林 健， 賈淞淋， 方 敏， 吳雅妮， 劉超乾， 蘇東瑋， 于 躍， 李恒宇， 盛 湲

海軍軍醫(yī)大學(xué)附屬長海醫(yī)院甲狀腺乳腺外科，上海 200433

乳腺癌是女性最常見的惡性腫瘤之一，晚期預(yù)后較差。因此早期監(jiān)測腫瘤負(fù)荷對評判治療效果和預(yù)防疾病進(jìn)展非常重要[1]。Cristofanilli等[2]采用CellSearch法對外周血循環(huán)腫瘤細(xì)胞(circulating tumor cells，CTC)進(jìn)行篩選計數(shù)，證實CTC是轉(zhuǎn)移性乳腺癌進(jìn)展和患者生存的獨立預(yù)后因素，CTC數(shù)量升高(>5個/7.5 mL)與預(yù)后不良及乳腺癌進(jìn)展密切相關(guān)。腫瘤患者體內(nèi)來自腫瘤細(xì)胞的DNA會持續(xù)釋放入血或其他體液形成循環(huán)腫瘤DNA(circulating tumor DNA，ctDNA)，是反映轉(zhuǎn)移性乳腺癌治療反應(yīng)特異性和敏感性最高的生物學(xué)指標(biāo)[1]。ctDNA包含腫瘤特異性的基因突變，可作為一種特異性的基因標(biāo)志或生物標(biāo)志物[3]。

乳腺癌最常見的突變基因是TP53和磷脂酰肌醇-3激酶(phosphatidylinositol-3 kinase，PI3K)。抑癌基因TP53突變與多種人類腫瘤發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)[4]。乳腺癌患者TP53的突變率為20%～50%[5]，TP53常見的突變位點有p.R175H、p.R248Q和p.R273H等，這些突變常導(dǎo)致下游基因的激活功能丟失[6]，基因組穩(wěn)定性降低[7]。PI3K信號通路異常激活與乳腺癌的發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)。約25%的乳腺癌中發(fā)現(xiàn)PI3K突變，其常見突變位點是PI3KCA基因編碼螺旋形區(qū)域的p.E545K和p.E542K位點及編碼激酶區(qū)域的p.H1047R位點。這些突變會導(dǎo)致下游信號增強(qiáng)，促腫瘤發(fā)生和發(fā)展[8]。TP53和PI3K基因不同位點的突變與腫瘤不同的發(fā)生、發(fā)展和預(yù)后相關(guān)[9-10]。因此，TP53/PI3K突變檢測常被用于各類腫瘤治療管理[8, 11-12]。

Dawson等[1]發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)移性乳腺癌中ctDNA TP53、PI3K突變位點的檢測能更敏感、更早期地預(yù)測乳腺癌的治療反應(yīng)和疾病進(jìn)展情況。因此，本研究選擇TP53基因的p.R248Q、p.R273H、p.R175H位點及PI3K基因的p.E545K、p.H1047R位點進(jìn)行檢測。已有研究[13-15]采用檢測尿液ctDNA特定基因突變診斷列腺癌或膀胱癌甚至監(jiān)測非小細(xì)胞肺癌，但尚無利用尿液來監(jiān)測早期乳腺癌的報道。因此，本研究嘗試采用尿液作為檢測標(biāo)本來源。

為了進(jìn)一步探討TP53、PI3K突變在早期乳腺癌中的作用，本研究收集了患者的血液和尿液標(biāo)本，采用CellSearch法采集血中CTC并檢測其數(shù)目，并采用微滴式數(shù)字PCR(ddPCR)技術(shù)檢測患者血、CTC及尿標(biāo)本中TP53(p.R248Q)、TP53(p.R273H)、TP53(p.R175H)、PI3K(p.E545K)和PI3K(p.H1047R)共5種基因位點的突變情況，同時收集所有患者的臨床資料，分析基因突變和臨床病理特征間的相關(guān)性，探討CTC TP53/PIK基因突變檢測對乳腺癌診療和預(yù)后的判斷作用，以期在早期乳腺癌防治上尋找更有價值的生物學(xué)指標(biāo)。

1 資料與方法

1.1 一般資料 選擇2015年1月—2月海軍軍醫(yī)大學(xué)附屬長海醫(yī)院收治的女性乳腺癌患者和良性腫瘤患者共30例。納入標(biāo)準(zhǔn)：(1)無其他腫瘤病史；(2)術(shù)前未進(jìn)行過任何抗腫瘤治療；(3)病理證實為乳腺癌或乳腺良性腫瘤；(4)術(shù)前檢查無轉(zhuǎn)移相關(guān)證據(jù)；(5)無其他嚴(yán)重系統(tǒng)性疾病或感染。其中26例乳腺癌初診患者接受手術(shù)治療；3例良性乳腺腫瘤患者接受腫塊切除；1例患者入院前已接受過乳腺腫塊切除手術(shù)，其免疫組織化學(xué)檢測結(jié)果未攜帶，因此未被納入本研究。

所有患者發(fā)病年齡為30～79歲，平均(54.2±12.8)歲；其中26例乳腺癌患者平均年齡為(54.6±13.1)歲。26例乳腺癌患者按分子分型：Luminal A型3例(11.5%)，Luminal B型14例(53.9%)，HER-2陽性型7例(26.9%)，三陰性2例(7.7%)；根據(jù)臨床分期：最多的是ⅡA期9例(34.6%)，其余分別為0期3例(11.5%)，ⅠA期4例(15.4%)，ⅡB期2例(7.7%)，ⅢA期4例(15.4%)，ⅢC期4例(15.4%)；按病理類型：浸潤性導(dǎo)管癌19例(73.1%)，導(dǎo)管原位癌3例(11.5%)，非特殊性浸潤癌2例(7.7%)，多形性癌1例(3.8%)，髓樣特征的浸潤性癌1例(3.8%)。3例良性腫瘤患者均為乳腺纖維腺瘤。

所有患者的臨床信息均從醫(yī)院電子病歷管理系統(tǒng)中提取，本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會審核批準(zhǔn)。參與研究的患者均簽署了正式的知情同意文件。

1.2 病理學(xué)檢查 乳腺癌的組織類型、組織分級、雌激素受體(ER)、孕激素受體(PR)、HER-2和Ki-67水平等均來自患者的病理報告，其中ER、PR、HER-2和Ki-67指數(shù)等來自免疫組織化學(xué)染色結(jié)果。HER-2表達(dá)是免疫組織化學(xué)檢測和(或)熒光原位雜交(FISH)結(jié)果。HER-2陽性是指免疫組織化學(xué)檢測結(jié)果為和(或)FISH結(jié)果>2.2；HER-2陰性是指免疫組織化學(xué)檢測結(jié)果為0～+和(或)FISH<1.8[5]。

1.3 CTC計數(shù) 術(shù)前抽取7.5 mL靜脈全血于含EDTA抗凝及細(xì)胞防腐劑的CellSave管中，室溫保存，72 h內(nèi)。采用CellSearch系統(tǒng)(Veridex)分離和計數(shù)CTC。采用CellSearch Epithelial Cell Kit處理標(biāo)本，結(jié)果用CellSpitter Analyzer分析。熒光染色特性為EpCAM(+)、CK(+)、DAPI(+)和CD45(-)的細(xì)胞即為CTC[16]。

1.4 血漿、尿液的收集及DNA抽提 術(shù)前使用BCT管抽取至少10 mL全血，并留取20 mL尿液。血標(biāo)本抽取后，3 h內(nèi)分別以1 600×g和16 000×g，4℃，離心10 min，去除血細(xì)胞，每2～4 mL上清液分裝到50 mL離心管中，-80℃凍存；然后根據(jù)操作手冊，使用QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit(德國Qiagen公司產(chǎn)品)抽提血漿中ctDNA。尿液、CTC的DNA抽提參考既往文獻(xiàn)[13,17]進(jìn)行。

1.5 基因突變檢測 按照QX200TM微滴式數(shù)字PCR(droplet digital PCR，ddPCR)系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司產(chǎn)品)操作說明進(jìn)行基因突變檢測。ddPCR反應(yīng)體系共20 μL，包括10 μL 2×ddPCR SuperMix、5 μL DNA模板、2 μL引物 mix和3 μL去離子水。將20 μL反應(yīng)體系依次加入96孔板，隨后加入70 μL微滴發(fā)生油，在自動微滴發(fā)生器中生成微滴。微滴生成結(jié)束后，將96孔板放入熱封儀中封鋁膜，隨后放入PCR擴(kuò)增儀進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)程序：95℃ 5 min；94℃ 30 s，55℃ 1 min，40個循環(huán)；最后98℃ 10 min。擴(kuò)增結(jié)束后采用QX200 Droplet Reader軟件進(jìn)行分析，并用QuantaSoft分析軟件計算突變等位基因濃度(copies/μL，CMUT)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成，引物序列信息參考以往文獻(xiàn)[11,18-19]報道。

2 結(jié) 果

2.1 CTC計數(shù) 共30例女性乳腺癌或良性腫瘤患者接受了CTC篩查和血、尿TP53/PI3K基因檢測，其中1例乳腺癌患者因就診前已在外院接受乳腺腫塊切除術(shù)而缺乏免疫組織化學(xué)檢測結(jié)果，因此被排除出研究。納入研究的29例患者中，良性腫瘤患者3例，均未檢測到CTC；乳腺癌患者26例，其中6例(23.1%)未檢測到CTC，20例(76.9%)檢測到CTC，CTC>5個者4例(15.4%)，CTC數(shù)值范圍為0～12，平均數(shù)為2.846±3.133，中位數(shù)為2。按臨床分期，除ⅢC期患者外，其余均檢測到CTC；其中，ⅠA和ⅢA期患者全部檢測到CTC，ⅡB期患者檢測到CTC較多，平均數(shù)目為4。按分子分型，Luminal A和三陰性乳腺癌全部檢測到CTC；其中CTC檢測數(shù)目最高的為三陰性乳腺癌，平均CTC檢測數(shù)為4。>40歲的患者CTC檢出率較高(P=0.028)。CTC與患者其他臨床病理特征的相關(guān)性無統(tǒng)計學(xué)意義。

2.2 TP53、PI3K基因突變

2.2.1 總體突變情況 29例患者血、CTC和尿標(biāo)本，共獲得435個基因檢測結(jié)果，5種檢測的基因位點總共有82個發(fā)生突變(18.9%)。各基因突變率不同，最高的是TP53(p.R175H)，有29個(6.7%)突變結(jié)果；TP53(p.R248Q)、TP53(p.R273H)和PI3K(p.H1047R)分別有25(5.7%)、23(5.3%)和4(0.9%)個突變結(jié)果；最低為PI3K(p.E545K)，僅1個(0.2%)發(fā)生突變。5種基因位點間突變率差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=50.133，P<0.001)。

2.2.2 三類標(biāo)本總體基因突變情況 血、CTC和尿三類標(biāo)本中檢測到5種基因突變分別為29個(6.7%)、21個(4.8%)和3個(7.4%)，突變率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=2.915，P=0.233)。

2.2.3 良惡性腫瘤5種基因突變情況 結(jié)果顯示每類標(biāo)本的每種基因突變在良惡性腫瘤間突變構(gòu)成情況無差異。82個基因突變結(jié)果中，乳腺癌的TP53 (p.R248Q、p.R273H、p.R175H)及PI3K (p.E545K、p.H1047R)突變數(shù)分別為22、21、28、1、3個，良性腫瘤的這5種基因突變數(shù)分別為3、2、1、0、1，統(tǒng)計分析顯示在良惡性腫瘤間5種基因突變構(gòu)成差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.359)。

2.2.4 三類標(biāo)本中5種基因突變情況 血、CTC、尿三類標(biāo)本中5種基因突變分布情況差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=50.133，P<0.001)。其中，29份CTC標(biāo)本中，突變率最高的是TP53(p.R175H)，有7份(24.1%)發(fā)生突變；TP53(p.R248Q)和TP53(p.R273H)均有6份發(fā)生突變(20.7%)，PI3K(p.H1047R)有2份(6.9%)，PI3K(p.E545K)無突變；5種基因突變率差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.007)。29份血標(biāo)本中，突變率最高的是TP53(p.R175H)，有11份(37.9%)發(fā)生突變；TP53(p.R248Q)和TP53(p.R273H)分別有10份(34.5%)和8份(27.6%)發(fā)生突變，PI3K(p.E545K)和PI3K(p.H1047R)均無突變；5種基因突變率差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=25.172，P<0.001)。29份尿標(biāo)本中，突變率最高的是TP53(p.R175H)，有11份發(fā)生突變(37.9%)；TP53(p.R248Q)和TP53(p.R273H)均有9份(31.0%)發(fā)生突變，PI3K(p.H1047R)有2份(6.9%)發(fā)生突變；最低的是PI3K(p.E545K)，僅1份(3.4%)發(fā)生突變；5種基因突變率差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=16.681，P=0.002)。

2.3 TP53、PI3K突變與乳腺癌臨床病理特征的相關(guān)性 結(jié)果(表1)表明：乳腺癌分子分型和Ki-67指數(shù)與CTC中TP53(p.R248Q)突變相關(guān)(Fisher Exact Test=10.839，P=0.003；P=0.028)，其中Luminal A型和Ki-67指數(shù)小于20%的乳腺癌TP53(p.R248Q)突變率較高，提示在治療Luminal A型乳腺癌時需要考慮TP53(p.R248Q)基因突變帶來的內(nèi)分泌藥物抵抗等因素；腋窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移可能與CTC標(biāo)本中TP53(p.R175H)基因突變有關(guān)(P=0.058)，其中發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的乳腺癌患者TP53(p.R175H)未突變較多；未在血標(biāo)本中檢測到Luminal A型患者有基因突變，而且年齡小于40歲的乳腺癌患者未檢測到CTC標(biāo)本有基因突變。其余臨床病理特征與基因突變間無明顯相關(guān)性。

3 討 論

CTC是轉(zhuǎn)移性乳腺癌進(jìn)展和生存的獨立預(yù)后因素[2]。眾多圍繞CTC數(shù)量、表型甚至單細(xì)胞測序等開展的研究進(jìn)一步證實，CTC對乳腺癌轉(zhuǎn)移具有監(jiān)測作用[20-21]，并已被應(yīng)用于晚期乳腺癌的療效評估和預(yù)后判斷[22]。然而針對早期乳腺癌，CTC的作用還不確切。

本課題組前期針對早期非轉(zhuǎn)移性乳腺癌檢測CTC時發(fā)現(xiàn)，腫瘤負(fù)荷重和激素受體陰性的乳腺癌患者往往CTC數(shù)量高，HER-2陽性和三陰性乳腺癌中CTC較少表達(dá)角蛋白，提示激素受體陰性可能與CTC上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化有關(guān)[23]。本研究再次證實，臨床分期較高或三陰性乳腺癌患者的CTC數(shù)量較多。

本研究進(jìn)一步將CTC與ctDNA基因突變相結(jié)合來分析乳腺癌患者的臨床病理特征。通過ddPCR檢測CTC中TP53和PI3K基因的突變情況，分析結(jié)合CTC和TP53/PI3K突變檢測對乳腺癌腫瘤負(fù)荷和療效監(jiān)測及預(yù)后評估的作用。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，在早期乳腺癌中分子分型和腫瘤指標(biāo)Ki-67與CTC標(biāo)本中TP53(p.R248Q)基因突變相關(guān)，腋窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移情況可能與TP53(p.R175H)基因突變有關(guān)，提示這兩種基因突變檢測對確定早期乳腺癌的治療方案及判斷患者預(yù)后具有很好的指導(dǎo)作用。由于樣本量有限，本研究尚未發(fā)現(xiàn)早期乳腺癌CTC與其他臨床病理特征的相關(guān)性，這與之前的研究[16,23]結(jié)果一致。但通過檢測CTC可預(yù)先評估療效，判斷特定患者可能出現(xiàn)的預(yù)后情況，或用來監(jiān)控病情變化。

在乳腺癌的診療全程管理中，要充分考慮PI3K基因突變可能帶來的影響。一項最新的大數(shù)據(jù)匯總分析表明，約32%的早期乳腺癌患者發(fā)生PI3K突變，編碼螺旋形區(qū)域(p.E545K、p.E542K)與編碼激酶區(qū)域(p.H1047R)的突變分別占52%和39%；PI3K突變更多見于較大年齡、ER陽性、低級別和小腫瘤，且PI3K突變與較好的臨床結(jié)局(無浸潤生存、無遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移生存和總生存)顯著相關(guān)[24]。以往研究[25]還提示，PI3K(p.H1047R)突變與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移陰性有關(guān)，PI3K(p.E545K)突變與較大年齡有關(guān)。本研究結(jié)果與之前報道一致，PI3K(p.H1047R)突變共3例，2例發(fā)生于淋巴結(jié)陰性乳腺癌患者，而1例PI3K(p.E545K)突變發(fā)生在年齡大于40歲的乳腺癌患者。因此，今后治療乳腺癌不僅依據(jù)是否發(fā)生PI3K突變，還要根據(jù)特定的突變位點來設(shè)計診療方案。

表1 乳腺癌患者血TP53(p.R248Q)、CTC TP53(p.R248Q)、CTC TP53(p.R175H)基因突變與臨床病理特征的相關(guān)性

**P<0.01,*P<0.05

TP53突變與原發(fā)腫瘤和復(fù)發(fā)腫瘤突變的一致率高達(dá)90%[12]，在血或其他體液中檢測到TP53突變比常用的腫瘤監(jiān)測指標(biāo)CA125能更早發(fā)現(xiàn)腫瘤進(jìn)展[18]。相比無突變的野生型TP53乳腺癌患者，TP53突變患者對藥物治療的反應(yīng)和疾病預(yù)后更差[26]。BIG02-98臨床試驗也提示，TP53不同位點突變對預(yù)后的作用不同[27]。本研究涉及的TP53突變位點密碼子轉(zhuǎn)錄后，翻譯為不同的氨基酸，影響整個p53蛋白功能。因此不同部位TP53突變會產(chǎn)生不同的生物學(xué)影響。本研究檢測的血、CTC和尿三類標(biāo)本基因總體突變情況無差異，提示三類標(biāo)本均可作為突變檢測標(biāo)本來源，但各標(biāo)本內(nèi)不同位點突變有差異，均是TP53(p.R175H)突變率最高；但TP53(p.R175H)在三類標(biāo)本中的突變情況與患者臨床病理特征無顯著相關(guān)，僅在CTC標(biāo)本中提示腋窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移可能與TP53(p.R175H)基因突變有關(guān)(P=0.058)。這可能與本研究納入樣本量較少有關(guān)。有研究指出，胚系TP53突變與乳腺癌診斷年齡和HER-2狀態(tài)有關(guān)，診斷乳腺癌時年齡每增加1歲，TP53突變率減少5%，而年輕女性HER-2陽性乳腺癌的TP53突變風(fēng)險增加近7倍[5]。但本研究結(jié)果與之有差別，年齡>40歲組患者TP53突變有21例(84.0%)，HER-2陰性組有18例(72.0%)。

TP53的預(yù)后價值與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移和腫瘤大小有關(guān)[26]。本研究中腫瘤增殖指標(biāo)Ki-67指數(shù)與CTC中TP53(p.R248Q)突變相關(guān)(P=0.028)，且腋窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移可能與CTC標(biāo)本中TP53(p.R175H)基因突變有關(guān)(P=0.058)。這些結(jié)果提示，TP53突變與腫瘤預(yù)后可能相關(guān)，尤其是TP53(p.R175H)基因突變的患者發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的可能性較小，預(yù)后較好。而一項針對2 000多例乳腺癌患者的基因和轉(zhuǎn)錄分析表明，按乳腺癌分子分型來看，TP53突變最容易發(fā)生在三陰性乳腺癌(34%)，其次是HER-2陽性乳腺癌(22%)、Luminal B(13%)和Luminal A(5%)型乳腺癌[28]。本研究同樣揭示，乳腺癌分子分型與CTC標(biāo)本中TP53(p.R248Q)突變相關(guān)(P=0.003)，提示乳腺癌不同分子分型中TP53突變率不同；但本研究各基因突變分布與既往研究不同。另外，匯總?cè)悩?biāo)本5種基因位點的總體突變情況，發(fā)現(xiàn)Luminal A型患者的血標(biāo)本中未檢測到突變，年齡<40歲的CTC標(biāo)本中未檢測到突變，這可能與Luminal A型患者較少有關(guān)。本研究中CTC在年齡>40歲組患者中檢測率高，這可能影響了40歲以下組CTC標(biāo)本的基因突變檢出率。

綜上所述，本研究采用CellSearch方法對早期乳腺癌患者進(jìn)行CTC檢測，并收集血、CTC和尿三類標(biāo)本，通過ddPCR方法來檢測TP53和PI3K基因的突變情況，并結(jié)合CTC和TP53/PI3K突變檢測分析其對乳腺癌腫瘤負(fù)荷、療效和預(yù)后的監(jiān)測作用。結(jié)果提示，在早期乳腺癌中，乳腺癌分子分型和腫瘤指標(biāo)Ki-67與CTC標(biāo)本中TP53(p.R248Q)基因突變相關(guān)，腋窩淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移可能與TP53(p.R175H)基因突變有關(guān)，這為早期乳腺癌治療方案的選擇和預(yù)后判斷提供了新的依據(jù)。盡管本實驗中，CTC和TP53/PI3K突變情況與早期乳腺癌的大部分臨床病理特征無明顯相關(guān)，但根據(jù)既往文獻(xiàn)[19, 25-27]報道，了解掌握TP53/PI3K基因突變情況有助于針對乳腺癌患者開展個性化用藥、療效監(jiān)測和預(yù)后判斷。另外，本研究首次采用尿液作為早期乳腺癌檢測標(biāo)本，擴(kuò)展了乳腺癌檢測有效生物標(biāo)志的來源，且本研究發(fā)現(xiàn)三類標(biāo)本的基因突變檢測結(jié)果無明顯差異，提示可以根據(jù)臨床需要獲取合適的檢測標(biāo)本。由于CTC匯聚了多種腫瘤療效和預(yù)后監(jiān)測的生物指標(biāo)，因此檢測CTC突變基因的效能更強(qiáng)，更有可能在早期腫瘤中發(fā)現(xiàn)陽性結(jié)果。未來建立個體化的多生物指標(biāo)聯(lián)合分析方法可能成為一種更有效地發(fā)現(xiàn)早期腫瘤進(jìn)展和預(yù)后的方法。

[ 1 ] DAWSON S J, TSUI D W, MURTAZA M, et al. Analysis of circulating tumor DNA to monitor metastatic breast cancer[J]. N Engl J Med, 2013,368(13):1199-1209.

[ 2 ] CRISTOFANILLI M, BUDD G T, ELLIS M J, et al. Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer[J]. N Engl J Med, 2004,351(8):781-791.

[ 3 ] WAN J C M, MASSIE C, GARCIA-CORBACHO J, et al. Liquid biopsies come of age: towards implementation of circulating tumour DNA[J]. Nat Rev Cancer, 2017,17(4):223-238.

[ 4 ] LEROY B, ANDERSON M, SOUSSI T. TP53 mutations in human cancer: database reassessment and prospects for the next decade[J]. Hum Mutat, 2014,35(6):672-688.

[ 5 ] MELHEM-BERTRANDT A, BOJADZIEVA J, READY K J, et al. Early onset HER2-positive breast cancer is associated with germline TP53 mutations[J]. Cancer, 2012,118(4):908-913.

[ 6 ] IMAI H, KATO S, SAKAMOTO Y, et al. High throughput RNAi screening identifies ID1 as a synthetic sick/lethal gene interacting with the common TP53 mutation R175H[J]. Oncol Rep, 2014,31(3):1043-1050.

[ 7 ] SAMASSEKOU O, BASTIEN N, LICHTENSZTEJN D, et al. Different TP53 mutations are associated with specific chromosomal rearrangements, telomere length changes, and remodeling of the nuclear architecture of telomeres[J]. Genes Chromosomes Cancer, 2014,53(11):934-950.

[ 8 ] BASELGA J. Targeting the phosphoinositide-3 (PI3) kinase pathway in breast cancer[J]. Oncologist, 2011,16 Suppl 1:12-19.

[ 9 ] CHAUSSADE C, CHO K, MAWSON C, et al. Functional differences between two classes of oncogenic mutation in the PIK3CA gene[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2009,381(4):577-581.

[10] LI J, YANG L, GAUR S, et al. Mutants TP53 p.R273H and p.R273C but not p.R273G enhance cancer cell malignancy[J]. Hum Mutat, 2014,35(5):575-584.

[11] RIVA F, BIDARD F C, HOUY A, et al. Patient-specific circulating tumor DNA detection during neoadjuvant chemotherapy in triple-negative breast cancer[J]. Clin Chem, 2017,63(3):691-699.

[12] VAN GINKEL J H, DE LENG W W, DE BREE R, et al. Targeted sequencing reveals TP53 as a potential diagnostic biomarker in the post-treatment surveillance of head and neck cancer[J]. Oncotarget, 2016,7(38):61575-61586.

[13] MOCHIZUKI H, SHAPIRO S G, BREEN M. Detection of BRAF mutation in urine DNA as a molecular diagnostic for canine urothelial and prostatic carcinoma[J]. PLoS One, 2015,10(12):e0144170.

[14] CHRISTENSEN E, BIRKENKAMP-DEMTR?DER K, NORDENTOFT I, et al. Liquid biopsy analysis of FGFR3 and PIK3CA hotspot mutations for disease surveillance in bladder cancer[J]. Eur Urol, 2017,71(6):961-969.

[15] CHEN S, ZHAO J, CUI L, et al. Urinary circulating DNA detection for dynamic tracking of EGFR mutations for NSCLC patients treated with EGFR-TKIs[J]. Clin Transl Oncol, 2017,19(3):332-340.

[16] SHENG Y, WANG T, LI H, et al. Comparison of analytic performances of Cellsearch and iFISH approach in detecting circulating tumor cells[J].Oncotarget,2017,8(5):8801-8806.

[17] REID A L, FREEMAN J B, MILLWARD M, et al. Detection of BRAF-V600E and V600K in melanoma circulating tumour cells by droplet digital PCR[J].Clin Biochem, 2015, 48(15):999-1002.

[18] PARKINSON C A, GALE D, PISKORZ A M, et al. Exploratory analysis of TP53 mutations in circulating tumour DNA as biomarkers of treatment response for patients with relapsed high-grade serous ovarian carcinoma: a retrospective study[J]. PLoS Med, 2016,13(12):e1002198.

[19] TAKESHITA T, YAMAMOTO Y, YAMAMOTO-IBUSUKI M, et al. Prognostic role of PIK3CA mutations of cell-free DNA in early-stage triple negative breast cancer[J]. Cancer Sci, 2015,106(11):1582-1589.

[20] YU M, BARDIA A, WITTNER B S, et al. Circulating breast tumor cells exhibit dynamic changes in epithelial and mesenchymal composition[J]. Science, 2013,339(6119):580-584.

[21] MOSTERT B, SIEUWERTS A M, KRAAN J, et al. Gene expression profiles in circulating tumor cells to predict prognosis in metastatic breast cancer patients[J]. Ann Oncol, 2015,26(3):510-516.

[22] GIORDANO A, EGLESTON B L, HAJAGE D, et al. Establishment and validation of circulating tumor cell-based prognostic nomograms in first-line metastatic breast cancer patients[J]. Clin Cancer Res, 2013,19(6):1596-1602.

[23] XU L, JIA S, LI H, et al. Characterization of circulating tumor cells in newly diagnosed breast cancer[J]. Oncol Lett, 2018,15(2):2522-2528.

[24] ZARDAVAS D, TE MARVELDE L, MILNE R L, et al. Tumor PIK3CA genotype and prognosis in early-stage breast cancer: a pooled analysis of individual patient data[J]. J Clin Oncol, 2018:JCO2017748301.

[25] KALINSKY K, JACKS L M, HEGUY A, et al. PIK3CA mutation associates with improved outcome in breast cancer[J]. Clin Cancer Res, 2009,15(16):5049-5059.

[26] DOBES P, PODHOREC J, COUFAL O, et al. Influence of mutation type on prognostic and predictive values of TP53 status in primary breast cancer patients[J]. Oncol Rep, 2014,32(4):1695-1702.

[27] FERNANDEZ-CUESTA L, OAKMAN C, FALAGAN-LOTSCH P, et al. Prognostic and predictive value of TP53 mutations in node-positive breast cancer patients treated with anthracycline- or anthracycline/taxane-based adjuvant therapy: results from the BIG 02-98 phase Ⅲ trial[J]. Breast Cancer Res, 2012,14(3):R70.

[28] CURTIS C, SHAH S P, CHIN S F, et al. The genomic and transcriptomic architecture of 2,000 breast tumours reveals novel subgroups[J]. Nature, 2012,486(7403):346-352.