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        利用de novo測序分析蠶豆瓣醬醅微生物多樣性

        2018-06-05 08:30:55周評平李治華朱永清四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院四川成都610066四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所四川成都610066
        關(guān)鍵詞:豆瓣醬郫縣基因組

        周評平,李治華,董 玲,趙 馳,朱永清*(1. 四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院,四川 成都 610066;.四川省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,四川 成都 610066)

        【研究意義】郫縣豆瓣醬是川菜重要的調(diào)味品,被譽(yù)為“川菜之魂”[1]。蠶豆是生產(chǎn)郫縣豆瓣醬的重要原料之一,蠶豆瓣醅的質(zhì)量好壞直接影響著郫縣豆瓣的品質(zhì)?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】目前國內(nèi)外學(xué)者對黃豆醬醅的微生物多樣性研究較多,但是對蠶豆醬醅的微生物多樣性研究較少?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】長期以來,人們對發(fā)酵食品微生物菌落的研究主要采用傳統(tǒng)的純培養(yǎng)方法和免培養(yǎng)方法,免培養(yǎng)方法相對于傳統(tǒng)的純培養(yǎng)方法有很多優(yōu)勢,更能全面揭示微生物多樣性和深入了解微生物群落及其功能[2]。隨著測序費(fèi)用的降低和生物信息學(xué)的發(fā)展,利用denovo測序方法研究微生物菌落多樣性已成為一個(gè)重要手段。過去采用16S、ITS等擴(kuò)增子測序分析的準(zhǔn)確度有限,往往只能到屬,而denovo測序可以彌補(bǔ)上述不足,可以準(zhǔn)確到種甚至菌株水平[3]。【擬解決的關(guān)鍵問題】本研究以郫縣豆瓣制作中蠶豆瓣醅為研究對象,采用denovo測序的結(jié)果分析其微生物多樣性。不僅為后續(xù)深入研究其發(fā)酵過程微生物功能提供了技術(shù)支撐,而且對郫縣豆瓣微生物安全性評價(jià)提供了有效的方法。

        表1 質(zhì)控統(tǒng)計(jì)結(jié)果Table 1 Statistic data for quality control

        1 材料與方法

        1.1 宏基因組DNA提取材料

        傳統(tǒng)方法生產(chǎn)的蠶豆瓣醬醅。樣品采集后放在冰上立即運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室分析。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 基因組DNA提取 DNA提取采用方法參考李治華等[4],取10 g蠶豆瓣醬醅到90 mL生理鹽水,充分振蕩洗脫出樣品中的微生物,用無菌金屬網(wǎng)過濾,取濾液在4 ℃條件下10 000 r/min離心10 min,收集菌體沉淀,按照上海生工試劑盒(Ezup Column Soil DNA Purification Kit)使用說明提取菌體DNA。

        1.2.2 宏基因組DNA檢測 提取DNA在1 %瓊脂糖凝膠電泳檢測,2 μl上樣,觀察DNA質(zhì)量。用Nanodrop2000超微量分光光度計(jì)檢測DNA純度和濃度 (NanoDrop Technologies, Del., U.S.A.)。

        1.2.3 文庫構(gòu)建和測序 使用 NEBNext?UltraTMDNA Library Prep Kit for Illumina?試劑盒進(jìn)行文庫構(gòu)建。

        使用Illumina HiSeq平臺進(jìn)行測序,測序長度2×150 bp。測序得到的原始二進(jìn)制basecalling數(shù)據(jù)經(jīng)Illumina bcl2fastq軟件轉(zhuǎn)化為序列數(shù)據(jù)Raw data,結(jié)果以 fastq 文件格式存儲。測序數(shù)據(jù)產(chǎn)量統(tǒng)計(jì)使用Illumina RTA軟件進(jìn)行圖像識別和Basecalling,Illumina bcl2fastq 2.17根據(jù)每個(gè)樣本的index信息進(jìn)行demultiplexing并統(tǒng)計(jì)產(chǎn)出reads數(shù)和堿基測序質(zhì)量(Q30),質(zhì)控統(tǒng)計(jì)結(jié)果見表1。

        M:1kb DNA ladder, 1為樣本(2 μl),2位空白對照M:1kb DNA ladder, 1: Test sample(2 μl),2:Control sample圖1 宏基因組DNA提取結(jié)果Fig.1 Metagenomic DNA extraction

        1.2.4 數(shù)據(jù)分析 數(shù)據(jù)分析方法采用 Sunagawa 等2013年發(fā)表在《Nature methods》的mOTUs方法[3]和Senavirathne 等2015年發(fā)表在《Nature methods 》的Metaphlan2方法[5]

        2 結(jié)果與分析

        2.1 宏基因組DNA提取

        電泳檢測如圖1,樣品條帶明亮。Nanodrop2000分析核酸濃度為73.5 ng/μl, 核酸質(zhì)量為3.3 μg,A260/280=1.74,A260/230=0.47。電泳和Nanodrop2000分析顯示樣品滿足建庫要求,且總量可以滿足2次或者2次以上建庫需要的樣品。

        2.2 測序結(jié)果與數(shù)據(jù)分析

        mOTUs方法發(fā)現(xiàn)共有12個(gè)種的微生物相對豐度大于1.00 %,Metaphlan2方法發(fā)現(xiàn)共有11個(gè)種的微生物相對豐度大于1.00 %,其中嗜鹽四聯(lián)球菌(Tetragenococcushalophilus)被2種方法同時(shí)確定為優(yōu)勢菌種, mOTUs方法顯示其相對豐度為64.26 %,Metaphlan2分析其豐度為50.80 %, Metaphlan2進(jìn)一步分析得出其菌株為NBRC 12172,是醬油和魚醬的一個(gè)重要耐鹽菌株[6]。破布子乳酸菌(Lactobacilluspobuzihii)僅僅被Metaphlan2分析到,而且其相對豐度為17.60 %,但沒有被mOTUs方法分析出,具體菌株為E100301,首次是在臺灣的傳統(tǒng)發(fā)酵食品破布子中分離得到[7]。約氏不動桿菌(Acinetobacterjohnsonii)2種方法顯示其豐度分別為4.43 %和4.17 %,但是具體菌株無法在NCBI數(shù)據(jù)庫比配,暗示有可能是一株新的菌株。

        在mOTUs相對豐度大于1.00 %的菌群里,Metaphlan2揭示到菌株水平的還有3株,分別為溶酪大球菌(Macrococcuscaseolyticus),菌株為JCSC5402,有報(bào)道該菌株對甲氧西林(methicillin)具有抗性,在進(jìn)化上與金黃色葡萄球菌高度相關(guān)[8];腸桿菌屬種暫定編號638(Enterobactersp. 638),因與目前該種下的菌株有明顯區(qū)別,菌株暫定為638;類腸膜魏斯氏菌(Weissellaparamesenteroides),菌株為ATCC 33313,是一株典型的乳酸菌。除此以外,都不能被確定到菌株水平(unclassified),暗示蠶豆瓣醬醅里存在較多未被認(rèn)識的微生物資源,對這些菌株的進(jìn)一步分離有利于揭示蠶豆瓣醬醅的微生態(tài)基礎(chǔ)。另外,融合魏斯氏乳酸菌(Weissellaconfusa),菌株為LBAE C39-2,僅僅被Metaphlan2檢測到。

        表2 mOTUs和 Metaphlan2分析蠶豆瓣醬醅微生物多樣性Table 2 Analysis of microbial diversity in doubanjiang-meju using mOTUs and Metaphlan2 methods, respectively

        注:“nd”表示沒有被檢測到;“-”表示 Metaphlan2方法在NCBI數(shù)據(jù)庫里沒有對應(yīng)的菌株;對應(yīng)菌株NCBI查詢編號;“ unclassified”表示沒有對應(yīng)編號。

        3 討 論

        3.1 de novo測序與擴(kuò)增子測序

        相比擴(kuò)增子測序,denovo測序精確到了種水平,而且一次測序同時(shí)可以分析真菌和細(xì)菌,避免擴(kuò)增子的2對引物,多次PCR過程產(chǎn)生的偏差[9]。

        3.2 mOTU方法和Metaphlan2方法比較

        2種方法結(jié)果較高程度的吻合,可以相互印證,Metaphlan2更進(jìn)一步分析到了菌株級別。

        3.3 蠶豆瓣醬醅的優(yōu)勢微生物

        嗜鹽四聯(lián)球菌(T.halophilus)是蠶豆瓣醬醅的優(yōu)勢微生物,相對豐度占一半以上(mOTUs方法為64.26 %,Metaphlan2方法為50.80 %),Metaphlan2方法發(fā)現(xiàn)破布子乳酸菌(L.pobuzihii)也是優(yōu)勢菌株,其相對豐度為17.60 %,這與作者先前報(bào)道的一致[9]。另外,大量未分離到的微生物有待進(jìn)一步研究。

        4 結(jié) 論

        denovo全基因組測序能分析到蠶豆瓣醅微生物中種或菌株的水平,研究結(jié)果不僅為后續(xù)深入研究提供了技術(shù)支撐,而且對郫縣豆瓣的微生物安全性評價(jià)提供了有效的方法。

        參考文獻(xiàn):

        [1]李幼筠. “郫縣豆瓣”剖析[J].中國釀造,2008,11:83-86.

        [2]李 昂,崔 迪,王繼華,等. 適用于第2代測序技術(shù)的宏基因組DNA 提取方法[J]. 哈爾濱工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2012(6):20-23.

        [3]Sunagawa S, Mende D R, Zeller G, et al. Metagenomic species profiling using universal phylogenetic marker genes[J]. Nature Methods, 2013, 10(12): 1196-1199.

        [4]李治華,黃 馳,王自鵬,等. 發(fā)酵豆瓣醬微生物宏基因組DNA提取研究[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,26(6):2663-2665.

        [5]Truong D T, Franzosa E A, Tickle T L, et al. MetaPhlAn2 for enhanced metagenomic taxonomic profiling[J]. Nature Methods, 2015, 12(10): 902-903.

        [6]Satomi M, Furushita M, Oikawa H, et al. Diversity of plasmids encoding histidine decarboxylase gene inTetragenococcusspp. isolated from Japanese fish sauce[J]. International Journal of Food Microbiology, 2011, 148(1): 60-65.

        [7]Chen Y S, Miyashita M, Suzuki K, et al.Lactobacilluspobuzihiisp. nov., isolated from pobuzihi (fermented cummingcordia)[J]. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2010, 60(8): 1914-1917.

        [8]Baba T, Kuwahara-Arai K, Uchiyama I, et al. Complete genome sequence of Macrococcus caseolyticus strain JSCS5402, reflecting the ancestral genome of the human-pathogenic staphylococci[J]. Journal of Bacteriology, 2009, 191(4): 1180-1190.

        [9]Li Z, Rui J, Li X, et al. Bacterial community succession and metabolite changes during doubanjiang-meju fermentation, a Chinese traditional fermented broad bean (ViciafabaL.) paste[J]. Food Chemistry, 2017, 218: 534-542.

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