張雪丹,楊娟俠,王 丹,王明林,辛 力,*

(1.山東省果樹研究所,山東泰安 271000; 2.山東農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東泰安 271000)

果膠是一種天然的大分子聚合性多糖,以由α-1,4-糖苷鍵連接組成的D-半乳糖醛酸等酸性雜多糖為主。果膠大量存在于植物細(xì)胞壁中,對(duì)維持植物的結(jié)構(gòu)、硬度和細(xì)胞pH等有至關(guān)重要的作用[1-3]。

果膠因具有良好的乳化、增稠、穩(wěn)定和凝膠作用而被廣泛應(yīng)用,如在食品領(lǐng)域,果膠主要是作為膠凝劑、穩(wěn)定劑和脂肪替代品等功能性食品配料;在醫(yī)藥領(lǐng)域,果膠具有降低血脂、抵抗各種癌癥等多種功能;作為生物聚合物,果膠逐漸在活性包裝中得到廣泛應(yīng)用[4-6]。目前,果膠的主要來(lái)源是柚子和柑橘等果皮,更多的具有不同結(jié)構(gòu)和凝膠性能的亟待開發(fā)果膠[7-8]。

柿果含有豐富的果膠物質(zhì)且果膠品質(zhì)良好[9-10],但因澀柿果含有大量單寧,單寧與果膠的氫鍵和疏水鍵相互作用而產(chǎn)生聚集,抑制了果膠的提取效率[11-12],因此本研究以脫澀的柿果為原料進(jìn)行柿果膠提取工藝優(yōu)化研究,這不僅可解決澀柿商品價(jià)值低、深加工產(chǎn)品少的問題,還可為生產(chǎn)提供新的果膠產(chǎn)品。

本研究在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,以果膠得率為響應(yīng)值,通過響應(yīng)面分析法對(duì)柿果膠酸提醇沉法的提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,為柿果膠的工業(yè)化生產(chǎn)提供技術(shù)支持。同時(shí)對(duì)果膠進(jìn)行色澤、酯化度、分子量、單糖組成和紅外光譜等理化性質(zhì)和組成成分分析,為柿果膠的進(jìn)一步開發(fā)利用提供理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

金瓶柿 2015.10.17和2016.10.9采摘于山東省臨沂市沂水縣高橋鎮(zhèn)鳳凰官莊柿園;單糖標(biāo)準(zhǔn)品巖藻糖、阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖、木糖、果糖、半乳糖醛酸(均為分析純)、葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)品MW135350、36800、9750、2700 Da(均為色譜純)、溴化鉀(光譜純) 美國(guó)Sigma公司;氫氧化鈉、鹽酸、乙醇、醋酸鈉、酚酞三氟乙酸 分析純,天津市凱通化學(xué)試劑有限公司。

Minolta CR-400色差計(jì) 日本Minolta株式會(huì)社;ML-204電子天平 梅特勒—托利多國(guó)際貿(mào)易(上海)有限公司;MS300磁力攪拌器 鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;5810R高速離心機(jī) 艾本德(上海)國(guó)際貿(mào)易有限公司;0.22 μm微孔濾膜和膜過濾器 上海興亞凈化材料廠;ICS-5000離子色譜儀 美國(guó)Dionex股份有限公司;Nicolet Nexus 470傅里葉紅外光譜儀 美國(guó)Termo Electron 公司;Waters1525 高效液相色譜儀 美國(guó)Waters公司。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 原料處理 以金瓶柿為試材,柿果在20 ℃下,CO2含量90%～95%的密閉環(huán)境中脫澀處理24 h,然后均勻切制成5 mm厚度的薄片,并經(jīng)55 ℃恒溫干燥,打粉,過100目篩備用。

1.2.2 柿果膠提取工藝 稱取10.0 g柿粉,加入一定液料比和不同pH的HCl提取液,在特定溫度下加熱提取一定時(shí)間后快速過濾,濾液冷卻至0 ℃時(shí)加入與濾液等量的95%乙醇提取,靜置1 h后離心10 min(5000 r/min,0 ℃)得絮狀沉淀,然后用20 mL 70%酸性乙醇(0.5% HCl)洗滌沉淀1 h,離心10 min(5000 r/min,0 ℃)后沉淀用20 mL 96%乙醇洗滌1 h,再次離心(5000 r/min,0 ℃),沉淀置于45 ℃烘箱中烘干24 h,粉碎后即得柿果膠。

1.2.3 提取工藝優(yōu)化

1.2.3.1 單因素實(shí)驗(yàn) 選取提取液pH、液料比、提取時(shí)間、提取溫度作為影響因素,以柿果膠得率為評(píng)價(jià)指標(biāo),進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn)。研究提取液pH對(duì)果膠得率影響的單因素實(shí)驗(yàn)條件為液料比20∶1 (g/g),提取溫度60 ℃,提取時(shí)間60 min,pH分別為2.0、2.5、3.0、3.5、4.0和4.5;液料比對(duì)果膠得率影響的單因素實(shí)驗(yàn)條件為提取液pH4.0、提取溫度60 ℃,提取時(shí)間60 min,液料比分別為10∶1、15∶1、20∶1、25∶1、30∶1和35∶1 (g/g);提取時(shí)間對(duì)果膠得率影響的單因素實(shí)驗(yàn)條件為提取液pH4.0,液料比20∶1 (g/g),提取溫度70 ℃,提取時(shí)間分別為50、70、90、110、130 min;提取溫度對(duì)果膠得率影響的單因素實(shí)驗(yàn)條件為提取液pH4.0,液料比20∶1 (g/g),提取時(shí)間60 min,提取溫度分別為70、80、90、100 ℃。每個(gè)處理做三個(gè)重復(fù)。

1.2.3.2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn) 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,采用四因素三水平的響應(yīng)面分析法,以果膠得率為響應(yīng)值,設(shè)計(jì)響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)因素和水平見表1。

表1 響應(yīng)面分析因素與水平Table 1 Factors and levels of response surface methodology

1.2.4 柿果膠理化性質(zhì)的分析

1.2.4.1 提取果膠的色澤 將干燥、粉碎后的柿果膠平鋪(5 mm),用Minolta CR-400色差計(jì)測(cè)定色澤,讀取L*、a*、b*值。采用Hunter表色系統(tǒng)[13-14],以L*、C*、h°表示柿果果膠的顏色變化,其中L*為果膠亮度;C*為彩度,C*值越大表明樣品顏色越純;h°為色度角,h°值越大表示樣品紅色減弱,黃色增強(qiáng)。C*和h°的計(jì)算公式如下:

1.2.4.2 果膠酯化度測(cè)定 果膠酯化度(degree of esterification,DE)的測(cè)定參考Pinheiro[15]的方法并稍有改進(jìn)。稱取50.0 mg柿果膠樣品移入250 mL碘量瓶中,用2 mL乙醇潤(rùn)濕,加入100 mL不含CO2的純水,塞緊瓶口振蕩,待樣品全部溶解后加入5滴1.0%的酚酞,用0.1 mol/L 的NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行滴定,記錄所消耗NaOH的體積(V1)即為初滴定度。繼續(xù)加入20 mL、0.5 mol/L 的NaOH標(biāo)準(zhǔn)液,加塞后強(qiáng)烈振搖15 min,加入20 mL、0.5 mol/L的HCl溶液,振搖至粉紅色消失為止。然后加入5滴酚酞,用0.1 mol/L NaOH溶液滴定至呈微紅色。記錄消耗NaOH的體積(V2)即為皂化滴定度。酯化度計(jì)算公式:

1.2.4.3 果膠分子量測(cè)定 采用高效凝膠過濾色譜法(HPGFC)測(cè)定柿果膠分子質(zhì)量[16],樣品處理與色譜條件如下:稱取樣品15 mg溶解于流動(dòng)相中,定容至10 mL,離心后上清液用0.22 μm微孔濾膜過濾后供進(jìn)樣。儀器:Waters1525 高效液相色譜儀;色譜柱:UltrahydrogelTMLinear 300 mm×7.8 mm×2;流動(dòng)相:0.1 mol/L NaNO3;流速:0.9 mL/min;柱溫:45 ℃;檢測(cè)器:示差折光檢測(cè)器。分子量校正曲線所用葡聚糖對(duì)照品標(biāo)準(zhǔn)品:Dextran Standand(MW135350、36800、9750、2700 Da)。

1.2.4.4 單糖組成分析 采用高效陰離子交換色譜-脈沖安培檢測(cè)器測(cè)定柿果膠單糖組成[17],樣品處理與色譜條件如下:稱取10.0 mg柿果膠樣品加入1.0 mL的4.0 mol/L的三氟乙酸(TFA),充N2后封閉試管,110 ℃烘箱中水解2 h,冷卻后打開試管,用N2吹干除去TFA,水解的果膠液用超純水定容至50 mL,離心后上清液經(jīng)0.22 μm微膜過濾后進(jìn)樣。將上述水解后的果膠液樣進(jìn)至Dionex的ICS-5000離子色譜儀,采用梯度法測(cè)定果膠的單糖組成。離子色譜條件:色譜柱:CarboPac PA20(3×150 mm);流動(dòng)相:水、250 mmol/L NaOH和1.0 mol/L CH3COONa梯度洗脫;流速:0.5 mL/min;柱溫:30 ℃;進(jìn)樣量:100 μL;檢測(cè)器:脈沖安培檢測(cè)器檢測(cè)。

1.2.4.5 果膠的紅外光譜(IR)分析 參照Park等[18]的方法,將適量的果膠樣品與預(yù)先干燥好的KBr混勻并研細(xì),壓片制樣,用傅里葉紅外光譜儀迅速在4000～400 cm-1的區(qū)間進(jìn)行紅外光譜掃描,觀察譜峰情況。

1.3 數(shù)據(jù)處理

2 結(jié)果與分析

2.1 柿果膠單因素提取實(shí)驗(yàn)

2.1.1 提取液pH對(duì)果膠得率的影響 有研究報(bào)道,酸液提取是果膠酸提工藝中最重要的因素,其效果直接決定著果膠的最終產(chǎn)量,并對(duì)質(zhì)量也有很大的影響[19]。我們研究不同pH的HCl提取液對(duì)柿果膠得率的影響,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖1所示。研究發(fā)現(xiàn),pH2.0～4.0時(shí),果膠得率隨pH增加而增加,pH4.0時(shí)果膠得率最高,隨后果膠得率隨pH增加而降低。這可能是因?yàn)槭凉z在強(qiáng)酸環(huán)境下(pH<3.5)會(huì)去酯化和配糖鍵水解,弱酸環(huán)境下(pH>4.0)會(huì)產(chǎn)生去酯化,引起果膠分子降解,使長(zhǎng)鏈變成短鏈,造成果膠得率的下降,從而影響柿果膠的最終產(chǎn)量[20-21]。

圖1 pH對(duì)果膠得率的影響Fig.1 Effects of pH on the pectin yield

2.1.2 液料比對(duì)果膠得率的影響 圖2為液料比對(duì)柿果膠得率的影響。從上圖可知,當(dāng)液料比在10∶1～25∶1 (g/g)之間時(shí),果膠得率呈上升趨勢(shì),隨后果膠得率呈下降趨勢(shì),酸提醇沉柿果膠時(shí)液料比為25∶1時(shí)果膠得率最高。這可能是由于液料比太低導(dǎo)致無(wú)法完全溶解和提取出原料中的柿果膠,液料比過高則會(huì)浪費(fèi)酸溶液,同時(shí)增加后續(xù)過濾和沉淀難度,使得果膠損失增大[22],因此選用25∶1為最適液料比。

圖2 液料比對(duì)果膠得率的影響Fig.2 Effect of solvent-to-solid ratio on the pectin yield

2.1.3 提取時(shí)間對(duì)果膠得率的影響 研究不同提取時(shí)間對(duì)果膠得率的影響,結(jié)果表明(見圖3),果膠得率隨提取時(shí)間增加出現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì),提取時(shí)間在90 min時(shí),果膠得率最高。這可能是由于酸提取時(shí)間過短,原果膠不能充分水解,而酸提取時(shí)間過長(zhǎng),部分果膠又被進(jìn)一步水解成果膠酸[23],從而降低了果膠得率。

圖3 提取時(shí)間對(duì)果膠得率的影響Fig.3 Effects of extraction time on the pectin yield

2.1.4 提取溫度對(duì)果膠得率的影響 圖4為提取溫度對(duì)果膠得率的影響,由此可知,提取溫度對(duì)果膠得率的影響較大,提取溫度在70～90 ℃時(shí),果膠得率隨提取溫度的升高而增加。但提取溫度超過90 ℃后果膠得率下降,這可能是因?yàn)闇囟壬哂欣诠z的水解,但當(dāng)溫度過高時(shí)會(huì)破壞果膠的結(jié)構(gòu),致使果膠變性，使果膠的得率降低[24]。因此選取了80、85、90 ℃作為提取溫度。

圖4 提取溫度對(duì)果膠得率的影響Fig.4 Effects of extraction temperature on the pectin yield

2.2 響應(yīng)面法優(yōu)化柿果膠提取結(jié)果分析

2.2.1 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果 超聲波提取柿果膠的響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)方案和結(jié)果如表2所示。本分析實(shí)驗(yàn)共有29個(gè)實(shí)驗(yàn)點(diǎn),其中1～24為析因?qū)嶒?yàn),25～29為零點(diǎn)中心實(shí)驗(yàn),析因點(diǎn)為因素X1、X2、X3和X4所構(gòu)成的多維空間頂點(diǎn);零點(diǎn)為區(qū)域的中心點(diǎn),中心實(shí)驗(yàn)重復(fù)5次,用以估計(jì)實(shí)驗(yàn)誤差。

表2 柿果膠提取響應(yīng)面分析實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Experimental design for response surface analysis and corresponding experiment data

采用Design-Expert 8.06軟件對(duì)表2的結(jié)果進(jìn)行多元線性回歸擬合,得到柿果膠得率(Y)對(duì)提取液pH(X1)、液料比(X2)、提取時(shí)間(X3)、提取溫度(X4)的二次多項(xiàng)回歸方程模型:Y=6.352-0.08X1-0.312X2+0.718X3+0.901X4+0.143X1X2+5.000E-003X1X3+0.048X1X4+0.013X2X3+0.06X2X4-0.265X3X4-0.321X12- 0.284X22-0.190X32- 0.223X42。同時(shí),對(duì)表2數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,結(jié)果如表3所示。

由表3可知,果膠得率模型顯著,一次項(xiàng)X1、X2、X3、X4均極顯著;二次項(xiàng)X12、X22、X32、X42極顯著;交互項(xiàng)X1X2、X3X4極顯著,其余交互項(xiàng)均不顯著。4個(gè)因素對(duì)柿果膠得率的影響順序?yàn)?X4>X3>X2>X1。

表3 回歸模型系數(shù)顯著性檢驗(yàn)及方差分析Table 3 Significance testing and variance analysis of model regression coefficient

二次回歸方程的F檢驗(yàn)和失擬性檢驗(yàn)結(jié)果表明:模型F值為197.35,p<0.01,說(shuō)明模型顯著;失擬項(xiàng)p>0.05,二次回歸方程的擬合性較好,即可用此回歸模型對(duì)果膠提取進(jìn)行分析和預(yù)測(cè)。

2.2.2 響應(yīng)面分析 根據(jù)果膠得率的二次回歸方程,用Design-Expert 8.06 軟件繪制響應(yīng)曲面三維空間圖和等高線圖,分析提取液pH(X1)、液料比(X2)、提取時(shí)間(X3)、提取溫度(X4)對(duì)柿果膠得率的影響,響應(yīng)曲面立體圖見圖5～圖10。

圖5 pH和液料比對(duì)果膠得率的影響Fig.5 Effects of pH and solvent-to-solid ratio on the pectin yield on the pectin yield

圖6 pH和提取溫度對(duì)果膠得率的影響Fig.6 Effects of pH and temperature on the pectin yield on the pectin yield

圖7 液料比和提取時(shí)間對(duì)果膠得率的影響圖Fig.7 Effects of solvent-to-solid ratio and extraction time on the pectin yield

圖8 提取時(shí)間和提取溫度對(duì)果膠得率的影響Fig.8 Effects of extraction time and extraction temperature on the pectin yield

圖9 pH和提取時(shí)間對(duì)果膠得率的影響圖Fig.9 Effects of pH and extraction time on the pectin yield

圖10 液料比和提取溫度對(duì)果膠得率的影響Fig.10 Effects of solvent-to-solid ratio and extraction temperature on the pectin yield

響應(yīng)面的坡度變化和等高線的形狀可以反映提取液pH(X1)、液料比(X2)、提取時(shí)間(X3)、提取溫度(X4)這四個(gè)因素間對(duì)果膠得率的交互作用效應(yīng)。由圖5可知,提取液pH(X1)與液料比(X2)的交互作用對(duì)果膠得率的影響極顯著(p<0.01)。pH(X1)的變化引起的響應(yīng)面坡度變化相對(duì)平緩,而液料比(X2)的變化引起的響應(yīng)面坡度變化較陡峭,橢圓在液料比(X2)區(qū)排列更密集,表明液料比(X2)的變化對(duì)響應(yīng)值變化的影響更大;由圖6可知,提取溫度(X4)與pH(X1)的交互作用對(duì)果膠得率的影響不顯著,但提取溫度(X4)的變化對(duì)響應(yīng)值變化的影響更大;由圖7可知,提取時(shí)間(X3)與液料比(X2)的交互作用對(duì)果膠得率的影響不顯著,但提取時(shí)間(X3)的變化對(duì)響應(yīng)值變化的影響更大;由圖8可知,提取液提取時(shí)間(X3)與提取溫度(X4)的交互作用對(duì)果膠得率的影響極顯著(p<0.01),但相對(duì)于提取時(shí)間(X3),提取溫度(X4)的變化對(duì)響應(yīng)值變化的影響更大;由圖9可知,提取時(shí)間(X3)與pH(X1)的交互作用對(duì)果膠得率的影響不顯著,但在兩者的交互作用中,提取時(shí)間(X3)相對(duì)于pH(X1)對(duì)響應(yīng)值變化的影響更大;由圖10可知,提取溫度(X4)與液料比(X2)的交互作用不顯著,但在兩者的交互作用中提取溫度(X4)相對(duì)于液料比(X2)的響應(yīng)值變化的影響更大。

2.2.3 最佳提取條件確定 對(duì)果膠提取回歸模型進(jìn)行典型性相關(guān)分析,獲得柿果膠提取的最佳提取條件為:HCl提取液pH=3.975,液料比為23.15∶1 (g/g),提取時(shí)間107.40 min,提取溫度92.2 ℃,在此條件下,果膠得率的理論值可達(dá)7.38%。

2.3 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)

為檢驗(yàn)響應(yīng)面分析法提取果膠最佳提取條件的可靠性,進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),考慮到實(shí)際操作的便利,將最佳工藝修正為HCl提取液pH4.00,液料比為23∶1,提取時(shí)間107 min,提取溫度92 ℃,在此條件下所得的果膠得率為7.31%,與預(yù)測(cè)值相差不到1%,說(shuō)明二次多項(xiàng)式回歸方程能較好地預(yù)測(cè)柿果膠得率,響應(yīng)面法優(yōu)化柿果膠提取工藝是可行的。

2.4 柿果膠理化性質(zhì)分析

2.4.1 柿果膠的色澤 采用以上提取條件提取的柿果膠呈紅褐色,通過色差計(jì)測(cè)定的L*、a*、b*分別為 30.74、9.37和9.07,由此可知果膠亮度L*為30.74;彩度C*為13.04;色度角h°為44.07。果膠的色澤在一定程度上反映了果膠的質(zhì)量,一般來(lái)說(shuō),亮度L*和色度角h°值越低表明果膠顏色越深,彩度C*越低表明果膠中酸不溶物含量增多及灰分成分越多,即果膠質(zhì)量越差。果膠提取過程中酸度的增加會(huì)促進(jìn)多糖水解產(chǎn)生單糖,而單糖更容易發(fā)生美拉德反應(yīng),造成果膠顏色加深[25-26],因此生產(chǎn)上需對(duì)提取的果膠進(jìn)行脫色處理。

2.4.2 柿果膠的酯化度 果膠的酯化度是反映果膠品質(zhì)的重要指標(biāo)之一,酯化度越高,果膠純度越高,凝膠性越強(qiáng)[27-28]。本實(shí)驗(yàn)中提取果膠酯化度為98.88%±0.82%,即酸提醇沉法提取的柿果膠為高酯化度果膠。

2.4.3 柿果膠的分子量 利用液相色譜測(cè)定提取的柿果膠的分子量,分子量檢測(cè)結(jié)果以重均分子量表示,柿果膠的平均分子量為405.3 kDa。

2.4.4 柿果膠的單糖組成 提取的柿果膠水解后經(jīng)離子色譜分析,根據(jù)出峰順序發(fā)現(xiàn)果膠分子中含有巖藻糖、阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖、木糖、果糖、半乳糖醛酸等7種單糖(圖11),各組分相對(duì)含量分別為0.22%、1.42%、3.14%、15.47%、1.28%、10.08%、68.39%。由此可知,柿果膠主要的單糖成分為半乳糖醛酸、葡萄糖和果糖。結(jié)果表明,提取的柿果膠符合世界糧農(nóng)組織(FAO)、歐盟(EU)和我國(guó)行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)關(guān)于食品添加劑果膠其半乳糖醛酸含量必須高于65%的標(biāo)準(zhǔn)[29]。

圖11 柿果膠的離子色譜圖Fig.11 Ion-chromatography of persimmon pectin注:1.巖藻糖;2.阿拉伯糖;3.半乳糖; 4.葡萄糖;5.木糖;6.果糖。

2.4.5 柿果膠的紅外光譜 采用紅外光譜儀對(duì)提取的柿果膠樣品進(jìn)行結(jié)構(gòu)分析,結(jié)果如圖12所示。3423.10和2934.38 cm-1左右的吸收峰為多糖物質(zhì)的特征吸收峰,分別是由O-H和CH2基團(tuán)的C-H伸縮振動(dòng)引起的[30];1738.75 cm-1左右的峰為果膠羧羰基和酯羰基中的C=O的伸縮振動(dòng),此峰表明有乙?；拇嬖?1613.99 cm-1左右的吸收峰為果膠羧基中的COO-的振動(dòng),這兩者的峰比值可以用來(lái)表征果膠的酯化度[31-32];1445.61 cm-1左右的吸收峰是由-CH3反對(duì)稱伸縮振動(dòng)或-CH2-對(duì)稱伸縮振動(dòng)引起的[33];1344和1229 cm-1左右的吸收峰分別是由C-H彎曲運(yùn)動(dòng)和C-O擴(kuò)張運(yùn)動(dòng)引起的[34];1100～1200 cm-1之間存在R-O-R和C-C吸收峰,說(shuō)明該果膠有環(huán)狀結(jié)構(gòu),且在1540～1560 cm-1處有微弱的吸收峰,說(shuō)明可能存在與蛋白質(zhì)結(jié)合的果膠[35];一般說(shuō)來(lái),1300～800 cm-1的吸收峰譜圖反映了果膠中單糖的種類,1025.98 cm-1左右的吸收峰表明樣品中含有吡喃糖和呋喃糖[36];該圖譜在400～900 cm-1之間的吸收峰反映了其含有葡萄糖和甘露糖。

圖12 柿果膠的紅外光譜Fig.12 Fourier transform infrared spectra of the persimmon pectins

3 結(jié)論

本實(shí)驗(yàn)以脫澀的柿果為材料,利用酸提醇沉法提取柿果膠,以響應(yīng)面分析法確定柿果膠提取的最佳工藝參數(shù):HCl提取液pH4.00,液料比23∶1 (g/g),提取時(shí)間107 min,提取溫度92 ℃。該條件下,果膠得率為7.31%。柿果膠為高酯化度果膠,果膠亮度L*為30.74,彩度C*為13.04,色度角h°為44.07,平均分子量405.3 kDa。柿果膠的主要單糖成分是半乳糖醛酸、葡萄糖和果糖,紅外光譜表明果膠可能是含有吡喃糖和呋喃糖的環(huán)狀結(jié)構(gòu)。本研究為進(jìn)一步探討柿果膠的組成與結(jié)構(gòu)提供數(shù)據(jù)支持,同時(shí)也為柿果膠的開發(fā)及擴(kuò)大應(yīng)用提供初步理論依據(jù),對(duì)現(xiàn)實(shí)生產(chǎn)具有一定的指導(dǎo)意義。

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