韓林賀, 丁安明, 孔英珍
(1.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院煙草研究所/中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院煙草遺傳改良與生物技術(shù)重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,山東青島 266101;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院研究生院,北京 100081)
果膠是存在于植物細(xì)胞胞間層以及初生細(xì)胞壁和次生細(xì)胞壁中一類成分復(fù)雜的多糖,是植物中一大類主要以半乳糖醛酸組成骨架結(jié)構(gòu)的酸性多糖所形成的復(fù)合體的統(tǒng)稱,也是雙子葉植物和除玉米外的單子葉植物細(xì)胞壁的主要組成成分,約占細(xì)胞壁組成的30%~40%[1]。根據(jù)果膠多糖大分子的成分與構(gòu)成的不同,主要可以分為以下3類:同聚半乳糖醛酸聚糖(homogalacturonan,簡稱HG),Ⅰ型鼠李糖半乳糖醛酸聚糖(rhamnogalacturonan Ⅰ,簡稱RG Ⅰ)和Ⅱ型鼠李糖半乳糖醛酸聚糖(rhamnogalacturonan Ⅱ,簡稱RG Ⅱ),這3類聚糖是果膠多糖組分的主要多糖[2-4]。細(xì)胞壁中的果膠對維持細(xì)胞壁穩(wěn)定和抗壓能力有一定的作用,也是植物應(yīng)對病原體侵害的重要屏障。果膠的甲酯化和去酯化能夠引起植物細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和功能特性的改變,在果實(shí)成熟軟化、器官脫落和衰老[5-7]、花粉發(fā)育、花粉管生長[8-10]和抗逆性[11-12]等方面具有重要作用。果膠去甲酯化形成的果膠酸,會與胞外的Ca2+結(jié)合形成果膠酸鹽,使植物細(xì)胞壁硬化,導(dǎo)致植物細(xì)胞生長緩慢。同時(shí),去甲酯化形成的甲醇和氫離子,會影響其他果膠水解酶的活性[13-14]。果膠去甲酯化的過程是由果膠甲酯酶(pectin methyl ester enzyme,簡稱PME)催化完成的,PME的活性同時(shí)又受果膠甲酯酶抑制劑(pectin methyl ester enzyme inhibitor,簡稱PMEI)的調(diào)控。Sénéchal等通過對PME17、PMEI4在擬南芥中的共表達(dá)分析和PMEI4突變體的特征分析,發(fā)現(xiàn)PMEI17和PMEI4相互作用;后來通過對體外PME/PMEI復(fù)合體生物化學(xué)特征進(jìn)行詳細(xì)分析,發(fā)現(xiàn)在一定的pH值范圍內(nèi),PME3的酶活性直接受PMEI7調(diào)控[15-16]。PMEI廣泛存在于高等植物以及一些能降解植物細(xì)胞壁的微生物如細(xì)菌、真菌中[17]。目前人們僅對擬南芥、石松類以及桃、獼猴桃等高等植物的PMEI基因家族進(jìn)行了相關(guān)結(jié)構(gòu)分析和功能研究。Hothorn等于2004年獲得了擬南芥PMEI的三維結(jié)構(gòu),該結(jié)構(gòu)由4條反向平行的α螺旋組成,分別為α1、α2、α3、α4,構(gòu)成PMEI的活性區(qū)域;在氮末端區(qū)域有3條短的彎曲的α螺旋,分別為αa、αb、αc,維持PMEI結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。PMEI蛋白序列中有4個(gè)極為保守的半胱氨酸,分別位于α2、α3、αa、αb上[18]。Di Matteo等根據(jù)已獲得的獼猴桃果膠甲酯酶抑制劑氨基酸序列,人工合成其基因序列,在畢赤酵母中進(jìn)行表達(dá)獲得純化的PMEI蛋白,將其與從番茄中提取的PME組合,獲得二者復(fù)合物的三維結(jié)構(gòu)[19]。梅曉宏等發(fā)現(xiàn),在新鮮果蔬汁中加入PMEI可以阻止果膠形成果膠酸鹽吸附果肉,防止果蔬汁變質(zhì)[20]。根據(jù)Juge等的研究,PMEI成員參與果膠新陳代謝,影響谷類植物細(xì)胞壁多糖的形成[21-22],從而影響韌皮纖維的伸長。相關(guān)研究表明,PMEI參與果實(shí)的形成過程,番茄中的SolyPMEI在果實(shí)的發(fā)育過程中特異表達(dá)[23],葡萄中的VvPMEI1也參與果實(shí)的成熟過程[24]。用水楊酸(SA)處理辣椒6 h后,辣椒細(xì)胞內(nèi)的PMEI含量顯著升高,表明PMEI與水楊酸信號調(diào)節(jié)有關(guān)[25-26]。在用雙氧水處理水稻幼苗 48 h 后,辣椒幼苗體內(nèi)PMEI含量顯著升高,表明其與植物體抗氧化作用有關(guān)[27]。因此,對植物中PMEI的特性及生物學(xué)功能進(jìn)行研究具有重要的理論和應(yīng)用價(jià)值。
煙草是我國重要的經(jīng)濟(jì)作物,同時(shí)也是進(jìn)行生物學(xué)研究的重要模式植物,但是對煙草PMEI基因家族的研究鮮見報(bào)道。煙草的主要收獲器官是葉片,葉片細(xì)胞壁中的多糖聚合物不僅維持煙葉在生長發(fā)育過程中的形態(tài),還影響煙葉的物理特性、加工特性以及煙葉的吸食質(zhì)量。煙葉細(xì)胞壁中的果膠含量與煙葉平衡含水率、填充力、燃燒性呈正相關(guān),與煙葉厚度、葉質(zhì)重及香氣、余味、雜氣得分、評吸總分呈負(fù)相關(guān)[28-30]。因此,研究煙草PMEI家族基因?qū)z甲酯化過程的調(diào)控作用及其對細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的影響具有重要意義。本研究以普通煙草PMEI家族(NtPMEI)為研究對象,采用生物信息學(xué)手段對其基因家族各成員之間的進(jìn)化關(guān)系及其基因結(jié)構(gòu)、編碼蛋白的物理化學(xué)性質(zhì)、保守結(jié)構(gòu)域、亞細(xì)胞定位、基因本體(gene ontology,簡稱GO)分析、組織表達(dá)等進(jìn)行研究,以期為研究煙草中PMEI家族的功能提供參考。
普通煙草品種紅花大金元(簡稱HD),于溫室種植,自然條件下培養(yǎng)至成熟期。取幼苗期的根、莖、葉、葉脈和成熟期的根、莖、葉、葉脈及花芽,經(jīng)處理后于液氮中速凍,-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
基于Wang等報(bào)道的擬南芥71個(gè)PMEI家族成員的序列[31],利用序列相似性分析,預(yù)測煙草基因組PMEI家族。從TAIR數(shù)據(jù)庫(http://www.arabidopsis.org/)下載擬南芥PMEI家族蛋白全長序列,從Pfam數(shù)據(jù)庫(http://pfam.xfam.org/)下載PMEI家族蛋白結(jié)構(gòu)域序列(Pfam ID:PF04043)。將兩類序列在煙草基因組數(shù)據(jù)庫(http://218.28.140.17/)和NCBI數(shù)據(jù)庫(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中進(jìn)行Blastp檢索(e值≤10-15),獲得普通煙草的PMEI類似序列,人工去除冗余序列,作為NtPMEI家族的候選序列。結(jié)合Pfam數(shù)據(jù)庫[32]中PMEI結(jié)構(gòu)域保守序列(序列號PF04043)和SMART在線分析軟件(http://smart.embl-heidelberg.de/)[33]對候選序列進(jìn)行PMEI結(jié)構(gòu)域分析,剔除不含有該結(jié)構(gòu)域的蛋白質(zhì)序列,最終鑒定出90條NtPMEI家族蛋白序列。利用ExPASyProtParam(http://web.expasy.org/protparam/)對所得煙草PMEI家族蛋白序列進(jìn)行理化性質(zhì)分析[34]。
利用Muscle程序[35]對擬南芥和普通煙草PMEI家族的蛋白序列進(jìn)行多序列比對,參數(shù)選為默認(rèn)值?;诒葘Y(jié)果,利用MEGA6.0軟件[36],采用鄰接法(neighbor-joining,簡稱NJ)構(gòu)建擬南芥和普通煙草PMEI家族進(jìn)化樹,Bootstrap檢驗(yàn)參數(shù)設(shè)置為1 000。利用MEME4.11.2(Multiple Expectation Maximization for Motif Elicitation)[37]在線平臺(http://meme.nbcr.net/meme/cgi-bin/meme.cgi)對90個(gè)NtPMEI家族蛋白進(jìn)行保守基序分析,最大motif檢索值定為20。利用Multiple Sequence Alignment by CLUSTALW在線平臺(http://www.genome.jp/tools/clustalw/)進(jìn)行多序列比對,Output Format格式設(shè)置為FASTA格式。利用BoxShade Server在線平臺(http://www.ch.embnet.org/software/BOX_form.html),將各蛋白保守區(qū)域進(jìn)行可視化。選取結(jié)構(gòu)域保守的蛋白序列為目標(biāo)序列,在SWISS-MODEL網(wǎng)站(http://swissmodel.expasy.org/interactive)上查找三維結(jié)構(gòu)模板,根據(jù)覆蓋率、一致性百分比、試驗(yàn)可靠性選擇最適的三維結(jié)構(gòu)模板。
為分析所預(yù)測的候選NtPMEI基因的表達(dá)模式,在煙草基因組數(shù)據(jù)庫(http://218.28.140.17/)中下載煙草基因組組織表達(dá)數(shù)據(jù),利用R語言Bioconductor程序?qū)D(zhuǎn)錄數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,使數(shù)據(jù)均一化,利用MeV本地軟件對結(jié)果進(jìn)行可視化分析。選擇部分候選NtPMEI基因進(jìn)行組織特異性表達(dá)驗(yàn)證,使用TRANS Kit提取總RNA,參照說明書步驟,利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒TransScript One-Step gDNA Removal and cDNA Synthesis SuperMix Kit合成第一鏈cDNA,作為PCR擴(kuò)增模板。以煙草管家基因actin(GenBank登錄號為EU938079.1)作為內(nèi)參基因,反應(yīng)體系:10 μL 2×FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)、0.6 μL正反向引物(10 μmol/L)、1 μL模板cDNA、7.8 μL ddH2O(RNase free)。在熒光定量PCR儀Applied Biosystem 7500(ABI7500)上進(jìn)行qRT-PCR反應(yīng),程序如下:50 ℃ 2 min,95 ℃ 2 min,95 ℃ 15 s,60 ℃ 34 s,共40個(gè)循環(huán),加溶解曲線;每個(gè)樣品重復(fù)3次。用7500 software v2.0.1對結(jié)果進(jìn)行分析,并對相對表達(dá)量進(jìn)行作圖。
利用擬南芥PMEI家族71條蛋白全長序列和保守結(jié)構(gòu)域序列,在煙草基因組數(shù)據(jù)庫和NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blastp比對,獲得105條煙草PMEI家族候選序列。結(jié)合Pfam數(shù)據(jù)庫中PMEI結(jié)構(gòu)域保守序列(序列號PF04043)和SMART在線程序,對候選序列進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域分析,去除不含有PMEI結(jié)構(gòu)域的序列,在普通煙草基因組中共鑒定出90條PMEI蛋白序列。根據(jù)煙草注釋信息中基因在染色體上的位置,對90個(gè)成員進(jìn)行重新編號,以便后續(xù)研究(表1)。
將得到的90個(gè)NtPMEI家族成員全長蛋白序列與擬南芥PMEI家族71個(gè)成員進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)生分析(圖1),根據(jù)擬南芥的分類方式將NtPMEI家族成員分為5個(gè)亞家族(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ),各個(gè)亞家族分別含有17、6、2、8、57個(gè)NtPMEI成員(圖1、表1)。通過分析NtPMEI蛋白編碼基因結(jié)構(gòu)發(fā)現(xiàn),大多數(shù)基因不含有內(nèi)含子。其中,第Ⅱ、Ⅲ亞家族成員均不含有內(nèi)含子,第Ⅰ亞家族中的NtPMEI1、NtPMEI42分別含有6、5個(gè)內(nèi)含子,第Ⅳ亞家族中有3個(gè)成員各含有1個(gè)內(nèi)含子,第V亞家族中有1/2的成員含有內(nèi)含子(表1)。
對獲得的NtPMEI家族成員蛋白序列進(jìn)行理化特征分析,表1結(jié)果顯示,NtPMEI蛋白序列平均長度在284個(gè)氨基酸左右,其中序列最長的NtPMEI37和最短的NtPMEI17都屬于第Ⅴ亞家族,分別由685、108個(gè)氨基酸殘基組成。不同亞家族之間的氨基酸序列長度變化呈現(xiàn)不同規(guī)律,第Ⅱ亞家族蛋白序列長度大多在200個(gè)氨基酸左右;第Ⅴ亞家族有30%以上成員的蛋白序列長度在500個(gè)氨基酸以上。NtPMEI家族成員蛋白分子量變化范圍在11.72~75.63ku之間,變化范圍較大。NtPMEI家族成員理論等電點(diǎn)變化范圍較大,介于 3.99~10.55 之間。第Ⅰ亞家族成員理論等電點(diǎn)大多介于 4.45~6.99,只有1個(gè)蛋白的理論等電點(diǎn)為8.64,說明該家族成員蛋白序列中多為酸性氨基酸;第Ⅲ亞家族的2個(gè)成員理論等電點(diǎn)均為4.26,在酸性范圍內(nèi),說明該亞家族成員蛋白序列中含有較多的酸性氨基酸。
表1 NtPMEI家族理化性質(zhì)分析
續(xù)表1
基因名稱亞家族染色體定位氨基酸數(shù)量(個(gè))分子量(ku)等電點(diǎn)內(nèi)含子數(shù)量(個(gè))亞細(xì)胞定位擬南芥同源基因煙草序列號NtPMEI30ⅤChr0520622.968.200CWAT4G25260Ntab0897290NtPMEI31ⅤChr0516418.049.520ChloAT1G62770Ntab0897310NtPMEI33ⅤChr0512814.035.160ChloAT2G01610Ntab0145490NtPMEI36ⅤChr0658363.947.231CWAT2G47030Ntab0936920NtPMEI37ⅤChr0668575.634.652ChloAT5G27870Ntab0977780NtPMEI38ⅤChr0620622.888.230CWAT4G25260Ntab0787520NtPMEI39ⅤChr0621724.119.770ChloAT1G62770Ntab0787510NtPMEI41ⅤChr0719721.659.340ChloAT5G20740Ntab0298990NtPMEI45ⅤChr0919721.608.130NuclAT4G25250Ntab0442870NtPMEI46ⅤChr1058765.056.871CWAT2G47030Ntab0968090NtPMEI47ⅤChr1122123.936.890ChloAT1G14890Ntab0448270NtPMEI48ⅤChr1120322.277.621ChloAT5G20740Ntab0496350NtPMEI49ⅤChr1255760.978.361VacuAT5G27870Ntab0719690NtPMEI54ⅤChr1418821.119.670ChloAT5G20740Ntab0820670NtPMEI56ⅤChr1654760.277.451ChloAT5G49180Ntab0751610NtPMEI59ⅤChr1757562.949.761NuclAT5G04960Ntab0042420NtPMEI60ⅤChr1757462.549.541NuclAT5G04960Ntab0042410NtPMEI62ⅤChr2021423.849.240ChloAT1G62770Ntab0415240NtPMEI63ⅤChr2021023.449.550CWAT1G62770Ntab0415270NtPMEI64ⅤChr2419521.489.140CWAT3G62820Ntab0948330NtPMEI68Ⅴscaffold_13121023.449.620CWAT1G62770Ntab0118820NtPMEI69Ⅴscaffold_13121323.809.250ChloAT1G62770Ntab0118870NtPMEI70Ⅴscaffold_15319421.719.850ChloAT5G20740Ntab0195860NtPMEI71Ⅴscaffold_27457363.346.941CWAT2G47030Ntab0485760NtPMEI72Ⅴscaffold_31757363.346.941CWAT2G47030Ntab0561510NtPMEI73Ⅴscaffold_34119520.9810.550ChloAT5G62350Ntab0595600NtPMEI75Ⅴscaffold_43422724.567.880ChloAT2G01610Ntab0684860NtPMEI77Ⅴscaffold_70919521.0110.020ChloAT5G62350Ntab0843700NtPMEI78Ⅴscaffold_72220623.337.590ChloAT1G14890Ntab0851410NtPMEI79Ⅴscaffold_74421123.129.510ChloAT1G62770Ntab0863320NtPMEI80Ⅴscaffold_80556462.437.701CWAT2G47030Ntab0894650NtPMEI81Ⅴscaffold_105955860.968.481VacuAT5G27870Ntab0025690NtPMEI82Ⅴscaffold_115419421.055.890ChloAT2G01610Ntab0063700NtPMEI83Ⅴscaffold_120257662.9010.092CytoAT5G04960Ntab0081000NtPMEI87Ⅴscaffold_211421022.959.480ChloAT1G62770Ntab0354790NtPMEI89Ⅴscaffold_262415216.649.350ChloAT3G62820Ntab0462850NtPMEI90Ⅴscaffold_399120622.968.220CWAT4G25260Ntab0658260
注:CW表示細(xì)胞壁,Nucl表示細(xì)胞核,Mito表示線粒體,Chlo表示葉綠體,Cyto表示細(xì)胞質(zhì),E.R.表示內(nèi)質(zhì)網(wǎng),Vacu表示液泡,Plas表示質(zhì)粒。
從上述分析結(jié)果可以看出,NtPMEI同一亞家族中蛋白成員及其編碼基因在結(jié)構(gòu)和理化特征上均比較相似,從側(cè)面反映了系統(tǒng)發(fā)育分析的可靠性。
2.3 NtPMEI家族保守基序分析及PMEI結(jié)構(gòu)域三維結(jié)構(gòu)預(yù)測
利用MEME4.11.2在線程序?qū)tPMEI家族90個(gè)成員蛋白序列進(jìn)行保守基序(motif)分析,以便進(jìn)一步了解NtPMEI家族中蛋白氨基酸序列的保守性,共鑒定出8個(gè)保守基序(圖2)。
使用Pfam和SMART對每個(gè)保守基序進(jìn)行注釋分析,發(fā)現(xiàn)有3個(gè)保守基序與PMEI結(jié)構(gòu)域重合,分別為motif2、motif7、motif8。對擬南芥PMEI蛋白序列進(jìn)行保守基序分析,同樣鑒定出PMEI結(jié)構(gòu)域序列對應(yīng)3個(gè)相同的保守基序,分別為motif2、motif7、motif8(圖3),與煙草PMEI的保守基序相同,證明了對煙草序列進(jìn)行保守基序分析結(jié)果的可靠性。與二級結(jié)構(gòu)相比較,這3個(gè)保守基序分別對應(yīng)PMEI的活性區(qū)域和氮末端螺旋區(qū)域。因此,推測煙草中moti2、moti7組成NtPMEI的活性區(qū)域,motif8維持NtPMEI結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。
以第Ⅳ亞家族為例,將其成員NtPMEI15、NtPMEI58、NtPMEI65與擬南芥AtPMEI1進(jìn)行多序列比對,發(fā)現(xiàn)煙草和擬南芥的PMEI結(jié)構(gòu)域序列相似,都有4個(gè)極保守的半胱氨酸殘基(圖4-A)。選擇PMEI結(jié)構(gòu)保守的NtPMEI65進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域的三維結(jié)構(gòu)預(yù)測,與擬南芥PMEI的三維結(jié)構(gòu)(圖4-B)進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)煙草的PMEI結(jié)構(gòu)同樣由4條長的反向平行的α螺旋和3條短的α螺旋組成(圖4-C)。
從普通煙草高通量轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù)庫中提取PMEI基因家族在煙草10個(gè)組織的表達(dá)量數(shù)據(jù),包括播種后種子、葉脈、葉片(離體24 h)、愈傷組織、幼根、幼葉、成熟根、成熟葉、花芽、莖。對獲得的數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,利用R語言將數(shù)據(jù)進(jìn)行可視化,繪制熱圖。
由圖5可以看出,有28個(gè)NtPMEI成員在所有組織中均沒有表達(dá),其余62個(gè)成員分別在不同時(shí)期、不同組織中有所表達(dá),約占整個(gè)亞家族的68.9%,表明大部分NtPMEI成員參與煙草的生長發(fā)育過程。其中有11個(gè)成員在所有組織中都有表達(dá),但在不同組織中的表達(dá)量有明顯差異。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),不同亞家族成員在不同組織中的表達(dá)情況有較大差異,具有一定的組織特異性。第Ⅱ、Ⅲ亞家族成員在各組織中的表達(dá)量很低;第Ⅰ亞家族中有3個(gè)成員在所選取的10個(gè)組織中未有表達(dá),其他成員在不同組織中均有表達(dá),在幼根、花芽和莖中表達(dá)數(shù)較多;第Ⅳ亞家族成員在葉脈、莖中的表達(dá)量較高;第Ⅴ亞家族成員廣泛參與植物各階段的發(fā)育,其中在葉脈、幼葉、幼根和莖中的表達(dá)量較高。分析在幼根、成熟根中表達(dá)的基因發(fā)現(xiàn),在幼根中表達(dá)量較高的基因在成熟根中絕大多數(shù)也有表達(dá)而且表達(dá)量相對較高,但相比在成熟根中的表達(dá)量較低。結(jié)果分析表明,NtPMEI基因家族在不同組織中的表達(dá)存在差異,這可能與基因的表達(dá)模式以及基因在組織中特異性表達(dá)和環(huán)境因素有關(guān)。
為驗(yàn)證基因芯片數(shù)據(jù)分析的可靠性,本研究選取煙草8個(gè)不同時(shí)期的組織提取RNA并反轉(zhuǎn)為cDNA,進(jìn)行5個(gè)NtPMEI基因在其中的表達(dá)量驗(yàn)證。圖6顯示NtPMEI1、NtPMEI11、NtPMEI12、NtPMEI18和NtPMEI84在煙草(HD)幼苗期根、莖、葉、葉脈和成熟期根、莖、葉、葉脈及花芽中的表達(dá)情況??傮w上看出,這5個(gè)基因在所選取的組織中均有表達(dá),在不同組織中的表達(dá)量存在明顯差異,但表達(dá)趨勢和芯片數(shù)據(jù)大體一致。NtPMEI1、NtPMEI11和NtPMEI12 在花芽中的表達(dá)量相對較高,而NtPMEI1、NtPMEI11在成熟期的葉中幾乎不表達(dá);NtPMEI12在幼苗期的莖和成熟期的葉中幾乎不表達(dá),在幼苗期的葉脈中表達(dá)量也很低;NtPMEI18在成熟期的根、葉脈中表達(dá)量相對較高;NtPMEI84在幼苗期的葉中表達(dá)量相對較高。比較各基因在幼苗根、成熟根中的表達(dá)量發(fā)現(xiàn),除NtPMEI12外,其他4個(gè)基因在成熟根中的表達(dá)量均呈下調(diào)趨勢。
前人研究表明,PMEI家族在植物果實(shí)成熟軟化、器官脫落和衰老、花粉發(fā)育、花粉管生長和抗逆性等多個(gè)生長發(fā)育階段均發(fā)揮重要作用。煙草是分子生物學(xué)研究的模式植物,中國煙草基因組計(jì)劃的完成,為煙草基因組PMEI家族的鑒定和進(jìn)一步的功能研究提供了便利。本研究采用生物信息學(xué)方法,從普通煙草基因組中鑒定出90條NtPMEI基因家族成員。系統(tǒng)發(fā)生分析結(jié)果表明,煙草PMEI家族分成5個(gè)亞家族,同一亞家族成員都能較好地聚為一類,并且相應(yīng)的結(jié)構(gòu)域類型與前人研究的基本一致。對基因中內(nèi)含子和外顯子的組成進(jìn)行分析,可為基因在進(jìn)化分析研究中提供重要證據(jù)[38]。本研究對候選NtPMEI基因家族各成員的內(nèi)含子數(shù)量進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),大多數(shù)NtPMEI基因家族各成員的基因結(jié)構(gòu)中都不包含內(nèi)含子,部分基因包含1~2個(gè)內(nèi)含子,只有NtPMEI1、NtPMEI42分別含有6、5個(gè)內(nèi)含子,表明NtPMEI基因家族各基因間保守性較高,該基因家族進(jìn)化程度比較高。通過將煙草PMEI結(jié)構(gòu)域保守序列與擬南芥PMEI序列作多序列比對分析,發(fā)現(xiàn)煙草PMEI序列中也含有4個(gè)極保守的半胱氨酸殘基,形成2個(gè)二硫鍵,維持PMEI的三維結(jié)構(gòu)[39]。通過以第Ⅳ亞家族中的NtPMEI65為例作三維結(jié)構(gòu)預(yù)測,發(fā)現(xiàn)煙草PMEI的三級結(jié)構(gòu)和擬南芥極為相似。
組織表達(dá)分析發(fā)現(xiàn),在不同組織中均有NtPMEI成員進(jìn)行表達(dá),說明該基因家族成員廣泛參與了煙草的生長發(fā)育過程。Wolf等的研究發(fā)現(xiàn),AtPMEI1(AT1G48020)和AtPMEI2(AT3G17220)對促進(jìn)花粉及花粉管的形成具有一定的作用[40-41]。在系統(tǒng)進(jìn)化樹中,煙草中的NtPMEI3、NtPMEI19、NtPMEI50和NtPMEI53與AtPMEI1、AtPMEI2基因高度同源,推測這4個(gè)基因在煙草中也能夠影響花粉和花粉管的形成與發(fā)育。部分NtPMEI基因的驗(yàn)證結(jié)果也同樣表明,所選取的5個(gè)NtPMEIs在普通煙草的花都中有表達(dá),表明這幾個(gè)基因參與花的發(fā)育過程。相關(guān)研究表明,PMEI基因的敲除和過表達(dá)都會對擬南芥的生理特性產(chǎn)生影響。Peaucelle等通過對AtPMEI3轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)AtPMEI3過表達(dá)會引起分生組織中同聚半乳糖醛酸(HGA)高度甲酯化, 并且影響葉序的發(fā)育[42]。煙草中的NtPMEI41、NtPMEI48、NtPMEI54和NtPMEI70與AtPMEI3基因高度同源,推測這4個(gè)基因在煙草中過表達(dá)也會影響分生組織中HGA的甲酯化程度和葉序的發(fā)育。Müller等發(fā)現(xiàn),AtPMEI5在擬南芥中過表達(dá)會引起不正常的發(fā)育形態(tài),如發(fā)芽率升高、莖卷曲和器官融合[43-44]。通過系統(tǒng)發(fā)育分析發(fā)現(xiàn),NtPMEI基因家族中NtPMEI14、NtPMEI34、NtPMEI35、NtPMEI61和NtPMEI65與AtPMEI5高度同源,推測這5個(gè)基因在煙草中過表達(dá)也會導(dǎo)致植株的不正常發(fā)育。An等發(fā)現(xiàn),辣椒中的CaPMEI1(A5X5I9)基因與水楊酸(SA)信號調(diào)節(jié)有關(guān),能夠響應(yīng)逆境脅迫[26]。通過序列相似性比對分析,發(fā)現(xiàn)煙草中的NtPMEI4、NtPMEI22和NtPMEI23與A5X5I9基因高度同源,推測這3個(gè)基因在煙草中與抗非生物脅迫有關(guān)。Saez-Aguayo等研究發(fā)現(xiàn),擬南芥種皮表皮細(xì)胞中的AtPMEI6(AT2G47670)通過抑制同聚半乳糖醛酸的甲酯化,從而提高種皮黏液質(zhì)的分泌[45],通過序列相似性比對分析發(fā)現(xiàn),煙草中的NtPMEI64、NtPMEI89與AtPMEI6基因高度同源,推測這2個(gè)基因在煙草中可能行使相似的功能。
綜上,本研究對普通煙草基因組中的90個(gè)PMEI家族成員進(jìn)行了進(jìn)化分析、蛋白理化性質(zhì)和功能域分析,確定了其在染色體上的位置,并通過分析芯片數(shù)據(jù)和熒光定量試驗(yàn)驗(yàn)證了部分成員的組織表達(dá)模式。通過本研究,對煙草PMEI家族成員有了初步了解,為今后PMEI家族成員的功能研究奠定了基礎(chǔ)。為了更好地了解煙草PMEI家族成員的結(jié)構(gòu)和功能,下一步將對相關(guān)基因進(jìn)行克隆、表達(dá)模式分析、功能驗(yàn)證等,探索其在煙草生長發(fā)育中的作用。
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[1]Yu L,Shi D,Li J,et al. CELLULOSE SYNTHASE-LIKE A2,a glucomannan synthase,is involved in maintaining adherent mucilage structure inArabidopsisseed[J]. Plant Physiology,2014,164(4):1842-1856.
[2]Ridley B L,O’Neill M A,Mohnen D A. Pectins:structure,biosynthesis,and oligogalacturonide-related signaling[J]. Phytochemistry,2001,57(6):929-967.
[3]Wong D. Enzymatic deconstruction of backbone structures of the ramified regions in pectins[J]. Protein Journal,2008,27(1):30-42.
[4]Zandleven J,S?rensen S O,Harholt J,et al. Xylogalacturonan exists in cell walls from various tissues ofArabidopsisthaliana[J]. Phytochemistry,2007,68(8):1219-1226.
[5]Castillejo C,de La Fuente J I,Iannetta P,et al. Pectin esterase gene family in strawberry fruit:study of FaPE1,a ripening-specific isoform[J]. Journal of Experimental Botany,2004,55(398):909-918.
[6]Louvet R,Cavel E,Gutierrez L,et al. Comprehensive expression profiling of the pectin methylesterase gene family during silique development inArabidopsisthaliana[J]. Planta,2006,224(4):782-791.
[7]Zhu S H,Zhou J. Effects of nitric oxide on fatty acid composition in peach fruits during storage[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2006,54(25):9447-9452.
[8]Bosch M,Cheung A Y,Hepler P K. Pectin methylesterase,a regulator of pollen tube growth[J]. Plant Physiology,2005,138(3):1334-1346.
[9]Francis K E,Lam S Y,Copenhaver G P. Separation ofArabidopsispollen tetrads is regulated by QUARTET1,a pectin methylesterase gene[J]. Plant Physiology,2006,142(3):1004-1013.
[10]Tian G W,Chen M H,Zaltsman A,et al. Pollen-specific pectin methylesterase involved in pollen tube growth[J]. Developmental Biology,2006,294(1):83-91.
[11]Collmer A C,Keen N T. The role of pectic enzymes in plant pathogenesis[J]. Annual Review of Phytopathology,2003,24(1):383-409.
[12]Schmohl N,Pilling J,F(xiàn)isahn J,et al. Pectin methylesterase modulates aluminium sensitivity inZeamaysandSolanumtuberosum[J]. Physiologia Plantarum,2001,109(4):419-427.
[13]于海偉,陳寶剛. 白樺果膠甲酯酶抑制劑(PMEI)基因克隆及序列分析[J]. 防護(hù)林科技,2012(1):64-67.
[14]霍如雪,劉振寧,楊 青,等. 桃PME基因家族的鑒定與分析[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(5):24-30.
[15]Sénéchal F,L’Enfant M,Domon J M,et al. Tuning of pectin methylesterification:PECTIN METHYLESTERASE INHIBITOR 7 modulates the processive activity of co-expressed PECTIN METHYLESTERASE 3 in a pH-dependent manner[J]. Journal of Biological Chemistry,2015,290(38):23320-23335.
[16]Senechal F,Mareck A,Marcelo P,et al.ArabidopsisPME17 activity can be controlled by pectin methylesterase inhibitor4[J]. Plant Signaling & Behavior,2015,10(2):e983351.
[17]Markovic O,Janecek S. Pectin methylesterases:sequence-structural features and phylogenetic relationships[J]. Carbohydrate Research,2004,339(13):2281-2295.
[18]Hothorn M,Wolf S,Aloy P,et al. Structural insights into the target specificity of plant invertase and pectin methylesterase inhibitory proteins[J]. Plant Cell,2004,16(12):3437-3447.
[19]Di Matteo A,Giovane A,Raiola A,et al. Structural basis for the interaction between pectin methylesterase and a specific inhibitor protein[J]. Plant Cell,2005,17(3):849-858.
[20]梅曉宏,陳燕卉,高紅巖,等. 果膠甲酯酶抑制劑的研究進(jìn)展[J]. 食品科技,2008,33(6):64-68.
[21]Juge N. Plant protein inhibitors of cell wall degrading enzymes[J]. Trends in Plant Science,2006,11(7):359-367.
[22]Juge N,Svensson B. Proteinaceous inhibitors of carbohydrate‐active enzymes in cereals:implication in agriculture,cereal processing and nutrition[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture,2006,86(11):1573-1586.
[23]Reca I B,Lionetti V,Camardella L,et al. A functional pectin methylesterase inhibitor protein (SolyPMEI) is expressed during tomato fruit ripening and interacts with PME-1[J]. Plant Molecular Biology,2012,79(4/5):429-442.
[24]Lionetti V,Raiola A,Mattei B,et al. The grapevineVvPMEI1 gene encodes a novel functional pectin methylesterase inhibitor associated to grape berry development[J]. PLoS One,2015,10(7):e0133810.
[25]Loake G,Grant M. Salicylic acid in plant defence—the players and protagonists[J]. Current Opinion in Plant Biology,2007,10(5):466-472.
[26]An S H,Sohn K H,Choi H W,et al. Pepper pectin methylesterase inhibitor protein CaPMEI1 is required for antifungal activity,basal disease resistance and abiotic stress tolerance[J]. Planta,2008,228(1):61-78.
[27]Tsai Y C,Hong C Y,Liu L F,et al. Expression of ascorbate peroxidase and glutathione reductase in roots of rice seedlings in response to NaCl and H2O2[J]. Journal of Plant Physiology,2005,162(3):291-299.
[28]任曉紅,陳 剛,馬海燕,等. 烤煙細(xì)胞壁物質(zhì)對煙葉質(zhì)量影響研究[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2010,26(4):113-116.
[29]閆克玉,閆洪洋,李興波,等. 烤煙煙葉細(xì)胞壁物質(zhì)的對比分析[J]. 煙草科技,2005(10):6-11.
[30]李興波,閻克玉,閻洪洋,等. 河南烤煙(40級)細(xì)胞壁物質(zhì)含量及規(guī)律性研究[J]. 鄭州輕工業(yè)學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),1999,14(3):27-30.
[31]Wang M J,Yuan D J,Gao W H,et al. A comparative genome analysis of PME and PMEI families reveals the evolution of pectin metabolism in plant cell walls[J]. PLoS One,2013,8(8):e72082.
[32]Nakano T,Suzuki K,F(xiàn)ujimura T,et al. Genome-wide analysis of theERFgene family in Arabidopsis and rice[J]. Plant Physiology,2006,140(2):411-432.
[33]Kim S,Park M,Yeom S I,et al. Genome sequence of the hot pepper provides insights into the evolution of pungency inCapsicumspecies[J]. Nature Genetics,2014,46(3):270-278.
[34]Artimo P,Jonnalagedda M,Arnold K A,et al. ExPASy:SIB bioinformatics resource portal[J]. Nucleic Acids Research,2012,40:W597-W603.
[35]Tamura K,Peterson D,Peterson N,et al. MEGA5:molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood,evolutionary distance,and maximum parsimony methods[J]. Molecular Biology and Evolution,2011,28(10):2731-2739.
[36]Tamura K,Stecher G,Peterson D,et al. MEGA6:molecular evolutionary genetics analysis version 6.0[J]. Molecular Biology and Evolution,2013,30(12):2725-2729.
[37]Gu Y B,Ji Z R,Chi F M,et al. Bioinformatics and expression analysis of theWRKYgene family in apple[J]. Scientia Agricultura Sinica,2015,48(16):229-230.
[38]吳潔云. 灰葡萄孢胞壁降解酶,角質(zhì)酶及其對番茄植株的致病作用[D]. 揚(yáng)州:揚(yáng)州大學(xué),2007.
[39]楊模坤. 葉綠體的結(jié)構(gòu)和化學(xué)[J]. 植物生理學(xué)報(bào),1963(3):40-47.
[40]Wolf S,Grsic-Rausch S,Rausch T,et al. Identification of pollen-expressed pectin methylesterase inhibitors inArabidopsis[J]. FEBS Letters,2003,555(3):551-555.
[41]Roeckel N,Wolf S,Kost B,et al. Elaborate spatial patterning of cell-wall PME and PMEI at the pollen tube tip involves PMEI endocytosis,and reflects the distribution of esterified and de-esterified pectins[J]. Plant Journal,2008,53(1):133-143.
[42]Peaucelle A,Louvet R,Johansen J N,et al.Arabidopsisphyllotaxis is controlled by the methyl-esterification status of cell-wall pectins[J]. Current Biology,2008,18(24):1943-1948.
[43]Müller K,Levesque-Tremblay G,Bartels S,et al. Demethylesterification of cell wall pectins inArabidopsisplays a role in Seed germination[J]. Plant Physiology,2013,161(1):305-316.
[44]Müller K,Levesque-Tremblay G,F(xiàn)ernandes A,et al. Overexpression of a pectin methylesterase inhibitor inArabidopsisthalianaleads to altered growth morphology of the stem and defective organ separation[J]. Plant Signaling & Behavior,2013,8(12):e26464.
[45]Saez-Aguayo S,Ralet M C,Berger A A,et al. PECTIN METHYLESTERASE INHIBITOR6 promotesArabidopsismucilage release by limiting methylesterification of homogalacturonan in seed coat epidermal cells[J]. Plant Cell,2013,25(1):308-323.