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        凡納濱對(duì)蝦ATG6基因克隆及其在WSSV感染中的表達(dá)

        2018-05-03 12:32:50褚吉興孟凡娟張廣成耿緒云王麗燕
        安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2018年12期
        關(guān)鍵詞:胰臟凡納濱對(duì)蝦

        褚吉興,孟凡娟,張廣成,耿緒云,王麗燕*

        (1.天津師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,天津市動(dòng)植物抗性重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津 300387;2.天津市水產(chǎn)研究所,天津 300221)

        凡納濱對(duì)蝦(Litopenaeusvannamei)作為我國重要的對(duì)蝦養(yǎng)殖品種,具有極高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值和食用價(jià)值。但是,近年來對(duì)蝦病害的發(fā)生使對(duì)蝦養(yǎng)殖業(yè)遭受了重大經(jīng)濟(jì)損失,尤以病毒性疾病發(fā)生最為嚴(yán)重[1]。其中,白斑綜合征病毒(white spot syndrome virus,WSSV)自 1992 年暴發(fā)以來就成為我國及東南亞地區(qū)對(duì)蝦養(yǎng)殖業(yè)主要病毒性病原之一,目前尚無有效防治策略。

        越來越多的研究表明,自噬在病毒侵染增殖中發(fā)揮了重要作用[2-7]。自噬作為一種溶酶體降解途徑,是實(shí)現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)與能量平衡的一種重要的細(xì)胞學(xué)過程。在酵母中,已經(jīng)有超過36種自噬相關(guān)基因(autophagy related gene,ATG)被鑒定,而這些基因中的大部分都在哺乳動(dòng)物中存在相應(yīng)的同源基因[8-9]。自噬相關(guān)基因參與到調(diào)控自噬機(jī)制的整個(gè)過程當(dāng)中,包括自噬泡的形成、自噬體膜的延伸、自噬小體與溶酶體融合以及自噬溶酶體的降解等[9-12]。研究發(fā)現(xiàn),自噬可成功地抑制胞內(nèi)病毒的復(fù)制及增殖,如Sindbis病毒和煙草花葉病毒感染宿主時(shí)[13];有的病毒通過抑制自噬促進(jìn)自身增殖,如I型單純皰疹病毒和I型人類免疫缺陷病毒[14-16];另有一些昆蟲類病毒如黃病毒已進(jìn)化出相關(guān)機(jī)制調(diào)控Akt-mTOR通路,從而可以逃逸宿主自噬免疫防御達(dá)到增殖的目的[17-19]。西米利奇森林病毒的增殖則會(huì)被宿主自噬水平的增強(qiáng)所抑制[20-21]??梢?,不同的病毒與宿主自噬的相互作用關(guān)系亦不一樣。

        目前針對(duì)細(xì)胞自噬展開的研究越來越多,但是對(duì)蝦自噬研究仍鮮見報(bào)道。筆者首次對(duì)凡納濱對(duì)蝦自噬相關(guān)基因LvATG6進(jìn)行了克隆,并對(duì)其組織表達(dá)特征和在WSSV感染后的表達(dá)情況進(jìn)行了分析,以期為對(duì)蝦自噬與病毒作用關(guān)系的研究奠定基礎(chǔ),為對(duì)蝦免疫和病毒防治策略的研究開辟新的思路。

        1 材料與方法

        1.1材料

        1.1.1試驗(yàn)動(dòng)物。試驗(yàn)所用的凡納濱對(duì)蝦購自天津恒興富民水產(chǎn)養(yǎng)殖合作社,體重(10.2±1.0) g,體長(10.0±1.6)cm。試驗(yàn)前將其置于循環(huán)水族缸內(nèi)暫養(yǎng),養(yǎng)殖溫度為25 ℃,每天喂食1次,使其適應(yīng)新環(huán)境,選取健康有活力的對(duì)蝦用于試驗(yàn)。用于刺激對(duì)蝦的WSSV病毒懸液參照文獻(xiàn)[22]制備。

        1.1.2試劑。TRIzolTMReagent購自Invitrogen公司;M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Promega公司;質(zhì)粒提取試劑盒及瓊脂糖凝膠回收試劑盒購自上海生工生物公司;pMD18-T載體連接試劑盒購自大連寶生物公司;DNA Marker、DH5α感受態(tài)細(xì)胞購自北京天根生物公司;其他藥品均為國產(chǎn)分析純;引物序列由華大基因公司合成,引物序列見表1。

        1.1.3儀器。PCR儀(Applied Biosystems)、GelDocTMXR成像系統(tǒng)(Bio-Rad)、Nano Drop 2000分光光度計(jì)(Thermo)、電泳儀(Bio-Rad)、臺(tái)式冷凍離心機(jī)(Eppendorf)。

        表1 試驗(yàn)所用引物序列信息

        1.2方法

        1.2.1凡納濱對(duì)蝦組織樣品制備。選取7尾健康有活力的凡納濱對(duì)蝦,分別取鰓、肝胰臟、心臟、血細(xì)胞、前腸、中腸、后腸、表皮、神經(jīng)、肌肉,凍存于液氮中備用。

        另取30尾健康有活力的凡納濱對(duì)蝦,注射10 μL病毒懸液[22]。將感染病毒后的對(duì)蝦置于水溫為25 ℃的循環(huán)水族缸內(nèi)養(yǎng)殖,分別在注射病毒后的6、12、24、36、48 h,各取5尾對(duì)蝦的鰓和肝胰臟組織分別凍存于液氮中備用。

        1.2.2凡納濱對(duì)蝦總RNA提取及cDNA合成。按照提取總RNA的TRIzol試劑盒說明書分別提取正常凡納濱對(duì)蝦及感染W(wǎng)SSV不同時(shí)間各組織總RNA,利用Nano Drop 2000分光光度計(jì)以及瓊脂糖凝膠電泳對(duì)RNA進(jìn)行純度和定量分析。樣品檢測(cè)合格后,取1 μg RNA作為反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)模板,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書,以引物AOLP、BDA為接頭引物合成cDNA后用于基因全長克隆,使用隨機(jī)引物并以感染病毒后對(duì)蝦組織總RNA為模板合成cDNA用于半定量PCR檢測(cè)。

        1.2.3LvATG6基因克隆。根據(jù)轉(zhuǎn)錄組序列設(shè)計(jì)凡納濱對(duì)蝦自噬相關(guān)基因ATG6全長特異性引物L(fēng)vATG6-F、LvATG6-R,以“1.2.2”中合成的cDNA為模板進(jìn)行PCR反應(yīng)。25 μL的反應(yīng)體系中包含無酶水8.5 μL、LvATG6-F引物1 μL、LvATG6-R引物1 μL、2×TaqPCR Master Mix 12.5 μL、鰓cDNA 2 μL。反應(yīng)條件為94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性50 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min,4 ℃冷卻。產(chǎn)物在1.0%的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行檢測(cè),切膠回收后與pMD18-T載體進(jìn)行16 ℃連接,轉(zhuǎn)化DH5α后挑取單菌落送至蘇州金唯智生物公司進(jìn)行測(cè)序。

        1.2.4LvATG6基因序列的生物信息學(xué)分析。使用在線網(wǎng)址(http://web.expasy.org/compute_pi)預(yù)測(cè)等電點(diǎn)和分子量;應(yīng)用NCBI的CDD數(shù)據(jù)庫(http://www.ncbi.nlm.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)分析基因編碼氨基酸的結(jié)構(gòu)域特征。應(yīng)用在線翻譯軟件(http://web.expasy.org/translate/)對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行氨基酸翻譯;應(yīng)用Clustal W與MEGA 5.0.1對(duì)不同物種的ATG6蛋白比對(duì)和分析,構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

        1.2.5LvATG6組織表達(dá)分析。 半定量PCR檢測(cè)目的基因差異表達(dá)所用組織為正常凡納濱對(duì)蝦鰓、肝胰臟、心臟、血細(xì)胞、前腸、中腸、后腸、表皮、神經(jīng)、肌肉,以18SrRNA-F、18SrRNA-R為引物進(jìn)行PCR,25 μL的反應(yīng)體系中包含無酶水8.5 μL、18SrRNA-F引物1 μL、18SrRNA-R引物1 μL、2×TaqPCR Master Mix 12.5 μL、各組織cDNA 2 μL。反應(yīng)條件為94 ℃預(yù)變性4 min;94 ℃變性50 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,26個(gè)循環(huán);72 ℃總延伸10 min,4 ℃冷卻。產(chǎn)物在1.0%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行檢測(cè),調(diào)整各組織模板加入量,使18SrRNA引物擴(kuò)增出來的條帶亮度一致,記錄各組織模板的加入量。按照相同條件,換用LvATG6-semi-F、LvATG6-semi-R引物進(jìn)行PCR反應(yīng),擴(kuò)增產(chǎn)物于1.0%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行檢測(cè)。

        1.2.6WSSV侵染后LvATG6的組織表達(dá)分析。以WSSV感染不同時(shí)間的鰓和肝胰臟組織cDNA為模板進(jìn)行半定量PCR,25 μL的反應(yīng)體系中包含無酶水8.5 μL、LvATG6-semi-F引物1 μL、LvATG6-semi-R引物1 μL、2×TaqPCR Master Mix 12.5 μL、各組織cDNA根據(jù)調(diào)整量添加。PCR反應(yīng)同“1.2.5”中條件。產(chǎn)物在1.0%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行檢測(cè)。18SrRNA作為內(nèi)參。

        2 結(jié)果與分析

        2.1LvATG6基因克隆及序列分析該研究利用PCR技術(shù)克隆獲得了LvATG6 cDNA全長(圖1),共1 275 bp,編碼424個(gè)氨基酸,蛋白分子量為51.5 kD,等電點(diǎn)為5.47,含有1個(gè)自噬相關(guān)結(jié)構(gòu)域——APG6結(jié)構(gòu)域。多序列比對(duì)結(jié)果顯示(圖2),LvATG6編碼的蛋白與節(jié)肢動(dòng)物門其他物種自噬相關(guān)蛋白具有很高的序列相似性,其中與臭蟲、白蟻ATG6基因編碼的自噬相關(guān)蛋白序列相似性高達(dá)59%。利用MEGA5.0.1軟件的鄰接法(Neighbor-Joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,結(jié)果顯示(圖3),LvATG6蛋白獨(dú)自一支,但與臭蟲的親緣關(guān)系較近。

        2.2LvATG6的組織表達(dá)特征運(yùn)用半定量PCR技術(shù)檢測(cè)LvATG6基因在凡納濱對(duì)蝦10種組織中的表達(dá)情況,結(jié)果顯示(圖4),LvATG6在檢測(cè)的凡納濱對(duì)蝦10種組織中均有表達(dá),在前腸、中腸、后腸中的表達(dá)量最高。

        2.3WSSV侵染后LvATG6的組織表達(dá)特征利用半定量PCR技術(shù),分別檢測(cè)LvATG6感染W(wǎng)SSV后6、12、24、36、48 h在鰓和肝胰臟組織中的表達(dá)變化,結(jié)果顯示(圖5),在病毒感染6和12 h時(shí),鰓組織中的LvATG6表達(dá)量最高,而在24、36和48 h時(shí)表達(dá)量較低;在病毒感染6 h時(shí),LvATG6在肝胰臟組織中表達(dá)量很低,而在12~48 h時(shí)出現(xiàn)顯著的基因表達(dá)上調(diào)。

        3 討論

        自噬過程普遍存在于真核生物中,不僅可維持細(xì)胞內(nèi)自身物質(zhì)平衡,在病原感染方面發(fā)揮的作用也越來越被重視[23-24],其發(fā)生的過程嚴(yán)格受到自噬相關(guān)基因調(diào)控。

        該研究成功獲得了凡納濱對(duì)蝦自噬相關(guān)基因LvATG6的cDNA全長,該基因編碼的蛋白含有1個(gè)自噬相關(guān)結(jié)構(gòu)域——APG6結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)負(fù)責(zé)協(xié)調(diào)自噬體的形成。生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),LvATG6基因與節(jié)肢動(dòng)物門其他物種該基因具有較高的同源性,其中與臭蟲、白蟻ATG6基因編碼的自噬相關(guān)蛋白序列相似性高達(dá)59%,說明LvATG6基因與已被報(bào)道的其他物種的ATG6基因在氨基酸組成和潛在功能上無較大差異,是一種在各物種中比較保守的自噬相關(guān)蛋白。

        注:黑色方框?yàn)槠鹗济艽a子,*表示終止密碼子;紅色框內(nèi)為APG6結(jié)構(gòu)域Note:The initiation codon(ATG) was boxed in black,the stop codon was marked with an asterisk,the APG6 domain was boxed in red圖1 凡納濱對(duì)蝦LvATG6 cDNA全長及編碼的氨基酸序列Fig.1 Full-length of L.vannamei ATG6 cDNA and deduced amino acid sequence

        注:臭蟲(XP_014247219.1);傳粉榕小蜂(XP_011496307.1);麥芽蜂(XP_015589297.1);蘆蜂(XP_017879818.1);蕪菁葉蜂(XP_012258889.1);白蟻(PNF22772.1)Nnote:Cimex lectularius(XP_014247219.1);Ceratosolen solmsi marchali(XP_011496307.1);Cephus cinctus(XP_015589297.1);Ceratina calcarata(XP_017879818.1);Athalia rosae(XP_012258889.1);Cryptotermes secundus(PNF22772.1)圖2 凡納濱對(duì)蝦LvATG6與其他物種ATG6的氨基酸序列比對(duì)分析Fig.2 Analysis of amino acid sequence alignment based on LvATG6 gene of L.vannamei and other species ATG6

        注:麥芽蜂(XP_015589297.1);蕪菁葉蜂(XP_012258889.1);蘆蜂(XP_017879818.1);蜂類(XP_015439892.1);傳粉榕小蜂(XP_011496307.1);麗蠅蛹集金小蜂(XP_001601439.1);白蟻(PNF22772.1);臭蟲(XP_014247219.1);茶翅蝽(XP_014273603.1);子彈蟻(XP_014479707.1);內(nèi)華達(dá)古白蟻(XP_021921721.1);多胚跳小蜂(XP_014219117.1)Note:C.cinctus(XP_015589297.1);A.rosae(XP_012258889.1);C.calcarata(XP_017879818.1);Dufourea novaeangliae(XP_015439892.1);C.solmsi marchali(XP_011496307.1);Nasonia vitripennis(XP_001601439.1);C.secundus(PNF22772.1);Cimex lectularius(XP_014247219.1);Halyomorpha halys(XP_014273603.1);Dinoponera quadriceps(XP_014479707.1);Zootermopsis nevadensis(XP_021921721.1);Copidosoma floridanum(XP_014219117.1)圖3 LvATG6與其他物種ATG6之間的進(jìn)化樹分析Fig.3 The phylogenetic tree of LvATG6 with ATG6s from other species

        注:1.心;2.肝胰臟;3.鰓;4.血細(xì)胞;5.前腸;6.中腸;7.后腸;8.表皮;9.神經(jīng);10.肌肉Note:1.heart;2.Hepatopancreas;3.gills;4.blood cells;5.foregut;6.midgut;7.hindgut;8.skin;9.nerves;10.muscles圖4 LvATG6在凡納濱對(duì)蝦不同組織中的分布Fig.4 Expression of LvATG6 of L.vannamei in different tissues

        圖5 WSSV感染不同時(shí)間LvATG6在凡納濱對(duì)蝦鰓和肝胰臟組織中的表達(dá)變化Fig.5 Expression of LvATG6 in the hepatopancreas and gills of L.vannamei after WSSV infection

        LvATG6組織表達(dá)研究顯示,LvATG6在檢測(cè)的10種對(duì)蝦組織中均有表達(dá),表明自噬是一種在對(duì)蝦機(jī)體細(xì)胞中廣泛存在的現(xiàn)象,不具有組織特異性,但其表達(dá)量在不同組織中有差異,在鰓和腸道組織中的表達(dá)量均較高。鰓和腸道組織是對(duì)蝦重要的免疫器官,也是WSSV入侵的靶器官[25]。自噬相關(guān)基因LvATG6的高表達(dá)暗示自噬在鰓和腸道免疫中可能也發(fā)揮了重要作用。

        為進(jìn)一步揭示自噬相關(guān)蛋白LvATG6及自噬在WSSV感染中的作用,筆者檢測(cè)了WSSV感染后,凡納濱對(duì)蝦LvATG6基因在對(duì)蝦鰓和肝胰臟組織中的表達(dá)變化,發(fā)現(xiàn)LvATG6在病毒感染不同時(shí)間表達(dá)差異顯著,在WSSV的靶組織鰓中LvATG6表達(dá)量呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),分析推測(cè)病毒侵染早期調(diào)控或影響了自噬相關(guān)基因LvATG6及細(xì)胞自噬,宿主細(xì)胞為避免病毒對(duì)自身的利用和增殖,感染后期相對(duì)地下調(diào)LvATG6表達(dá),對(duì)抗病毒的侵染增殖[26]。

        目前,自噬在病毒侵染增殖中的作用主要有3個(gè)方面[14,27-32]:①自噬抑制病毒增殖。Shelly等[27]使用對(duì)果蠅無致病性的VSV分別感染Atg-1和Atg-5沉默的果蠅后,試驗(yàn)組的果蠅大量死亡而且病毒滴度顯著高于對(duì)照組,表明在果蠅體內(nèi)自噬對(duì)水泡性口炎病毒的感染起重要的拮抗作用。②病毒劫持自噬。人皰疹病毒可以通過抑制自噬的上游激活信號(hào)通路、影響自噬相關(guān)蛋白的功能、干擾自噬的調(diào)節(jié)機(jī)制以及抑制自噬相關(guān)的免疫應(yīng)答等方式來破壞自噬、阻滯自噬的清除作用[28]。單純皰疹病毒I型的神經(jīng)毒性蛋白可以結(jié)合Beclin 1而阻止自噬過程的發(fā)生[14],除以Beclin 1為靶點(diǎn)外,HSV-1的ICP34.5蛋白還能通過招募 PP1α 使 PKR下游蛋白eIF2α去磷酸化抑制自噬體的形成。③自噬促進(jìn)病毒增殖。鼠肝炎病毒和SARS病毒感染之后可以在自噬泡上發(fā)現(xiàn)病毒蛋白;馬動(dòng)脈炎病毒的復(fù)制和轉(zhuǎn)錄的復(fù)合體在自噬泡上被發(fā)現(xiàn);輪狀病毒感染后,病毒復(fù)制相關(guān)蛋白NSP4可以從未成熟的雙層膜小泡中移行至內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中,并且與NSP5及LC3Ⅱ有共定位現(xiàn)象[29]。黃病毒科的登革熱病毒可以誘導(dǎo)自噬的發(fā)生,而且促進(jìn)自噬有助于病毒的復(fù)制[30];柯薩奇病毒敲除Atg7基因后,病毒的復(fù)制水平顯著下降以及成熟病毒粒子的釋放受到抑制[31];在新城疫病毒感染神經(jīng)膠質(zhì)瘤細(xì)胞的試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)使用RNAi干擾分別沉默Atg5和Beclin1后,病毒滴度都有顯著下降的現(xiàn)象[32];口蹄疫病毒在感染時(shí)也發(fā)現(xiàn)非結(jié)構(gòu)蛋白 2B、2C 和3A 與 LC3 共定位而結(jié)構(gòu)蛋白 VP1 與 Atg-5 共定位的現(xiàn)象,并且刺激自噬有能夠增強(qiáng)病毒的水平[33]??梢娮允晒δ艿陌l(fā)揮是具有病毒種類特異性的。因此,了解自噬與病毒感染之間的關(guān)系對(duì)控制病害的傳播意義重大。

        總之,筆者通過克隆獲得了LvATG6 cDNA全長,對(duì)其組織表達(dá)特征進(jìn)行了分析,并對(duì)LvATG6在WSSV感染中的作用進(jìn)行了研究,研究結(jié)果表明對(duì)蝦自噬在WSSV侵染增殖中發(fā)揮了一定作用。但是,對(duì)蝦自噬發(fā)生究竟是促進(jìn)病毒增殖,還是抑制病毒增殖,有待于深入研究。

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