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        大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng)和分化能力鑒定*

        2018-05-11 12:04:36周年劉波徐彭江西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院南昌330004江西省藥品檢驗(yàn)檢測(cè)研究院南昌330029江西省藥品與醫(yī)療器械質(zhì)量工程技術(shù)研究中心南昌330029江西省中藥藥理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室南昌330004
        江西中醫(yī)藥 2018年5期

        ★周年 劉波 徐彭(1.江西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院 南昌 330004;2.江西省藥品檢驗(yàn)檢測(cè)研究院 南昌 330029;3.江西省藥品與醫(yī)療器械質(zhì)量工程技術(shù)研究中心 南昌 330029;4.江西省中藥藥理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 南昌 330004)

        骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(Bone mesenchymal stem cells,BMSCs)是存在于骨髓的間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs),有自我復(fù)制、更新及多向分化潛能的成體多能干細(xì)胞,在不同的誘導(dǎo)條件下分化為成骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞等成熟的間質(zhì)細(xì)胞[1-3],在骨病防治中有重要意義。目前主要采用全骨髓貼壁法、密度梯度離心法、細(xì)胞表面分子標(biāo)記分選法和細(xì)胞篩選法等方法進(jìn)行分離[4-5],其中全骨髓貼壁法分離的細(xì)胞活性高,增殖能力強(qiáng),但對(duì)于細(xì)胞骨向分化和脂向分化能力的明確評(píng)價(jià)并不清楚。因此,本研究主要采用全骨髓貼壁法獲取骨髓細(xì)胞P3代,考察其骨向分化和脂向分化能力,為骨病防治研究和組織工程研究提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料 SPF級(jí)雌性Sprague-Dawley(SD)大鼠,3月齡,體重150g左右,由湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司提供,許可證號(hào):SCXK(湘)2013-0004,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中對(duì)動(dòng)物的處置符合動(dòng)物倫理學(xué)標(biāo)準(zhǔn),室溫控制在20℃~22℃,恒濕,光照與環(huán)境一致,實(shí)驗(yàn)期間自由飲水,實(shí)驗(yàn)前12h禁食。3-異丁基-1-甲基黃嘌呤購(gòu)于Sigma公司;4-硝基苯磷酸二鈉購(gòu)于成都西亞試劑公司;Anti-Mouse/Rat CD29 FITC(E17759103)、Anti-Rat CD45 FITC(E17627102)、Anti-Mo/RatCD90.1(Thy1.1) PE(E013771631)、Anti-Rat CD11b/c PE(E15919105)均購(gòu)于eBioscience公司;β-甘油磷酸鈉、胰島素、地塞米松、L-抗壞血酸、油紅O、茜素紅等均購(gòu)于北京索萊寶科技有限公司,并配制骨向分化誘導(dǎo)液(β-甘油磷酸鈉、地塞米松、L-抗壞血酸)和脂向分化誘導(dǎo)液(地塞米松、胰島素、吲哚美辛、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤)。

        1.2 方法

        1.2.1 全骨髓貼壁法分離骨髓細(xì)胞及傳代培養(yǎng) 3月齡SD雌性大鼠脫臼處死,75%酒精浸泡10min,無(wú)菌條件下分離后肢的雙側(cè)脛骨及股骨,剔除周邊的肌肉、肌腱及結(jié)締組織,剪去兩端的骨骺端,充分暴露骨髓腔,以5mL注射器吸取LG-DMEM培養(yǎng)液反復(fù)沖洗骨髓腔至變白。收集骨髓懸液置于10mL離心管,低速離心1000rpm×5min,棄上清,以3mL新鮮含15%胎牛血清的LG-DMEM完全培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度以1×106cells/mL進(jìn)行接種,然后轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶,并置于培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。72h首次半量更換培養(yǎng)基,更換培養(yǎng)基前,輕輕振蕩培養(yǎng)瓶3~4次,充分使非貼壁細(xì)胞通過(guò)更換培養(yǎng)基而清除,以后每4d全量更換培養(yǎng)基1次,同樣采取輕度振蕩篩選細(xì)胞,倒置顯微鏡下觀(guān)察細(xì)胞形態(tài)和生長(zhǎng)情況,此時(shí)細(xì)胞即為骨髓P0代細(xì)胞,待細(xì)胞達(dá)到80%~90%融合,棄培養(yǎng)液,PBS清洗,以胰酶消化,進(jìn)行傳代擴(kuò)增,此時(shí)培養(yǎng)的細(xì)胞為骨髓P1代細(xì)胞,同樣方法,依次消化傳代并記作骨髓細(xì)胞P2~P3代等,最終取骨髓P3代細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞鑒定,以確定其分化功能適合作為種子細(xì)胞。

        1.2.2 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的鑒定

        1.2.2.1 形態(tài)學(xué)觀(guān)察 自原代培養(yǎng)開(kāi)始通過(guò)顯微鏡下觀(guān)察大鼠骨髓細(xì)胞的形態(tài)。

        1.2.2.2 骨髓細(xì)胞表面標(biāo)志物的鑒定 取P3代大鼠骨髓細(xì)胞,以不含EDTA的胰酶消化后,制成單細(xì)胞懸液,并調(diào)整細(xì)胞數(shù)為106~107/mL,以直接免疫熒光法針對(duì)細(xì)胞表面抗原檢測(cè)細(xì)胞免疫表型,用胎牛血清配制的FACS緩沖液1500rpm×3min,重懸洗滌后,各管分別加入CD29、CD45、CD11b/c、CD90.1等標(biāo)志物抗體及同型對(duì)照抗體,室溫避光孵育30min,PBS緩沖液洗滌離心3000rpm×3次,1%多聚甲醛固定,以流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。

        1.2.2.3 骨髓細(xì)胞骨向分化能力鑒定 取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的P3代骨髓細(xì)胞,以1×105cells/mL密度接種于24孔板中,實(shí)驗(yàn)分為兩組,即對(duì)照組和誘導(dǎo)組,每組6個(gè)復(fù)孔,對(duì)照組正常換液,誘導(dǎo)組則加入骨向分化誘導(dǎo)液,每3d換液1次,光鏡下觀(guān)察細(xì)胞形態(tài)變化。

        堿性磷酸酶染色:經(jīng)骨向分化誘導(dǎo)液誘導(dǎo)12 d后取出培養(yǎng)板,以PBS沖洗,95%乙醇固定細(xì)胞10min,以改良鈣鈷法制備,光鏡下觀(guān)察。

        堿性磷酸酶活力檢測(cè)(ρNPP法):經(jīng)骨向分化誘導(dǎo)液誘導(dǎo)12d后取出培養(yǎng)板,吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)基,PBS洗2遍,每孔加入細(xì)胞裂解液300μL(0.1%Triton X-100),4℃作用30min,收集裂解液采用對(duì)硝基酚磷酸鹽法測(cè)定堿性磷酸酶濃度,以ρNPP為底物,根據(jù)水解磷酸酯鍵所產(chǎn)生的對(duì)硝基酚基測(cè)定酶活力。

        礦化結(jié)節(jié)染色:取出誘導(dǎo)21d的培養(yǎng)板,吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)基,PBS清洗,95%乙醇固定20min,以0.1%茜素紅染色,光鏡下觀(guān)察。

        1.2.2.4 細(xì)胞脂向分化能力鑒定 取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的P3代骨髓細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1×105cells/mL接種24孔培養(yǎng)板上。實(shí)驗(yàn)分為兩組,即對(duì)照組和誘導(dǎo)組,每組6個(gè)復(fù)孔,對(duì)照組正常換液,誘導(dǎo)組則加入脂向分化誘導(dǎo)液,每3d換液1次,光鏡下觀(guān)察細(xì)胞形態(tài)。

        油紅O染色:誘導(dǎo)12d后取出孔板,PBS清洗,95%乙醇固定10min,PBS清洗1遍,60%異丙醇濕潤(rùn)2min,吸出異丙醇后加入已過(guò)濾好的油紅O工作液染色15min;60%異丙醇分色至背景無(wú)色,光鏡下觀(guān)察。

        油紅O染液半定量法:利用異丙醇充分溶解油紅O染液,520nm處檢測(cè)胞內(nèi)殘留染液的吸光度。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 數(shù)據(jù)均用表示,SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行One-way ANOVA檢驗(yàn)比較多組數(shù)據(jù)間差異顯著性,P<0.05為差異具有顯著性,P<0.01為差異具有極顯著性。

        2 結(jié)果

        2.1 大鼠骨髓細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀(guān)察 原代培養(yǎng)時(shí),全骨髓貼壁法分離的骨髓細(xì)胞呈圓形,胞體透亮,大小不一,與周?chē)募t細(xì)胞等血系細(xì)胞相互混雜。72h半量換液后可見(jiàn)大量貼壁細(xì)胞,6~7d貼壁分裂細(xì)胞形成不同大小、分散的細(xì)胞集落,9~10d細(xì)胞逐漸融合成片,相互緊密貼附生長(zhǎng)。細(xì)胞消化傳代至第3代,可見(jiàn)細(xì)胞呈均勻分布的紡錘形平均生長(zhǎng),呈典型的漩渦狀生長(zhǎng),見(jiàn)圖1。

        圖1 細(xì)胞形態(tài)觀(guān)察(×100)

        2.2 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物的鑒定 流式細(xì)胞法檢測(cè)發(fā)現(xiàn),P3代細(xì)胞CD90、CD29陽(yáng)性表達(dá)率分別為96.4%和78.5%,而CD45、CD11b/c陽(yáng)性比率分別為2.0%和1.9%,見(jiàn)圖2。由于CD90和CD29為間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物,CD45、CD11b/c為造血系細(xì)胞表面標(biāo)志物,結(jié)果表明,P3骨髓細(xì)胞絕大多數(shù)為大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞。

        圖2 流式細(xì)胞儀鑒定P3骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞

        2.3 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化能力鑒定

        2.3.1 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞骨向分化能力鑒定 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)骨向誘導(dǎo)后形態(tài)由原來(lái)的紡錘形逐漸轉(zhuǎn)化為多角形、方形等,較對(duì)照組細(xì)胞體積更大,細(xì)胞外基質(zhì)分泌逐漸增多,胞外可見(jiàn)許多黑色細(xì)小顆粒(見(jiàn)圖3)。骨向誘導(dǎo)12d后以改良鈣鈷法進(jìn)行堿性磷酸酶染色,胞漿內(nèi)呈現(xiàn)深棕色或深黑色顆粒狀或大片狀黑色沉淀(見(jiàn)圖4),同時(shí)堿性磷酸酶活力明顯升高(P<0.05,見(jiàn)圖5);骨向誘導(dǎo)21d后運(yùn)用茜素紅進(jìn)行礦化結(jié)節(jié)染色,光鏡下誘導(dǎo)組可見(jiàn)細(xì)胞融合重疊生長(zhǎng),形成明顯的紅色致密結(jié)節(jié),周?chē)史派錉钔黄穑砻骷?xì)胞形成礦化結(jié)節(jié)(見(jiàn)圖6)。

        圖3 P3大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞骨向誘導(dǎo)形態(tài)觀(guān)察(×200)

        圖4 P3大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞骨向誘導(dǎo)12d堿性磷酸酶染色(×100)

        圖5 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞骨向誘導(dǎo)堿性磷酸酶活力

        圖6 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞骨向誘導(dǎo)礦化結(jié)節(jié)染色(×100)

        2.3.2 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞脂向分化能力鑒定 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)脂向誘導(dǎo)后形態(tài)逐漸由梭形變?yōu)閳A形、多角形等,誘導(dǎo)前期可見(jiàn)折光性強(qiáng)的圓形小脂滴,后期小脂滴逐漸增多融合成大脂滴,并將細(xì)胞核擠于一側(cè),脂向誘導(dǎo)12d后用油紅O染色顯示脂滴呈紅色(見(jiàn)圖7),同時(shí)利用異丙醇充分溶解油紅O染液的原理,對(duì)殘留染液進(jìn)行了半定量檢測(cè)。脂向誘導(dǎo)組較對(duì)照組明顯升高OD值,具有極顯著性差異(P<0.01,見(jiàn)圖8)。

        圖7 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞脂向誘導(dǎo)倒置顯微鏡下觀(guān)察(×200)

        圖8 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞脂向分化脂質(zhì)累積值

        3 討論

        MSCs是一種起源于中胚層,在體外不同的誘導(dǎo)條件下分化為成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、心肌細(xì)胞等成熟的間質(zhì)細(xì)胞,在骨髓最為常見(jiàn),研究得最深入,目前主要采用全骨髓貼壁法進(jìn)行分離培養(yǎng)[6-8]。但對(duì)于分離的骨髓細(xì)胞目前并沒(méi)有單一的特異性的方法來(lái)鑒定BMSCs。本研究采用全骨髓貼壁法進(jìn)行分離培養(yǎng)骨髓細(xì)胞,傳代過(guò)程中充分利用細(xì)胞輕度振蕩來(lái)清除不貼壁細(xì)胞,提高細(xì)胞純度。研究發(fā)現(xiàn)細(xì)胞傳至第3代,細(xì)胞在顯微鏡下可見(jiàn)紡錘形生長(zhǎng),呈典型漩渦狀。流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞表面標(biāo)志物的表達(dá),發(fā)現(xiàn)CD90與CD29的陽(yáng)性細(xì)胞比率分別為96.4%和78.5%;CD45和CD11b/c的陽(yáng)性細(xì)胞比率分別為2.0%和1.9%,與文獻(xiàn)報(bào)道一致[9-11],同時(shí)加入經(jīng)典骨向誘導(dǎo)劑和脂向誘導(dǎo)劑,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞外基質(zhì)分泌增多,較對(duì)照組細(xì)胞胞漿內(nèi)可見(jiàn)明顯的深棕色或大片狀黑色沉淀,顯著升高ALP活力,且可見(jiàn)明顯的紅色致密結(jié)節(jié),周?chē)史派錉钔黄?,表明?xì)胞聚集生長(zhǎng),逐漸形成礦化結(jié)節(jié),充分表明BMSCs成功分化成了成骨細(xì)胞。在脂向誘導(dǎo)劑組初期可見(jiàn)折光性強(qiáng)的圓形小脂滴,經(jīng)油紅O染色后,誘導(dǎo)組可見(jiàn)被染成紅色的脂滴,采用異丙醇溶解油紅O染液半定量檢測(cè),顯示脂向誘導(dǎo)組OD值明顯升高,進(jìn)一步確定MSCs成功分化為脂肪細(xì)胞。這些結(jié)果一定程度上與國(guó)際社會(huì)公認(rèn)的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞依據(jù)相符,即細(xì)胞的貼附特性、細(xì)胞標(biāo)志物CD90,CD45等的表達(dá)和能否分化為成骨細(xì)胞和脂肪細(xì)胞等。

        綜合形態(tài)學(xué)、細(xì)胞表面標(biāo)志物及骨向分化和脂向分化誘導(dǎo)BMSCs結(jié)果,顯示全骨髓貼壁法分離培養(yǎng)骨髓細(xì)胞,充分利用細(xì)胞輕度振蕩,培養(yǎng)至P3代的BMSCs具有骨向分化和脂向分化能力,可用于骨病防治研究和骨組織工程研究。

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