林羨 徐玉娟 肖更生 鄒波 唐道邦 余元善 吳繼軍

摘? 要? 以辣木葉為研究對(duì)象，考察熱風(fēng)干燥、真空微波干燥及真空冷凍干燥等脫水方式對(duì)辣木葉營養(yǎng)活性成分、抗氧化活性及色澤的影響。結(jié)果表明，不同干燥方法均會(huì)引起辣木葉酚類物質(zhì)、維生素C、異硫氰酸酯、多糖類物質(zhì)等營養(yǎng)活性成分的損失，以及色澤的劣變和葉綠素的降解，并造成美拉德反應(yīng)產(chǎn)物5-羥甲基糠醛（5-hmf）的累積。然而，通過真空微波干燥和冷凍干燥能有效避免辣木葉氧自由基清除能力的下降。不同的干燥方式各有利弊。其中冷凍干燥能較好地保持辣木葉中的維生素C、葉綠素，真空微波干燥能較好地減少酚類物質(zhì)、多糖類物質(zhì)等活性成分和抗氧化活性的損失并減少5-hmf的累積。對(duì)于熱風(fēng)干燥，熱風(fēng)溫度對(duì)辣木葉品質(zhì)的影響顯著，適宜的溫度有助于γ-氨基丁酸、異硫氰酸酯、多糖類物質(zhì)等活性成分的保留。綜合考慮干燥方式對(duì)辣木葉品質(zhì)的影響及干燥效率，選擇真空微波干燥作為最適宜的辣木葉干燥方式。

關(guān)鍵詞? 辣木葉;干燥方式;營養(yǎng)活性成分;抗氧化性;色澤中圖分類號(hào)? TS255 ?????文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼? A

DOI10.3969/j.issn.1000-2561.2018.12.020

辣木（Moringa oleiferaLam.）為辣木科辣木屬多年生植物，廣泛種植于非洲、亞洲西南部以及南美洲等地。辣木的葉、果實(shí)、花、種子等部位均含有豐富的營養(yǎng)^[1]。辣木葉具有高蛋白質(zhì)、高鈣、高鉀、高鎂、高纖維、高維生素、低脂肪、低膽固醇等特點(diǎn)^[2]。此外，辣木葉中還含有異硫氰酸芐酯、黃酮醇和酚酸等豐富的天然活性成分^[3-5]，并被確證具有抗氧化、降血糖、抑制病菌、抑制癌細(xì)胞等功效^[6-9]，適宜用于功能性食品的研發(fā)。

辣木葉采后容易腐爛變質(zhì)，不耐貯藏。將辣木葉干燥制粉，除了可以有效延長辣木葉的保藏期、減少運(yùn)輸成本外，還能增加產(chǎn)品的應(yīng)用范圍，作為配方生產(chǎn)多種健康食品。然而干燥及制粉加工，會(huì)不可避免地引起原料的活性成分損失、色澤劣變等問題^[10-11]。目前，關(guān)于干燥方式對(duì)辣木葉品質(zhì)，尤其是對(duì)其營養(yǎng)活性成分影響的研究十分有限。Saini等^[12]研究了熱風(fēng)干燥、微波干燥、凍干及曬干等方式對(duì)辣木葉類胡蘿卜素成分、維生素C、α-生育酚及總酚含量的影響。郭剛軍等^[13]研究了陰干、曬干、熱風(fēng)干燥、微波干燥及遠(yuǎn)紅外干燥對(duì)辣木葉維生素組成、氨基酸組成、黃酮、總酚及多糖等成分的影響。Wangcharoen等^[10]研究了熱風(fēng)烘干過程辣木葉抗氧化活性、色澤及總酚含量的變化情況。然而γ-氨基丁酸和異硫氰酸酯等在辣木葉含量較高的重要營養(yǎng)活性成分的變化并未見報(bào)道。真空微波干燥是將真空干燥和微波干燥兩項(xiàng)技術(shù)結(jié)合起來^[14]，能在較低的溫度下實(shí)現(xiàn)快速脫水，其在辣木葉干燥中的應(yīng)用也未見報(bào)道。

因此本文綜合比較熱風(fēng)干燥、冷凍干燥以及真空微波干燥等不同干燥方式對(duì)辣木葉酚類組分、γ-氨基丁酸、維生素C、異硫氰酸酯、多糖等營養(yǎng)活性成分，以及抗氧化活性和色澤等品質(zhì)的影響，為辣木粉功能性食品基料生產(chǎn)技術(shù)的研發(fā)奠定基礎(chǔ)。

1? 材料與方法

1.1? 材料與試劑

1.1.1 ?材料 ?辣木葉由東莞市圣茵城市景觀農(nóng)業(yè)工程研究中心種植園提供。挑選成熟度一致、顏色均一的葉片用于干燥實(shí)驗(yàn)。

1.1.2? 試劑? 綠原酸、蘆丁、山奈酚、槲皮素、γ-氨基丁酸、維生素C、5-羥甲基糠醛標(biāo)準(zhǔn)品（上海源葉生物科技有限公司），異硫氰酸烯丙酯標(biāo)準(zhǔn)品（Sigma-aldrich公司）。

1.2? 儀器與設(shè)備

1.2.1? 干燥設(shè)備? 101-3-ABS型電熱鼓風(fēng)干燥箱：上?？坪憧萍紝?shí)業(yè)有限公司;RX-10ZK真空微波干燥機(jī)：廣州榮興工業(yè)微波設(shè)備有限公司;ST85B3-1真空冷凍干燥機(jī)：美國Milirock公司。

1.2.2? 實(shí)驗(yàn)儀器 ?熒光分光光度計(jì)：德國heraeus有限公司;LC-20A高效液相色譜儀：日本島津公司;UltraScan VIS CIE標(biāo)準(zhǔn)可見光范圍色差儀：美國Hunter Lab公司;UV-1800紫外可見分光光度計(jì)：日本島津公司;Sorvall Stratos高速冷凍離心機(jī)：美國Thermo Scientific公司。

1.3? 方法

1.3.1? 辣木葉的干燥 ?如表1所示，采用5種干燥條件將辣木葉脫水至含水量為（5±0.5）%，用粉碎機(jī)打碎成粉末，用于品質(zhì)測(cè)定。對(duì)照組為辣木葉新鮮樣品。

1.3.2? 相關(guān)指標(biāo)的測(cè)定 ?（1）酚組分的測(cè)定：參考Valdez-Solana等^[1]的方法。酚組分的提?。壕_稱取辣木葉粉1 g，加20 mL 75%（V/V）乙醇，充分搖勻，超聲30 min，5 000 r/min離心5 min后，收集上清液;于沉淀中再次加入20 mL 75%（V/V）乙醇，充分搖勻，超聲30 min，5 000 r/min離心5 min后，收集上清液;集合2次收集的上清液，用75%（V/V）乙醇定容至50 mL，0.22 μm 濾膜過濾，用于HPLC分析。

HPLC分析條件。色譜柱：Wondasil C18柱（250 mm×4.6 mm，5 μm，日本島津）;流動(dòng)相A為4%的磷酸溶液，流動(dòng)相B為乙腈。梯度洗脫程序如下：0～10 min，8% B;10～55 min，8%～18% B;55～55.01 min，18%～70% B;55.01～ 60 min，70% B;60～60.01 min，70%～8% B;60.01～66 min，8% B;每個(gè)樣品之間平衡5 min，進(jìn)樣量20 μL，流速1 mL/min，檢測(cè)波長520 nm，柱溫40 ℃。采用外標(biāo)法定量分析單個(gè)花色苷的含量。

（2）γ-氨基丁酸（GABA）的測(cè)定：參考程威等^[15]的方法。GABA的提?。簻?zhǔn)確稱取辣木葉粉1 g，沸水浴提取1 h，過濾，定容至100 mL。

衍生化反應(yīng)：取辣木葉提取液100 μL于樣品瓶中，加入鄰苯二甲醛衍生液500 μL，渦旋振蕩5 s，靜置2 min后，過0.45 μm濾膜，進(jìn)樣。

HPLC分析條件：色譜柱為KinetexC18柱（4.6 mm ×150 mm，2.6 μm）;流動(dòng)相A為25 mmol/L的乙酸鈉，用4%的乙酸調(diào)pH至5.85～ 5.95;流動(dòng)相B為乙腈。流速：0.4 mL/min。檢測(cè)波長332nm，進(jìn)樣量10 μL，柱溫40 ℃。洗脫程序如下：0～30 min，10%～60% B;30～35 min，60% B;35～40 min，60%～10% B。

（3）維生素C含量的測(cè)定：參考Wang等^[16]的方法。準(zhǔn)確稱取辣木葉粉0.5 g，加入適量2%草酸，充分研磨后過濾。取樣品濾液5 mL，加入0.2 g已處理好的活性炭，充分振搖后過濾。然后分別吸取已氧化處理的樣品濾液1 mL于A管（樣品管）、B管（樣品空白管）。在A管中加入250 g/L乙酸鈉溶液1 mL，在B管中加入30 g/L硼酸-250 g/L 乙酸鈉溶液1 mL，充分混勻，暗處反應(yīng)20 min。在避光條件下，分別于A、B管準(zhǔn)確迅速地向各試管加入1 mL 0.2 g/L鄰苯二胺溶液，充分混勻，在暗室中避光反應(yīng)40 min后測(cè)定熒光強(qiáng)度。測(cè)定條件為：激發(fā)波長355 nm，發(fā)射波長425 nm，兩端狹縫均為5 nm;樣品熒光強(qiáng)度減去樣品空白熒光強(qiáng)度，得到相對(duì)的熒光強(qiáng)度。

（4）異硫氰酸酯含量測(cè)定：參考丁軻等^[17]的方法。異硫氰酸酯的提?。簻?zhǔn)確稱取辣木葉粉0.5 g，加pH 6.87的磷酸緩沖液浸提（料液比為1∶20）;水浴45 ℃，1.5 h，攪拌，冷卻，6 000 r/min離心10 min，取濾渣;石油醚萃取3次;40 ℃真空濃縮至干燥，待測(cè)。

異硫氰酸酯的測(cè)定：50%（V/V）乙醇將提取出來的異硫氰酸酯粗提物復(fù)溶，定容至100 mL，以50%（V/V）乙醇為空白，在243 nm波長處測(cè)定吸光值。以異硫氰酸烯丙酯作為標(biāo)準(zhǔn)品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。結(jié)果以每克干基所含異硫氰酸烯丙酯當(dāng)量表示。

（5）多糖含量的測(cè)定。多糖的提?。壕_稱取1.0 g辣木葉粉，以蒸餾水為提取液，料液比為1∶25，依次經(jīng)超聲600 W提取60 mim、60 ℃水溫浸提60 min后，4 500 r/min離心10 min，取上清液濃縮定容至50 mL。取10 mL上述多糖提取液，加40 mL無水乙醇，4 ℃靜止過夜，然后4 500 r/min離心10 min，取沉淀。蒸餾水溶解沉淀并定容至50 mL。多糖含量的測(cè)定采用苯酚-硫酸法。

（6）5-羥甲基糠醛（5-hmf）的測(cè)定：參考萬鵬^[18]的方法。5-hmf的提?。簻?zhǔn)確稱取辣木葉粉0.5 g，加入10 mL 50%（V/V）乙醇，超聲提?。?00 W）1 h后，5 000 r/min離心10 min，取其上清液，加入50%的乙醇，定容至25 mL，過0.45 μm有機(jī)濾膜。

HPLC分析條件：色譜柱Agilent Zorbax Eclipse XDB-C18（4.6 mm×250 mm，5 μm），柱溫30 ℃;紫外檢測(cè)，波長為280 nm;用10%甲醇和90%水（含1%乙酸）混合液作流動(dòng)相，流速0.6 mL/min;進(jìn)樣量10 μL.

1.4? 數(shù)據(jù)處理

每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。應(yīng)用SPSS 19.0軟件對(duì)所有數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析（ANOVA），用Duncan多重比較分析差異的顯著性。計(jì)算最小顯著差數(shù)LSD（p<0.05）值。

2? 結(jié)果與分析

2.1? 干燥方式對(duì)辣木葉酚類物質(zhì)成分的影響

采用高效液相色譜對(duì)辣木葉的多酚類化合物進(jìn)行分離，得到HPLC圖譜（圖1），通過標(biāo)準(zhǔn)品鑒定得到主要的多酚類化合物為綠原酸、蘆丁、山奈酚和槲皮素。表2為不同干燥方式對(duì)辣木葉酚組分含量的影響。結(jié)果表明，鮮樣中山奈酚和槲皮素為辣木葉的主要酚類物質(zhì)，其含量顯著高于綠原酸含量和蘆丁的含量。與鮮樣相比，所有干燥處理組的蘆丁、山奈酚和槲皮素含量均顯著下降，其中槲皮素含量損失最大，達(dá)70%以上。而綠原酸含量則在干燥后顯著增加。經(jīng)熱風(fēng)干燥處理后，辣木葉中山奈酚和槲皮素的差異不顯著，但是熱風(fēng)干燥溫度的提高會(huì)導(dǎo)致蘆丁含量的損失加大和綠原酸產(chǎn)物的增加。比較不同干燥方式對(duì)辣木葉中酚組分的影響發(fā)現(xiàn)，真空微波干燥處理組的蘆丁和山奈酚含量最高，而真空微波干燥處理和冷凍干燥處理組的綠原酸生成量均顯著低于熱風(fēng)干燥處理組。比較4種主要酚類物質(zhì)含量的總和發(fā)現(xiàn)，熱風(fēng)不同溫度的干燥處理組和冷凍干燥處理組的總酚含量差異不顯著。而真空微波干燥的辣木葉總酚保留率較高，其含量比熱風(fēng)干燥

2.2? 干燥方式對(duì)辣木葉其他主要營養(yǎng)活性成分的影響

除了多酚類化合物，辣木葉中還具有GABA、維生素C、葉綠素、異硫氰酸酯類、多糖類等多種重要活性成分。不同干燥方式對(duì)辣木葉中活性成分的影響如表3所示。GABA是哺乳動(dòng)物神經(jīng)系統(tǒng)中樞中最重要的抑制性神經(jīng)遞質(zhì)，還具有降血壓、降低膽固醇、改善腦機(jī)能、抗驚厥、預(yù)防和調(diào)治癲癇等多種生理活性及保健功能。結(jié)果表明，干燥后，辣木葉中GABA的含量為23.234～ 28.096 mg/g（DW），顯著高于發(fā)芽糙米^[15]中GABA的含量，表明辣木葉中含有豐富的GABA。不同干燥處理組中，熱風(fēng)干燥溫度為55和65 ℃時(shí)，所得辣木葉中的GABA含量無顯著性差異，并顯著高于75 ℃處理組的含量，表明過高的熱風(fēng)干燥溫度會(huì)導(dǎo)致GABA損失。采用真空微波干燥和冷凍干燥后，樣品的GABA含量分別為（25.749±1.036） mg/g（DW）和（24.085± 1.065） mg/g（DW），與熱風(fēng)干燥65 ℃處理組相比含量較低。

維生素C又稱抗壞血酸，是維持人體正常生理代謝的一種重要化合物，維生素C具有防治缺鐵性貧血，預(yù)防白內(nèi)障和心血管疾病功能，提高人體的免疫力等功效。結(jié)果表明，冷凍干燥處理組的維生素C含量顯著高于其他處理組，并與鮮樣的含量無顯著性差異，表明冷凍干燥可以有效避免維生素C在辣木葉脫水過程中的損失。其次是真空微波干燥，這可能與真空微波干燥處理時(shí)間短，從而減少維生素C的損失有關(guān)。

異硫氰酸酯具有抗菌、抗腫瘤、抗氧化等多種藥理作用。結(jié)果表明，新鮮辣木葉的總異硫氰酸酯含量為（8.879±0.864） mg/g（DW）。干燥后，總異硫氰酸酯含量下降37%～65%。3種不同熱風(fēng)干燥方式相比，熱風(fēng)干燥能較好地保留異硫氰酸酯類物質(zhì)，而冷凍干燥處理組的異硫氰酸酯類含量最低。

多糖作為生命活動(dòng)的四大類基本組成物質(zhì)之一，具有抗氧化、抑菌、降血糖、抗腫瘤及增強(qiáng)免疫等多種生物活性，參與機(jī)體的多項(xiàng)生命活動(dòng)。辣木葉經(jīng)55 ℃熱風(fēng)干燥處理后，總多糖含量與鮮樣無顯著性差異，表明該條件下能有效保留多糖類物質(zhì)。當(dāng)溫度為75 ℃時(shí)，總多糖含量下降率達(dá)40.81%。真空微波干燥處理組中的總多糖含量也較高，而冷凍干燥處理組的則顯著較低。

2.3? 干燥方式對(duì)辣木葉抗氧化活性的影響

2.3.1? DPPH自由基清除能力 ?如圖2所示，比較不同干燥處理組的DPPH EC₅₀值可見，干燥后辣木葉的DPPH EC₅₀值在2.08～2.44 mg/mL（DW）范圍內(nèi)。當(dāng)熱風(fēng)干燥溫度為65和75 ℃時(shí)，辣木葉的DPPH EC₅₀值顯著高于熱風(fēng)55 ℃處理組，表明熱風(fēng)溫度的升高導(dǎo)致了辣木葉DPPH自由基清除能力的下降。冷凍干燥組的DPPH EC₅₀值也顯著高于熱風(fēng)55 ℃處理組。

2.3.2? 氧自由基清除能力? 圖3表明，新鮮辣木葉的ORAC值為（741.61±56.52） mmol Trolox eq./ kg （DW）。不同干燥方式對(duì)辣木葉ORAC值的影響顯著，其中真空微波干燥處理組和冷凍干燥處理組的ORAC較高，并且與鮮樣的ORAC值相比沒有顯著性差異，表明這2種干燥方法能有效地避免辣木葉氧自由基清除能力的損失。而熱風(fēng)干燥處理組的ORAC值則顯著較低。當(dāng)熱風(fēng)溫度為65和75 ℃時(shí)，辣木葉的ORAC值下降到不足鮮樣ORAC值的50%，氧自由基清除能力大大降低。

2.4? 干燥方式對(duì)辣木葉色澤的影響

色澤是評(píng)價(jià)果蔬干制產(chǎn)品品質(zhì)的重要指標(biāo)之一，食品在干燥過程中常常伴隨著褐變反應(yīng)，從而造成產(chǎn)品色澤的顯著變化。如表6所示，實(shí)驗(yàn)采用L^*值、a^*值和b^*值來表征色澤。其中L^*值表示樣品的白度，a值正值表示偏紅，負(fù)值表示偏綠;b值正值表示偏黃，負(fù)值表示偏藍(lán)。結(jié)果表明（表4），與鮮樣品相比，熱風(fēng)干燥75 ℃處理組的白度、綠度和黃度均顯著下降，其中綠度值下降幅度最大，達(dá)35%。熱風(fēng)干燥其他溫度處理組的L值和b^*值則與鮮樣差異不顯著。由此可見，熱風(fēng)干燥處理時(shí)，溫度的升高加重辣木葉色澤的劣變。真空微波處理組和冷凍干燥處理組的辣木葉色澤則與鮮樣差異不大。

葉綠素是辣木葉中綠度呈色的主要物質(zhì)。如表4所示，經(jīng)干燥處理后，辣木葉中的葉綠素含量大幅度下降，損失達(dá)78%以上。結(jié)果表明，對(duì)于熱風(fēng)干燥而言，溫度對(duì)葉綠素含量的影響顯著。隨著溫度的增加，葉綠素的損失率顯著增加。冷凍干燥處理組的葉綠素含量較高。而真空微波處理組的葉綠素含量則偏低，其原因可能是真空微波干燥過程中，干燥腔體溫度分布的不均勻性導(dǎo)致了局部樣品受熱過多，從而導(dǎo)致葉綠素含量的損失增加。

5-hmf是美拉德反應(yīng)的中間產(chǎn)物，其含量可以反映出產(chǎn)品發(fā)生美拉德反應(yīng)的程度。結(jié)果表明，辣木葉經(jīng)干燥處理后，5-hmf均顯著上升，表明不同干燥方式都會(huì)引發(fā)一定程度的美拉德反應(yīng)。其中，真空微波干燥處理組的5-hmf生成量最少，這可能與其處理時(shí)間最短有關(guān)。

色澤變化的影響因素較多，干燥過程中的酶促和非酶促反應(yīng)程度不同、葉綠素的降解、維生素C的氧化、美拉德反應(yīng)均會(huì)影響產(chǎn)品的色澤。結(jié)果表明（表4），5-hmf含量和葉綠素含量均不顯示與L^*、a^*、b^*等色澤指標(biāo)具有顯著相關(guān)性，表明辣木葉干燥后色澤的變化是多因素共同影響的結(jié)果。

3? 討論

本研究綜合考慮了不同干燥方式對(duì)辣木葉酚類組分、γ-氨基丁酸、維生素C、異硫氰酸酯、多糖等營養(yǎng)活性成分的影響。在酚類組分方面，通過高效液相色譜測(cè)得辣木葉主要的多酚類化合物為綠原酸、蘆丁、山奈酚和槲皮素，其中山奈酚和槲皮素含量較高，這與Valdez-Solana^[1]、Siddhuraju等^[22]的結(jié)果一致。郭剛軍^[13]比較熱風(fēng)干燥和微波干燥的差異時(shí)，發(fā)現(xiàn)不同處理方式所得辣木葉總酚含量盡管有差異，但差異不大于10%。本研究中真空微波干燥的辣木葉總酚保留率比熱風(fēng)干燥處理組和冷凍干燥處理組的高約20%，可見，微波干燥結(jié)合真空處理顯著提高了

辣木葉中的總酚保留率。在維生素C方面，不同熱風(fēng)干燥溫度處理組的維生素C含量均較低，這與Saini^[12]、馬李一等^[23]的結(jié)果一致，表明熱風(fēng)干燥會(huì)造成維生素C較大的損失，其原因可能是熱風(fēng)干燥耗時(shí)較長，促進(jìn)了維生素C被空氣中的氧所氧化。其中熱風(fēng)55 ℃處理組的最低，這可能是因?yàn)樵摋l件下干燥時(shí)間最長，也可能與熱風(fēng)溫度升高有助于快速抑制抗壞血酸氧化酶活性有關(guān)。在多糖方面，辣木葉經(jīng)55 ℃熱風(fēng)干燥處理后，總多糖含量與鮮樣無顯著性差異;當(dāng)溫度為75 ℃時(shí)，總多糖含量下降率達(dá)40.81%。該結(jié)果與李忠虎等^[24]的結(jié)果一致，表明隨著熱風(fēng)干燥溫度的增加，辣木葉中的總多糖含量顯著下降，

在研究不同干燥方式對(duì)辣木葉抗氧化活性方面，發(fā)現(xiàn)采用DPPH自由基清除能力與氧自由基清除能力2種方法評(píng)價(jià)辣木葉的抗氧化活性的結(jié)果存在一定的差異。采用DPPH自由基清除能力評(píng)價(jià)時(shí)，發(fā)現(xiàn)冷凍干燥組的抗氧化能力顯著低于熱風(fēng)55 ℃處理組，這與Saini等^[12]的結(jié)果一致。Wangcharoen等^[10]的結(jié)果表明，對(duì)于熱風(fēng)干燥而言，干燥辣木葉DPPH自由基清除能力與其褐變程度呈顯著正相關(guān)，也與辣木葉中酚類物質(zhì)等天然抗氧化活性成分的保留率有關(guān)。由此可推測(cè)，熱風(fēng)55 ℃處理組的抗氧化活性比凍干處理組的高，這可能與熱風(fēng)干燥過程美拉德反應(yīng)產(chǎn)物的積累有關(guān)。

綜合分析不同干燥方式對(duì)辣木葉品質(zhì)的影響結(jié)果，發(fā)現(xiàn)不同干燥方式均會(huì)引起辣木葉酚類物質(zhì)、維生素C、異硫氰酸酯、多糖類物質(zhì)等活性成分以及色澤的損失，并造成美拉德反應(yīng)產(chǎn)物5-hmf的累積。然而，不同的干燥方式各有利弊。其中，真空微波干燥能較好地減少酚類物質(zhì)、多糖類物質(zhì)等活性成分和抗氧化活性的損失，同時(shí)減少5-hmf的累積，但其處理樣品葉綠素含量偏低，所得干燥辣木葉的總體品質(zhì)較高?？紤]到真空微波干燥還有脫水效率高的特點(diǎn)，因此選擇真空微波干燥作為最適宜的辣木葉干燥方式。通過真空微波干燥參數(shù)的優(yōu)化，將有望在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步提高干燥辣木葉的品質(zhì)，實(shí)現(xiàn)辣木葉干的節(jié)能高效生產(chǎn)。

參考文獻(xiàn)

1. Valdez-Solana M A， Mejía-García V Y， Téllez-Valencia A， et al. Nutritional content and elemental and phytochemical analyses of Moringa oleifera grown in Mexico[J]. Journal of Chemistry， 2015， 2015： 1-9.
2. 劉鳳霞， 王苗苗， 趙有為， 等. 辣木中功能性成分提取及產(chǎn)品開發(fā)的研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué)， 2015， 36（19）： 282-286.
3. Waterman C， Cheng D M， Rojassilva P， et al. Stable， water extractable isothiocyanates from Moringa oleifera leaves attenuate inflammation in vitro[J]. Phytochemistry， 2014， 103（10）： 114-122.
4. F?rster N， Ulrichs C， Schreiner M， et al. Development of a reliable extraction and quantification method for glucosinolates in Moringa oleifera[J]. Food Chemistry， 2015， 166： 456-464.
5. Vyas S， Kachhwaha S， Kothari S L. Comparative analysis of phenolic contents and total antioxidant capacity of Moringa oleifera Lam[J]. Pharmacognosy Journal， 2014， 7（2）： 44-51.
6. Abalaka M E. The antibacterial evaluation of Moringa oleifera leaf extracts on selected bacterial pathogens[J]. Journal of Microbiology Research， 2012， 2（2）： 1-4.
7. Suphachai C. Antioxidant and anticancer activities of Moringa oleifera leaves[J]. Journal of Medicinal Plant Research， 2014， 8（7）： 318-325.
8. Ghiridhari V V A， Malhati D， Geetha K. Anti-diabetic properties of drumstick （Moringa oleifera） leaf tablets[J]. International Journal of Health Nutrition， 2011， 2（1）.
9. Ghosh N. Anticancer effect of Moringa oleifera leaf extract on human breast cancer cell[D]. India： Jadavpur University， 2014.
10. Wangcharoen W. Antioxidant activity changes during hot-air drying of Moringa oleifera leaves[J]. Maejo International Journal of Science and Technology， 2013， 7（3）： 353-363.
11. Nunes J C， Lago M G， Castelo-Branco V N， et al. Effect of drying method on volatile compounds， phenolic profile and antioxidant capacity of guava powders[J]. Food Chemistry， 2016， 197（Pt A）： 881-890.
12. Saini R K， Shetty N P， Prakash M， et al. Effect of dehydration methods on retention of carotenoids， tocopherols， ascorbic acid and antioxidant activity in Moringa oleifera leaves and preparation of a RTE product[J]. Journal of Food Science and Technology， 2014， 51（9）： 2 176-2 182.
13. 郭剛軍， 胡小靜， 徐? 榮， 等. 不同干燥方式對(duì)辣木葉營養(yǎng)、功能成分及氨基酸組成的影響[J]. 食品科學(xué)， 2018， 39（11）： 39-45.
14. 江? 寧， 劉春泉， 李大婧， 等. 甘薯片真空微波干燥工藝的優(yōu)化[J]. 中國食品學(xué)報(bào)， 2011， 11（7）： 81-88.
15. 程威威， 周? 婷， 吳? 躍， 等. 高效液相色譜法測(cè)定發(fā)芽糙米中γ-氨基丁酸含量[J]. 食品科學(xué)， 2014， 35（12）： 98-101.
16. Wang C， Chen Y， Yujuan X U， et al. Effect of dimethyl dicarbonate as disinfectant on the quality of fresh-cut carrot （Daucus Carota， L.）[J]. Journal of Food Processing and Preservation， 2013， 37（5）： 751-758.
17. 丁? 軻， 劉? 佳， 陳湘寧， 等. 響應(yīng)面優(yōu)化辣根中總異硫氰酸酯及異硫氰酸烯丙酯水解制備工藝[J]. 中國食品學(xué)報(bào)， 2015， 15（10）： 124-133.
18. 萬? 鵬. 荔枝果汁非酶褐變機(jī)理研究[D]. 武漢： 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2010.
19. 馬? 瑞， 張鐘元， 趙江濤， 等. 超聲輔助燙漂對(duì)黃花菜干制品色澤的影響[J]. 現(xiàn)代食品科技， 2016（10）： 233-238.
20. Lin X， Chen J， Xiao G， et al. Extraction， molecular weight distribution， and antioxidant activity of oligosaccharides from longan （Dimocarpus Longan， Lour.） pulp[J]. Food Science and Biotechnology， 2016， 25（3）： 701-706.
21. Yu Y， Xu Y， Wu J， et al. Effect of ultra-high pressure homogenisation processing on phenolic compounds， antioxidant capacity and anti-glucosidase of mulberry juice[J]. Food Chemistry， 2014， 153（12）： 114-120.
22. Siddhuraju P， Becker K. Antioxidant properties of various solvent extracts of total phenolic constituents from three different agroclimatic origins of drumstick tree （Moringa oleifera Lam.） leaves[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry， 2003， 51（8）： 2 144.
23. 馬李一， 余建興， 張重權(quán)， 等. 不同干燥方法對(duì)辣木葉營養(yǎng)價(jià)值的影響[J]. 食品科學(xué)， 2008， 29（9）： 331-333.
24. 李忠虎， 藺海明， 陳? 垣， 等. 不同干燥方式對(duì)黨參多糖含量的影響[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)， 2007， 42（3）： 64-67.