注[6-9],如王金香等以華溪蟹蟹殼為原料,采用稀鹽酸脫鈣和稀堿脫蛋白,甲殼素收率為13%[10]。在本文中用堿性電解水(basic electrolyzed water,BEW)代替?zhèn)鹘y(tǒng)的堿處理脫蛋白,BEW通過電解稀鹽(通常是NaCl)溶液從陰極產(chǎn)生,其pH值可達12左右,氧化還原電位約為-80 mV。關(guān)于BEW的應(yīng)用,已有諸多研究報道[11],如BEW可以作為去污劑等。BEW和傳統(tǒng)堿液脫蛋白工藝中使用的NaOH溶液在酸堿性方面具有極高的相似性,且電解水對人體健康和環(huán)境無害,安全性好,可現(xiàn)場生產(chǎn),操作簡便,價格低廉[12]。因此研究BEW處理蟹殼對開發(fā)一種新型的綠色環(huán)保的蟹殼脫蛋白技術(shù)工藝具有一定現(xiàn)實意義。
除此之外,蟹殼中的礦物質(zhì)含量高達50%,主要以碳酸鈣的形式存在,是一種天然的綠色鈣源。然而,碳酸鈣不易被人體吸收利用,而乳酸鈣以其高溶解度、高吸收率和高安全性等優(yōu)點成為補鈣劑的優(yōu)選[13],可以作為一種營養(yǎng)增補劑[14]、穩(wěn)定劑及增稠劑[15]等,還可以用作面包發(fā)酵粉的膨松劑和緩沖劑。本研究擬利用乳酸,采用直接中和的方法將蝦蟹殼中的碳酸鈣轉(zhuǎn)變?yōu)槿樗徕}[16-17],使其廣泛應(yīng)用于工業(yè)、食品及醫(yī)療行業(yè)等,并結(jié)合堿性電解水相繼處理脫蛋白質(zhì)提取甲殼素,從而為綜合利用蟹殼資源提供一條高效途徑。
蟹殼:河北省黃驊市產(chǎn)梭子蟹;其他試劑:均為分析純。
電解水發(fā)生器:河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院食品微生物學(xué)實驗室自制;PHS-3DW型pH計:安徽合肥橋斯儀器設(shè)備有限公司;3K15型低溫冷凍離心機:SIGMA;FA1004型電子天平:上海良平儀器儀表有限公司;XL-100型馬弗爐:河南市鶴壁億欣儀器儀表有限公司;JJ-1型電動攪拌器:常州國宇儀器制造有限公司。
1.2.1 蟹殼粉的制備
蟹殼清洗,然后放入50℃電熱鼓風(fēng)干燥器中干燥12 h,將烘干的蟹殼粉碎,過篩,制備120目蟹殼粉末備用。
1.2.2 乳酸鈣的制備
稱取10 g蟹殼粉置于250 mL錐形瓶中,緩慢加入一定量的乳酸與其發(fā)生中和反應(yīng)。為了防止發(fā)生溢液現(xiàn)象,需邊加乳酸邊攪拌。利用恒溫水浴搖床控制反應(yīng)溫度,當(dāng)不再有氣泡產(chǎn)生時,則表明反應(yīng)完全。待反應(yīng)完全后,將反應(yīng)溶液加熱升溫至70℃,溶解產(chǎn)生的乳酸鈣,趁熱抽濾得到乳酸鈣母液。利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀于65℃下加熱濃縮,收集濃縮液并冷卻靜置結(jié)晶24 h。分離晶體與母液,由于乳酸鈣在水中的溶解度比較大,結(jié)晶后母液中仍留有大量的乳酸鈣,需要濃縮后再次結(jié)晶,合并晶體。加入適量無水乙醇,洗滌反應(yīng)生成的乳酸鈣晶體,除去未反應(yīng)的乳酸及表面附著的其他殘留物。將無水乙醇洗后的乳酸鈣置于電熱鼓風(fēng)干燥箱進行低溫靜態(tài)干燥,干燥溫度為80℃,干燥時間8 h,將樣品粉碎、過篩、包裝得到白色粉末狀乳酸鈣成品。
1.2.3 乳酸鈣制備條件優(yōu)化
遵循單一因素變量的原則,研究蟹殼粉粒徑大小、反應(yīng)溫度、反應(yīng)時間、料液比、乳酸稀釋倍數(shù)對乳酸鈣產(chǎn)率的影響,從而設(shè)計單因素試驗,確定實現(xiàn)產(chǎn)率最大化的最佳反應(yīng)條件。
1.2.3.1 蟹殼粉粒徑大小的確定
固定條件:蟹殼粉使用量為10 g,反應(yīng)溫度為25℃,反應(yīng)時間為1 h,料液比為1∶10(g/mL),乳酸稀釋倍數(shù)為9倍。蟹殼粉粒徑大小分為3個水平:80、120、160目。待反應(yīng)完全后,經(jīng)濃縮,洗滌,干燥即得產(chǎn)品,分別測定乳酸鈣產(chǎn)率。
1.2.3.2 乳酸稀釋倍數(shù)的確定
固定條件:蟹殼粉使用量為10 g,蟹殼粒徑大小為120目,反應(yīng)溫度為25℃,反應(yīng)時間為1 h,料液比為1 ∶10(g/mL)。乳酸稀釋倍數(shù)分為4 個水平:4、9、14、19倍。待反應(yīng)完全后,經(jīng)濃縮,洗滌,干燥即得產(chǎn)品,分別測定乳酸鈣產(chǎn)率。
1.2.3.3 料液比的確定
固定條件:蟹殼粉使用量為10 g,蟹殼粒徑大小為120目,反應(yīng)溫度為25℃,反應(yīng)時間為1 h,乳酸稀釋倍數(shù)為9倍。料液比分為4個水平:1∶6、1∶8、1∶10、1 ∶12(g/mL)。待反應(yīng)完全后,經(jīng)濃縮,洗滌,干燥即得產(chǎn)品,分別測定乳酸鈣產(chǎn)率。
1.2.3.4 中和反應(yīng)溫度的確定
固定條件:蟹殼粉使用量為10 g,蟹殼粒徑大小為120 目,反應(yīng)時間為1 h,料液比為1 ∶10(g/mL),乳酸稀釋倍數(shù)為9倍。中和反應(yīng)溫度分為4個水平:25、40、55、70℃。待反應(yīng)完全后,經(jīng)濃縮,洗滌,干燥即得產(chǎn)品,分別測定乳酸鈣產(chǎn)率。
1.2.3.5 中和反應(yīng)時間的確定
固定條件:蟹殼粉使用量為10 g,蟹殼粒徑大小為120目,反應(yīng)溫度為25℃,料液比為1∶10(g/mL),乳酸稀釋倍數(shù)為9倍。中和反應(yīng)時間分為4個水平:1.0、1.5、2.0、2.5 h。待反應(yīng)完全后,經(jīng)濃縮,洗滌,干燥即得產(chǎn)品,分別測定乳酸鈣產(chǎn)率。
1.2.4 乳酸鈣產(chǎn)品的理化指標(biāo)檢測
對于使用乳酸處理蟹殼粉制得的乳酸鈣產(chǎn)品,依據(jù)GB 1886.21-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品添加劑乳酸鈣》,分別測定其乳酸鈣含量、加熱減量及砷、鉛、鎂的含量。
1.2.5 堿性電解水后繼處理蟹殼粉脫蛋白質(zhì)提取甲殼素
蟹殼粉經(jīng)乳酸處理脫礦物質(zhì)后剩余的殘渣經(jīng)過濾、干燥后備用。取10 g殘渣放入堿性電解槽中,加入不同濃度NaCl(1%和0.1%)水溶液1 L,靜置10min測定初始pH值。接通電源電解,將電壓設(shè)定為20 V,隨著堿性電解水產(chǎn)生,其對蟹殼粉脫蛋白質(zhì)作用也同步進行。連續(xù)處理期間,不間斷攪拌,并按照一定時間間隔測定電解液pH值,6 h后停止電解,抽濾除去電解液,然后,將蟹殼粉殘渣洗滌至中性,5 000 r/min離心10min,于60℃干燥8 h,稱重測定樣品的收率、灰分含量及蛋白質(zhì)含量。
1.2.6 NaOH后繼脫蛋白從蟹殼中提取甲殼素
蟹殼粉經(jīng)乳酸處理脫礦物質(zhì)后的殘渣經(jīng)過濾、干燥后備用。取10 g殘渣,加入一定量的2 mol/LNaOH溶液,于70℃下反應(yīng)4 h,以除去所有蛋白質(zhì)。過濾,將蟹殼粉殘渣洗滌至中性,5 000 r/min離心10min,于60℃下干燥8 h,即得甲殼素粗品。
以乳酸和NaOH聯(lián)合處理提取的甲殼素做參照,計算經(jīng)乳酸和堿性電解水聯(lián)合處理蟹殼后蛋白質(zhì)的含量及脫除率。
1.2.7 灰分含量測定方法
參照國標(biāo)GB 5009.4-2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)食品中灰分的測定》的方法,測定甲殼素產(chǎn)品的灰分含量。
1.2.8 蛋白質(zhì)含量及蛋白質(zhì)脫除率測定方法
蛋白質(zhì)脫除率測定的原理:由于蟹殼中的甲殼素同樣含有氮元素,單純使用凱氏定氮法并不能準(zhǔn)確地計算出樣品中蛋白質(zhì)的含量,因此,本研究利用凱氏定氮法測定堿性電解水處理后的樣品及傳統(tǒng)無機酸堿法提取的甲殼素中的含氮量,通過前者樣品中的氮含量減去后者甲殼素中的氮含量,即為蛋白質(zhì)中的氮含量,然后乘以蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)換系數(shù),即可計算出樣品中的蛋白質(zhì)含量及蛋白質(zhì)脫除率。
凱氏定氮法:稱取充分混勻的固體樣品0.1 g,精確至0.001 g,移入定氮瓶中,加入0.2 g硫酸銅,6 g硫酸鉀及10 mL濃硫酸,用消化爐消化3 h至液體呈藍綠色并澄清透明后,取下冷卻,用凱氏定氮儀蒸餾滴定,記錄試驗數(shù)據(jù)。
蛋白質(zhì)含量ω及蛋白質(zhì)脫除率η,分別按式(1)、(2)計算:
式中:m1為堿性電解水處理蟹殼脫蛋白后殘渣樣品的質(zhì)量,g;m2為傳統(tǒng)無機酸堿法處理蟹殼提取甲殼素的質(zhì)量,g;ω0為20 g蟹殼樣品中蛋白質(zhì)含量,%;ω1為堿性電解水處理蟹殼脫蛋白后殘渣樣品的含氮量,%;ω2為傳統(tǒng)無機酸堿法處理蟹殼提取甲殼素的含氮量,%。
控制單一因素變量,研究蟹殼粒徑大小、反應(yīng)溫度、反應(yīng)時間、料液比、乳酸稀釋倍數(shù)對乳酸鈣產(chǎn)率的影響,從而確定實現(xiàn)產(chǎn)率最大化的最佳反應(yīng)條件,試驗結(jié)果如圖1所示。
圖1 乳酸鈣制備的條件優(yōu)化Fig.1 Conditional optimization for preparation of calcium lactate
乳酸鈣提取的單因素試驗結(jié)果表明,蟹殼粒徑的大小與中和反應(yīng)溫度對乳酸鈣提取的影響沒有明顯差異,選擇120目蟹殼在25℃下與乳酸中和提取乳酸鈣,隨著乳酸稀釋倍數(shù)的增加,乳酸濃度越低,提取的乳酸鈣產(chǎn)量越低,乳酸適宜的稀釋倍數(shù)為9倍稀釋,此時乳酸的濃度為1.14 mol/L,料液比為1∶10(g/mL)時,乳酸鈣的產(chǎn)量明顯增加,繼續(xù)增加乳酸的量時則達到一個相對平衡的狀態(tài),由圖1中反應(yīng)時間對乳酸鈣產(chǎn)量的影響從而確定中和反應(yīng)的時間為2 h。
綜合以上分析的結(jié)果,以蟹殼作為原料采用直接中和的方法制備乳酸鈣的最優(yōu)條件為:120目蟹殼粉20 g,9倍稀釋的乳酸(1.14 mol/L)以 1 ∶10(g/mL)的料液比于25℃下與蟹殼中的鈣鹽發(fā)生中和反應(yīng),反應(yīng)時間為2 h,經(jīng)過濃縮、結(jié)晶、洗滌、重結(jié)晶后,最終的得到的乳酸鈣的最高產(chǎn)量為0.89 g/g蟹殼粉。
利用乳酸中和蟹殼中的鈣鹽從而實現(xiàn)脫礦物質(zhì)及制備乳酸鈣,對乳酸鈣的各項指標(biāo)進行檢測,試驗結(jié)果如表1所示。
表1 乳酸鈣各項產(chǎn)品指標(biāo)Table 1 The product indicators of the calcium lactate
表1結(jié)果表明,制備的乳酸鈣質(zhì)量分數(shù)達到99.37%,加熱減量分數(shù)為7.06%,鎂、鉛和砷含量均在國標(biāo)規(guī)定范圍內(nèi),乳酸鈣的各項指標(biāo)均符合國家標(biāo)準(zhǔn)。
分別用0.1%和1%的NaCl溶液制備堿性電解水,在堿性電解槽中加入一定量乳酸脫礦物質(zhì)后的蟹殼殘渣,連續(xù)電解,保持OH-的不斷產(chǎn)生,使得蟹殼粉中的蛋白質(zhì)得以持續(xù)脫除。定時測定電解過程(脫除過程)中的pH值變化,結(jié)果如圖2。
圖2 不同濃度NaCl制備的堿性電解水在連續(xù)處理蟹殼粉過程中的pH值變化Fig.2 The pH changes of BEW prepared with different concentrations of NaCl during the continuous treatment for crab shell powder
由圖2可見,在用堿性電解水處理蟹殼脫蛋白過程中,分別用1%和0.1%的NaCl溶液制備的堿性電解水,在相同的反應(yīng)時間下電解液的pH值均有所上升,且在第1個小時之內(nèi)上升最快并逐漸趨于穩(wěn)定,其中由1%NaCl制備的的堿性電解水在脫蛋白過程中pH值變化趨勢更顯著,從7.07上升到12.84,而由0.1%NaCl制備的堿性電解水在相同的脫蛋白時間下其pH值從7.08上升到12.18。從圖中可以明顯看出利用1%NaCl制備的堿性電解水能夠在較快的時間內(nèi)達到較高的堿度,并且在電解水電解過程中伴隨著產(chǎn)熱,有利于堿性電解水對蟹殼的脫蛋白質(zhì)作用。
蟹殼經(jīng)過乳酸脫礦物質(zhì)后,取脫礦物質(zhì)后的樣品10 g,分別用1%NaCl和0.1%NaCl溶液制備的堿性電解水脫蛋白,并用NaOH處理作對照,研究乳酸和堿性電解水聯(lián)合處理提取甲殼素的效果,試驗結(jié)果如表2所示。
表2 乳酸和堿性電解水聯(lián)合處理蟹殼提取的甲殼素常規(guī)指標(biāo)Table 2 Standard test results for chitin extracted by lactic acid and BEW treatment from crab shell powder
數(shù)據(jù)表明,用1%NaCl溶液制備的堿性電解水對乳酸脫礦物質(zhì)后的樣品進行脫蛋白,蛋白質(zhì)含量由52%減少到7.53%,蛋白質(zhì)脫除率為90.54%,測得甲殼素的灰分含量為0.81%,表明用乳酸和堿性電解水聯(lián)合處理能較好的實現(xiàn)脫礦物質(zhì)和脫蛋白提取甲殼素,并且,高濃度的NaCl溶液制備的堿性電解水脫蛋白質(zhì)程度更高。
為了實現(xiàn)蟹殼中鈣源與甲殼素的綜合利用,研究了乳酸與堿性電解水聯(lián)合處理對礦物質(zhì)和蛋白質(zhì)的脫除程度的影響,并對制備的乳酸鈣進行檢測,經(jīng)過乳酸鈣制備條件的優(yōu)化,9倍稀釋的乳酸(1.14 mol/L)以1∶10(g/mL)的料液比于25℃下與蟹殼中的鈣鹽發(fā)生中和反應(yīng),反應(yīng)時間為2 h,最終乳酸鈣的最高產(chǎn)量為0.89 g/g蟹殼粉,礦物質(zhì)脫除率為94.37%,Zakaria等利用副干酪乳桿菌A3發(fā)酵螯蝦廢料,5 d后礦物質(zhì)脫除率為61.0%[18];Rao M S等用酸調(diào)節(jié)發(fā)酵體系的pH,并維持在6.0,結(jié)果發(fā)現(xiàn)植物乳桿菌脫除蝦殼中礦物質(zhì)達88%[19],由此可見,相對于乳酸菌發(fā)酵法而言,利用乳酸脫礦物質(zhì)效果更好,礦物質(zhì)脫除程度更高。并且制備的乳酸鈣質(zhì)量分數(shù)達到99.37%,加熱減量分數(shù)為7.06%,鎂、鉛和砷元素含量以及水溶解試驗、游離酸和游離堿試驗、揮發(fā)性脂肪酸試驗均符合國家標(biāo)準(zhǔn)。然后將乳酸脫礦物質(zhì)后的殘渣用1%NaCl溶液制備的堿性電解水脫蛋白,蛋白質(zhì)含量由52%減少到7.53%,蛋白質(zhì)脫除率為90.54%,灰分含量為0.81%,該試驗結(jié)果要優(yōu)于W.J.Jung等從蟹殼中篩選出的產(chǎn)蛋白酶菌株粘質(zhì)沙雷氏菌-FS3的脫礦物質(zhì)和脫蛋白效果[20]。并且1%NaCl溶液制備的堿性電解水較0.1%NaCl溶液制備的堿性電解水脫蛋白程度更高。試驗表明,用乳酸和堿性電解水聯(lián)合處理能較好的實現(xiàn)脫礦物質(zhì)和脫蛋白質(zhì)制備乳酸鈣和甲殼素,實現(xiàn)蟹殼資源的有效利用。
[1]Yang S F,Zhang H C,Shi Y X,et al.The new technologies in chitin/chitosan preparation[J].Advanced Materials Research,2013,666:143-150
[2]孟凡欣,吳麗艷,徐盼菊,等.蝦殼甲殼素提取工藝優(yōu)化及其輔助降血糖活性研究[J].食品研究與開發(fā),2016,37(5):95-100
[3]簡慧蘭.甲殼素/殼聚糖的制備及其在食品工業(yè)中的應(yīng)用[J].南通職業(yè)大學(xué)學(xué)報,2003,17(1):56-58
[4]蔣小姝,莫海濤,蘇海佳,等.甲殼素及殼聚糖在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域方面的應(yīng)用[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2013,29(6):170-174
[5]顧正桂,林軍,顧美娟.甲殼素系列產(chǎn)品生產(chǎn)過程的優(yōu)化及裝置的改進[J].現(xiàn)代化工,2009,29(1):62-65,67
[6]蔚鑫鑫,劉艷,吳光旭.小龍蝦殼中甲殼素的提取及殼聚糖的制備[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,52(13):3120-3123
[7]許慶陵,曾慶祝.蝦殼甲殼素及殼聚糖提取工藝的研究[J].中國食品添加劑,2013(6):104-109
[8]權(quán)靜.蟹殼制備殼聚糖的工藝研究[J].廣州化工,2012,40(15):105-107
[9]Mohammed M H,Williams P A,Tverezovskaya O.Extraciton of chitin from prawn shells and conversion to low molecular mass chitosan[J].Food Hydrocolloids,2013,31(2):166-171
[10]王金香,王蘭.華溪蟹幾丁質(zhì)的提取與殼聚糖的制備[J].食品工業(yè)科技,2005,26(3):109-111
[11]Sun J L,Zhang S K,Chen J Y,et al.Efficacy of acidic and basic electrolyzed water in eradicating Staphylococcus aureus biofilm[J].Canadian Journal of Microbiology,2012,58(4):448-454
[12]Tanaka N,Fujisawa T,Daimon T,et al.The effect of electrolyzed strong acid aqueous solution on hemodialysis equipment[J].Artificial Organs,1999,23(12):1055-1062
[13]江敏,李鑒,梁潔玲,等.牡蠣殼合成L-乳酸鈣的工藝研究[J].食品科技,2008,33(3):123-125
[14]Daengprok W,Garnjanagoonchorn W,Mine Y.Fermented pork sausage fortified with commercial or hen eggshell calcium lactate[J].Meat Science,2002,62(2):199-204
[15]白海濤.雞蛋殼制備食品級乳酸鈣的新工藝研究[D].西安:西北大學(xué),2006
[16]Rubilar O E,Healy M G,Healy A.Bioprocessing of avian eggshells and eggshell membranes using lactic acid bacteria[J].Journal of Chemical Technology&Biotechnology,2006,81(6):900-911
[17]Lee Y K,Kim S D.Preparation and characteristics of calcium lactate from black snail[J].Journal of Food Science&Nutrition,2003,8(2):166-172
[18]Zakaria Z,Hall G M,Shama G.Lactic acid fermentation of scampi waste in a rotating horizontal bioreactor for chitin recovery[J].Process Biochemistry,1998,33(1):1-6
[19]Rao M S,Stevens W F.Chitin production by Lactobacillus,fermentation of shrimp biowaste in a drum reactor and its chemical conversion to chitosan[J].Journal of Chemical Technology&Biotechnology,2005,80(9):1080-1087
[20]Jo G H,Jung W J,Kuk J H,et al.Screening of protease-producing Serratia marcescens FS-3 and its application to deproteinization of crab shell wastefor chitin extraction[J].Carbohydrate Polymers,2008,74(3):504-508