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        紫參薯查爾酮合成酶及異構酶基因的克隆與表達分析

        2018-05-14 12:03:31趙景梅黃東益張青許云
        熱帶作物學報 2018年5期
        關鍵詞:表達分析基因克隆花青素

        趙景梅 黃東益 張青 許云

        摘 要 查爾酮合成酶及其異構酶是黃酮類化合物合成途徑中的2個關鍵酶,為研究其在紫參薯花青素合成途徑中的功能,利用RT-PCR技術從紫參薯Da56塊莖中克隆到查爾酮合成酶(chalcone synthase,CHS)和查爾酮異構酶(chalcone isomerase,CHI)基因,分別命名為DaCHS和DaCHI。結果表明:DaCHS基因包含825 bp的完整開放閱讀框(ORF),預測編碼274個氨基酸;DaCHI基因包含663 bp的完整開放閱讀框,預測編碼221個氨基酸。生物信息學分析結果表明,紫參薯DaCHS與油棕EgCHS親緣關系最近,氨基酸相似性達到90%;紫參薯DaCHI與野茶樹CaCHI親緣關系最近,氨基酸相似性達到67%。實時熒光定量PCR檢測結果表明,DaCHS和DaCHI基因均具有組織表達特異性,其中DaCHS在花中相對表達量最高,而DaCHI在塊莖中相對表達量最高;在紫參薯塊莖發(fā)育不同時期的表達分析表明,DaCHS、DaCHI均在薯塊膨大期相對表達量最高。本研究通過對DaCHS和DaCHI基因全長cDNA序列的克隆與分析,為紫參薯花青素合成途徑的遺傳調(diào)控及花青素形成機理的研究奠定基礎。

        關鍵詞 花青素;查爾酮合成酶;查爾酮合成異構酶;基因克隆;表達分析

        中圖分類號 S539 文獻標識碼 A

        Abstract Chalcone synthase (CHS) and Chalcone isomerase (CHI) play an important role in the process of flavonoids synthesis. To investigate the function of the DaCHS and DaCHI gene in anthocyanin biosynthesis pathway of Dioscorea alata. L., the complete genes of chalcone synthase(CHS) and chalcone isomerase(CHI) were isolated from the turber of D. alata. by reverse transcription-polymerase chain reaction ( RT-PCR) named as DaCHS and DaCHI. Sequencing results showed that the cDNA sequence of DaCHS gene contained an open reading frame (ORF) of 825 bp encoding a protenin of 274 amino acids, DaCHI gene contained an open reading frame (ORF) of 663 bp encoding a protenin of 221 amino acids. Phylogeneticanalyses showed that DaCHS and DaCHI had high identity to CHS and CHI protein of many plants. The highly similarity of DaCHS protenin was EgCHS protenin with 90% amino identity. The highly similarity of DaCHS protenin was CaCHI protenin with 67% amino identity. Quantitative real-time PCR analysis showed that the DaCHS and DaCHI expression had tissue specificity. The relative expression level of flowers were the highest in DaCHS. In DaCHI, the tubers had the hightest relative expression level. That expression analysis in different development periods of D. alata. tuber, DaCHS and DaCHI all had the hightest relative expression in expansion period of tubers.The cloning and analysis of full-length cDNA sequences of DaCHS and DaCHI genes should lay a foundation for the genetic regulation of anthocyanin biosynthesis pathway and the mechanism of anthocyanin formation.

        Key words anthocyanin; chalcone synthase; chalcone isomerase; gene cloning; expression analysis

        doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2018.05.014

        紫參薯(Dioscorea alata L.)又名紫大薯、腳板薯,屬于薯蕷科(Dioscoreaceae)薯蕷屬(Dioscorea),是一年生或多年生草質(zhì)纏繞藤本植物,也是一種常見的塊莖類糧食作物,占世界塊莖類糧食作物產(chǎn)量的6%[1],與其它塊莖類作物相比,紫參薯在營養(yǎng)上更具優(yōu)勢,不僅含有淀粉、蛋白質(zhì)、脂類物質(zhì),還含有花青素、維生素和礦物質(zhì)[2]。紫參薯因其塊莖中含有大量花青素,可降血脂、抗氧化、降血壓,具有很好的藥用價值[3],在中國已被作為傳統(tǒng)的保健食品[4]。

        查爾酮合成酶及其異構酶一同構成類黃酮合成途徑的限速酶[5]。CHS是類黃酮生物合成過程中第一個關鍵酶,自1983年第1個序列發(fā)表后[6],已從多種植物中克隆到了CHS基因。Vander等[7]利用反義RNA技術抑制矮牽牛CHS基因,導致花青素的合成途徑受阻,矮牽?;ㄉ勺仙兂砂咨HI是黃酮類化合物代謝途徑中的關鍵酶,含量降低可導致查爾酮大量積累,同時黃酮類化合物含量減少[8]。Bednar等[9]研究發(fā)現(xiàn)在牽牛花中CHI基因表達量的減少,導致黃酮類化合物減少,從而使花呈現(xiàn)綠色。

        查爾酮合成酶催化4-香豆酰-CoA(4-coumaricacyl-CoA)與丙二酰-CoA (malonyl-CoA)縮合形成柚苷配基查爾酮,為黃酮類物質(zhì)提供基本的碳架結構,也為花青素糖苷合成提供保證[10]。查爾酮異構酶可催化查爾酮合成柚皮素[11],即底物先由查爾酮合成酶催化,再通過查爾酮合成異構酶異構成不同的化合物。目前對紫參薯的研究主要集中在營養(yǎng)成分分析[12]、栽培[13]、花青素提取工藝[14]、穩(wěn)定性與氧化性[15]及藥理作用的研究[16]等方面,對紫參薯花青素合成的基因表達調(diào)控鮮見報道。本研究通過對紫參薯DaCHS和DaCHI基因的克隆與生物信息學分析,并對DaCHS和DaCHI基因在紫參薯不同組織中及塊莖發(fā)育的不同時期進行實時熒光定量研究,為紫參薯花青素合成途徑的遺傳調(diào)控及花青素形成機理的研究奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        紫參薯Da56種植于海南大學儋州校區(qū)薯蕷種質(zhì)資源圃??寺≥d體pMD18-T Vector購于Takara公司;大腸桿菌DH5α由中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院橡膠研究所膠乳代謝課題組提供。TransTaqTE DNA Polymerase High Fidelity (HiFi)購自北京全式金生物技術有限公司;RNA提取試劑盒購自北京百泰克生物技術有限公司;LA Taq、SYBR@Premix Ex TaqTM(Perfect Real Time)和PrimerScriptTM RT Reagent Kit With gDNAEraser(Perfect Real Time)購自Takara Bio Company;Plasmid Mini Kit I(200 Preps)購自Omega Bio-Tek公司;PCR引物合成及測序由南京金斯瑞生物科技公司完成。

        1.2 方法

        1.2.1 總RNA的提取及cDNA第一鏈的合成 紫參薯不同組織和塊莖發(fā)育不同時期的RNA提取參照北京百泰克通用植物總RNA提取試劑盒操作手冊進行。反轉(zhuǎn)錄參照Takara公司反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行cDNA第一鏈的合成。

        1.2.2 紫參薯DaCHS和DaCHI基因的擴增 基于紫參薯Da56轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫,利用Primer5.0軟件設計CHS和CHI基因的上下游引物(表1)。以紫參薯塊莖的cDNA為模板進行擴增。PCR反應程序為:95 ℃ 3 min;95 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 90 s,35個循環(huán);72 ℃ 10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,回收目的片段與pMD18-T載體連接后轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,挑取陽性克隆送公司測序。

        1.2.3 紫參薯DaCHS 和DaCHI 基因的生物信息學分析 下載其他植物CHS、CHI基因所編碼的氨基酸序列,使用DNAMAN對氨基酸進行多重序列比對,使用MEGA6.0構建進化樹,并分析其同源性。

        1.2.4 紫參薯DaCHS 和DaCHI 基因的實時熒光定量PCR分析 利用實時熒光定量PCR分析DaCHS和DaCHI基因在紫參薯不同組織和塊莖發(fā)育不同時期的表達情況。根據(jù)所得cDNA序列設計熒光定量PCR引物,以毬-Actin作為內(nèi)參基因,引物序列見表1。以反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板,參照SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ(Perfect Real Time)說明書,在羅氏LightCycler? 96 system熒光定量PCR儀上擴增。PCR程序為:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,39個循環(huán);反應結束后增加溶解曲線。所得數(shù)據(jù)采用2-△△CT的方法計算相對表達量和方差,3次重復,求平均值。

        2 結果與分析

        2.1 紫參薯總RNA的提取及檢測

        對提取的紫參薯RNA用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,其28S和18S條帶清晰,完整性較好,且OD260/OD280 均在1.8~2.2 之間,可滿足后續(xù)實驗的要求。

        2.2 紫參薯DaCHS和DaCHI基因的克隆

        紫參薯CHS和CHI基因的PCR擴增產(chǎn)物經(jīng)1.2%的瓊脂糖凝膠電泳檢測結果見圖2,紫參薯CHS基因經(jīng)測序鑒定序列長922 bp,包含825 bp的完整開放閱讀框,42 bp的5非編碼區(qū)(UFR),97 bp的3非編碼區(qū)(UTR),基因命名為DaCHS;紫參薯CHI基因經(jīng)測序鑒定序列長764 bp,包含663 bp的完整開放閱讀框,31 bp的5非編碼區(qū)(UFR),68 bp的3非編碼區(qū)(UTR),基因命名為DaCHI。經(jīng)分析DaCHS、DaCHI基因具有完整的5和3末端,確認是紫參薯查爾酮合成酶和查爾酮異構酶基因的全長序列。

        2.3 紫參薯DaCHS和DaCHI蛋白的同源性分析

        利用NCBI Conserved Domain Search對DaCHS蛋白的氨基酸序列進行分析,結果顯示DaCHS蛋白的第17~274個氨基酸具有典型的CHS蛋白家族(PLN03172)成員特征,在NCBI下載12種植物CHS基因編碼的氨基酸序列,通過DNAMAN軟件進行氨基酸多重序列比對分析(圖3),結果顯示DaCHS蛋白的氨基酸序列與油棕CHS蛋白相似度高達90%。

        利用NCBI Conserved Domain Search對DaCHI進行序列分析,結果顯示DaCHI蛋白序列具有CHI蛋白普遍具有的2個保守結構域PLN02559和pfam02431。在NCBI下載12種植物CHI基因編碼的氨基酸序列,通過DNAMAN軟件進行氨基酸多重序列比對分析(圖4),結果顯示DaCHI蛋白的氨基酸序列與野茶樹的CHI蛋白相似度較高為67%。

        2.4 紫參薯DaCHS和DaCHI蛋白的系統(tǒng)進化分析

        將紫參薯CHS蛋白與9個不同物種的CHS同源蛋白進行系統(tǒng)進化分析,結果見圖5,紫參薯CHS蛋白與油棕(Elaeis guineensis)、木薯(Manihot esculenta)等物種的CHS蛋白聚為一類,而與甜橙(Citrus sinensis)、葡萄(Vitis vinifera)、相思樹(Acacia confusa)等物種的CHS蛋白親緣關系較遠。

        將紫參薯CHI蛋白與11個不同物種的CHI同源蛋白進行系統(tǒng)進化分析,結果見圖6,紫參薯CHI蛋白與野茶樹(Camellia sinensis)等物種CHI蛋白聚為一類,而與甘薯(Ipomoea batatas)、芝麻(Sesamum indicum)、橄欖(Canarium album)、龍眼(Dimocarpus longan)等物種CHI蛋白親緣關系較遠。

        2.5 DaCHS和DaCHI基因在紫參薯不同組織中及塊莖發(fā)育不同時期的表達分析

        實時熒光定量PCR分析結果表明,在紫參薯不同組織中,DaCHS在葉、花、皮和根中均有表達,其中在花中表達量最高,在塊莖中表達量最低;DaCHI在所有組織部位均有表達,其中在塊莖和花中表達量較高,在莖中表達量最低(圖7-A、圖8-A)。在紫參薯塊莖發(fā)育不同時期中,DaCHS和DaCHI均在塊莖膨大期表達量達到最高,而在塊莖發(fā)育的其它時期,DaCHS幾乎不表達,DaCHI在塊莖發(fā)育形成期具有較高的表達量(圖7-B、圖8-B)。表明DaCHS和DaCHI基因存在明顯的組織特異性和時空性。

        3 討論

        花青素的生物合成是受多基因共同調(diào)控的一個復雜過程,不是受單個基因催化調(diào)控的,在花青素合成過程中,其它基因旳表達及基因之間的協(xié)同或拮抗作用都可能對花青素的積累造成重要影響。本研究根據(jù)紫參薯Da56轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),利用RT-PCR技術,獲得花青素代謝途徑的上游基因DaCHS和DaCHI。BLAST比對結果發(fā)現(xiàn)DaCHS蛋白與葡萄、油棕和木薯的CHS蛋白高度同源,相似性分別為90%、89%和89%,該結果與Lanz等[17]的研究結果相符合。DaCHI蛋白與茶樹、蘆筍和玫瑰的CHI蛋白具有較高的同源性,相似性分別為67%、64%和63%,也有研究發(fā)現(xiàn)CHI在結構上變化較大,通常同源性在42%~65%之間,即使在同一物種中不同類型的CHI也會出現(xiàn)較大差異[18]。

        花青素含量在紫參薯不同組織中差異明顯,其含量在植株的生長發(fā)育過程中是逐漸積累的。同時,CHS和CHI基因在植物不同組織有著不同的表達模式[19]。Jiang等[20]在白菜研究中發(fā)現(xiàn)BcCHS基因僅在花藥和花瓣中特異表達,而在莖、葉等部位均不表達。石曉芳[21]在甘薯研究中發(fā)現(xiàn)8個甘薯品種的IbCHS基因均僅在葉、薯皮和薯肉中表達。Zhang等[22]在紫甘薯研究中發(fā)現(xiàn)IbCHI僅在根、莖和葉中表達。綜上所述,CHS和CHI基因均具有組織表達特異性,本研究利用實時熒光定量PCR分析DaCHS和DaCHI基因在紫參薯不同組織中的相對表達量,結果顯示DaCHS在葉、花、皮和根中均有表達,其中在花中表達量最高,而DaCHI在所有組織部位均有表達,其中在塊莖和花中均有較高的表達量。其表達量的差異可能是由于紫參薯不同組織部位花青素含量不同導致。

        CHS和CHI基因均為多基因家族,在發(fā)育調(diào)控和組織特異性調(diào)控下不同基因有著不同的作用,基因敏感程度的差異容易受到發(fā)育階段和外界環(huán)境刺激的誘導[19, 23]。Lalusin等[24]在研究紫甘薯塊根不同發(fā)育時期中花色苷關鍵酶基因的表達變化中,結果發(fā)現(xiàn)IbCHS和IbCHI在甘薯中的表達存在普遍性,均在甘薯發(fā)育早期表達量最高,中期表達量降低。在本研究中,DaCHS和DaCHI的表達量在紫參薯塊莖發(fā)育不同時期中均出現(xiàn)先上升后下降的現(xiàn)象,在塊莖發(fā)育的膨大期表達量達到最高,之后迅速下降。其可能是由于花青素的合成需要有足夠的糖作為前體物質(zhì),在塊莖發(fā)育的萌發(fā)期和形成期是個可溶性糖迅速積累的過程,在塊莖發(fā)育的膨大期達到最大,組織中的可溶性糖含量與花青素含量呈正相關關系[25],因此,在塊莖發(fā)育的膨大期可溶性糖含量積累至頂峰,同時花青素合成達到最大,從而花青素合成的關鍵基因DaCHS和DaCHI表達量也最高。

        參考文獻

        [1] Sharma S,Gupta R,Deswal R. Dioscorea alata tuber proteome analysis shows over thirty dioscorin isoforms and novel tuber proteins[J]. Plant Physiology & Biochemistry,2017,114:128-137.

        [2] Chow S T,Chiang B H,Chung Y C,et al. Effects of storage temperatures on the antioxidative activity and composition of yam[J]. Food Chemistry,2006,98(4):618-623.

        [3] Nagai T,Suzuki N,Nagashima T. Antioxidative activity of water extracts from the yam (Dioscorea opposita Thunb.) tuber mucilage tororo[J]. European Journal of Lipid Science & Technology,2006,108(6):526-531.

        [4] Liu Y W,Shang H F,Wang C K,et al. Immunomodulatory activity of dioscorin,the storage protein of yam (Dioscorea alata cv. Tainong No. 1) tuber[J]. Food and Chemical Toxicology,2007,45(11):2 312-2 318.

        [5] Akhar F K,Bagheri A,Moshtaghi N,et al. Analysis of chalcone synthase and chalcone isomerase gene expression in pigment production pathway at different flower colors of Petunia hybrida[J]. Jounal of Cell and Molecular Research,2016,8(1):8-14.

        [6] Reimold U,Kr?ger M,Kreuzaler F,et al. Coding and 3′ non-coding nucleotide sequence of chalcone synthase mRNA and assignment of amino acid sequence of the enzyme[J]. Embo Journal,1983,2(10):1 801-1 805.

        [7] Krol A R V D,Lenting P E,Veenstra J,et al. An anti-sense chalcone synthase gene in transgenic plants inhibits flower pigmentation[J]. Nature,1988,333(6 176):866-869.

        [8] 李琳玲,程 華,許 鋒. 植物查爾酮異構酶研究進展[J]. 生物技術通訊,2008,19(6):935-937.

        [9] Bednar R A,Hadcock J R. Purification and characterization of chalcone isomerase from soybeans[J]. Journal of Biological Chemistry,1988,263(20):9 582-9 588.

        [10] Heller W,Hahlbrock K. Highly purified “flavanone synthase” from parsley catalyzes the formation of naringenin chalcone[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics,1980,200(2):617-619.

        [11] Himadan N,Aoki T,Sato S. A cluster of genes encodes the two types of chalcone isomerase involved in the biosynthesis of general falavonoids and legume-specific 5-deoxy (iso) flavonoids in Lotus japonicus[J]. Plant Physiology,2003,131(3):941-951.

        [12] 于 東,林躍偉,陳桂星. 紫山藥營養(yǎng)成分分析研究[J]. 營養(yǎng)學報,2010,32(2):190-192.

        [13] 劉龐源,宋曙輝,張寶海. 紫山藥種質(zhì)資源的引進和栽培技術[J]. 中國蔬菜,2011(13):45-46.

        [14] Anumol J,Rafiya M. Extraction and evaluation of anthocyanin from Discorea alata (L.) for its application as a natural food colour[J]. The International Journal Of Science & Technoledge,2015,9(3):41-47.

        [15] Yoshida K,Kondo T,Goto T. Unusually stable monoacylated anthocyanin from purple yam Dioscorea alata[J]. Tetrahedron Letters,1991,32(40):5 579–5 580.

        [16] Chen T,Hu S,Zhang H,et al. Anti-inflammatory effects of Dioscorea alata L. anthocyanins in a TNBS-induced colitis model[J]. Food & Function,2017,8(2):659-669.

        [17] Lanz T,Tropf S,Marner F J,et al. The role of cysteines in polyketide synthase site directeted mutagenesis of resveratrol and chalcone synthase,two enzymes in different plant-specific pathways[J]. Journal of Biological Chemistry,1991,266 (15):9 971-9 976.

        [18] Druka A,Kudrna D,Rostoks N,et al. Chalcone isomerase gene from rice (Oryza sativa) and barley (Hordeum vulgare):physical,genetic and mutation mapping[J]. Gene,2003,302(1):171-178.

        [19] Xu F,Cheng S Y,Cheng S F,et al. Time course of expression of chalcone synthase gene in Ginkgo biloba[J]. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology,2007,33(4):309-317.

        [20 Jiang M,Cao J. Sequence variation of chalcone synthase gene in a spontaneous white-flower mutant of Chinese cabbage-pak-choi[J]. Molecular Biology Reports,2008,35(4):507-512.

        [21] 石曉芳. 甘薯花青素合成途徑基因表達差異的研究[D]. 重慶:西南大學,2013.

        [22] Zhang Z,Qiang W,Liu X,et al. Molecular cloning and characterization of the chalcone isomerase gene from sweetpotato[J]. African Journal of Biotechnology,2011,10(65):14 443-14 449.

        [23] Shimada N,Aoki T,Sato S,et al. A cluster of genes encodes the two types of chalcone isomerase involved in the biosynthesis of general flavonoids and legume -specific 5-deoxy (iso)flavonoids in Lotus japonicus[J]. Plant Physiology,2003,131(3):941-951.

        [24] Lalusin A G,Nishita K,Kim S H,et al. A new MADS-box gene (IbMADS10) from sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam) is involved in the accumulation of anthocyanin[J]. Molecular Genetics & Genomics Mgg,2006,275(1):44-54.

        [25] 李 霞,王 欣,劉亞菊. 甘薯花青苷生物合成調(diào)控研究進展[J]. 分子植物育種,2014,12(3):567-576.

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