佘銀,李跑,高婉茹,黃昭,劉霞
(湖南農(nóng)業(yè)大學食品科學技術學院食品科學與生物技術湖南省重點實驗室,湖南長沙410000)
糖尿病是一種以高血糖為特征的代謝綜合征,它與多種器官損傷和功能障礙有關,并已成為全球慢性非傳染性疾病中最普遍的一種疾病[1-3]。至2040年,糖尿病患者人數(shù)將達到6.42億人[4]。其中,2型糖尿?。╠iabetes mellitus,type 2,T2D)占全球糖尿病病例總數(shù)的90%以上。目前,控制餐后高血糖是治療T2D的一個主要方式[5-6]。而食物中碳水化合物的消化是餐后血糖升高最主要的原因。由于日常生活中人們攝食的主要碳水化合物為淀粉,而淀粉的“質(zhì)”和“量”直接影響著血糖的調(diào)節(jié)。因此,可以通過增強淀粉的抗性,降低和延緩淀粉的消化來控制人體餐后血糖的升高。
黃酮類化合物廣泛存在于水果、蔬菜、茶葉和藥用植物中,是一類具有多種生物活性的物質(zhì),如抗氧化、防癌、抗癌、抗炎等活性[7-8]。研究表明,黃酮類化合物可在口腔和胃腸道中抑制淀粉酶的催化活性,阻礙食品和消化過程中碳水化合物的水解,從而有效地降低餐后血糖水平,達到預防和輔助治療糖尿病的效果[9]。野菊花作為一種傳統(tǒng)的中藥,已經(jīng)被使用了好幾個世紀[10]。野菊花中含有大量黃酮類化合物,主要包括蒙花苷、刺槐素和木犀草素[11](圖1)。
圖1 蒙花苷、刺槐素和木犀草素的化學結(jié)構Fig.1 Chemical structures of buddleoside,acacetin,luteolin
在野生菊花的質(zhì)量控制方面,也是以這3種化合物的含量為標準[11]。目前,對野菊花的研究和利用主要為消除風和熱,去除肝臟熱毒[12],很少有關于野菊花黃酮降血糖作用的研究,野菊花黃酮和淀粉相互作用的研究就更少。研究野菊花黃酮和淀粉的相互作用,一方面有助于了解淀粉理化性質(zhì)以及野菊花黃酮調(diào)節(jié)餐后血糖水平的途徑與能力。另一方面,也為野菊花在食品工業(yè)和保健食品工業(yè)中的應用提供了有益的參考。表面等離子體共振技術(surface plasmon resonance,SPR)是評價分子間相互作用的最有力技術之一,本研究利用SPR傳感器研究了3種野菊花黃酮與淀粉的實時動力學分析,分別獲得了3種黃酮與淀粉相互作用的結(jié)合常數(shù)Ka、解離常數(shù)Kd和平衡解離常數(shù)KD。在此基礎上,研究了3種野菊花黃酮對淀粉消化的影響。并且探討了淀粉對野菊花黃酮抗氧化活性的影響。通過對上述3方面的研究,探究這3種野菊花黃酮與淀粉作用的構效關系。
蒙花苷(純度:99.37%)、刺槐素(純度:99.8%)和木犀草素(純度:98.92):中國檢定研究院;枯草桿菌α-淀粉酶、可溶性淀粉和阿卡波糖:長沙隆和化玻實驗用品有限公司;巰基丙酸(3-Mercaptopropionic,MPA)、N-羥基丁二酰亞胺 (n-hydroxysuccinimide,NHS)、碳二亞胺(1-ethyl-3-(3-dimethylami-nopropy1)carbodiimide,EDC):美國 Sigma-Aldrich 公司;常用試劑:國藥集團化學試劑北京有限公司。
分析天平(AUY220):日本島津;pH計(Testo205):德國儀器國際貿(mào)易上海有限公司;超聲波清洗器(KQ-100):昆山市超聲儀器有限公司;電熱恒溫水浴鍋(DK-S28):上海精宏實驗設備有限公司;全波長酶標儀(Multisk Go1510):芬蘭;表面等離子體共振儀(BISPR-2000):美國 Biosensing Instrument。
依據(jù)文獻介紹的步驟[13],取出全新金片,無水乙醇浸泡5 min后,用超純水清洗數(shù)次,氮氣吹干,將其安裝在SPR傳感器棱鏡上,隨后安裝好流通池,通入(10 mmol/L、pH6)磷酸鹽緩沖液(phosphatebuffersaline,PBS)作為載液,試驗過程中流速為10 μL/min。待基線平穩(wěn)后,利用氨基偶聯(lián)的方法,通入100 μL、10 mmol/L MPA溶液,使MPA在傳感器表面進行自組裝,形成自組裝的單分子膜(MPA一端的巰基連在金片上,另一端的羧基露在外側(cè))。然后通入100 μL、0.4 mol/L/0.1mol/L EDC/NHS混合溶液,活化MPA中的游離的羧基。
稱取3.4mg淀粉,加入1 mL煮沸的超純水,使其完全溶解。用PBS稀釋成系列濃度(10、20、40、80、160、240、300、400、500μmol/L)。調(diào)節(jié)SPR流速為10μL/min,將淀粉溶液(低溶度→高濃度)依次通入已活化的傳感器芯片上,記錄SPR響應信號。繪制不同濃度淀粉溶液與SPR響應信號之間的工作曲線,找到淀粉的最佳固定濃度。每個濃度淀粉溶液進行3次平行試驗,計算相對標準偏差(relative standard deviation,RSD)。
在傳感器芯片表面固定最佳濃度的淀粉溶液之后,向流通池通入系列梯度濃度的黃酮溶液(100、200、400、800 μmol/L),進行 SPR 檢測,反應時間約為 600 s。每次反應完成后用2 mmol/L NaOH進行再生,進行下一濃度試驗,每個濃度平行3次。繪制黃酮與淀粉相互作用的實時動力曲線圖,獲得SPR響應信號。并且通過SPR自帶軟件(version 2.2.0)對動力學曲線進行擬合,得到3種黃酮與淀粉相互作用的動力學常數(shù)。
參考文獻[14],本試驗分對照組和抑制劑組。對照組的具體操作如下:取2 mL、0.1 mol/L淀粉懸浮液,加入 0.05 mL、300 μmol/L 酶溶液,37 ℃下消化 5 min后,馬上加入0.5 mL、0.01 mol/L碘應用液終止反應,搖勻后560 nm處測其吸光度。抑制劑組:取2 mL、0.1 mol/L淀粉懸浮液,分別加入0.5 mL不同濃度(10、50、100 μmol/L)的蒙花苷、刺槐素和木犀草素,禍旋震蕩混勻5 min,后續(xù)過程與對照組一致。具體劑量添加如表1所示。
表1 淀粉消化反應體系Table 1 Starch digestive system
野菊花黃酮對淀粉消化的抑制率計算公式為:
式中:A0原始淀粉消化能力,A0=A2-A1;A0′加抑制劑(黃酮)后淀粉消化能力,A0′=A4-A3。
1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl,DPPH),是一種極其穩(wěn)定的氮中心自由基,在無水乙醇中呈紫色,最大吸收峰在517 nm處,吸光度與濃度呈線性關系,向其中加入自由基清除劑時,可以結(jié)合或代替DPPH自由基,使自由基數(shù)量減少[15]。本研究分別取1 mL不同濃度的野菊花黃酮(終濃度:2.5 μmol/L~125 μmol/L)溶液,加或不加 0.2 mL、300 μmol/L 淀粉,5 min 后,加入 1 mL、2 mmol/L DPPH溶液,混勻后,加入適量無水乙醇,使反應的總體積為5 mL,在室溫下避光放置20 min,在517 nm處測定吸光度。根據(jù)得到樣品對DPPH自由基的清除率[13]。
DPPH自由基清除率/%=[1-(Ai-Aj)/Ac]×100
式中:Ai為黃酮樣液(有無淀粉)與DPPH反應液的吸光度值;Aj為黃酮樣液與無水乙醇反應液的吸光度值;Ac為無水乙醇與DPPH反應液的吸光度值。
淀粉固定的濃度對于后續(xù)試驗順利進行是至關重要的。固定濃度太低,傳感器芯片表面沒有被淀粉充分覆蓋,裸露的結(jié)合位點較多,一方面可能會發(fā)生非特異性吸附,另一方面會導致淀粉與野菊花黃酮相互作用不夠完全;若固定濃度太高,樣品會在傳感器芯片表面出現(xiàn)堆積現(xiàn)象,結(jié)合不牢固,同時造成不必要的試劑損失[16-17]。不同濃度淀粉的SPR響應信號曲線見圖2。
圖2 不同濃度淀粉的SPR響應值曲線Fig.2 SPR signal graph of series concentration of starch
如圖2所示,隨著淀粉濃度的增大,SPR響應值也隨之增大,當?shù)矸蹪舛葹?00 μmol/L時,SPR響應值達到249.33 mDeg。濃度超過300 μmol/L,SPR響應值無明顯增長。故本試驗選取300 μmol/L為淀粉在傳感器芯片表面固定的最佳濃度。
在傳感器芯片表面固定好淀粉之后,向流通池通入不同濃度的不同黃酮溶液,進行SPR相互作用檢測。圖3~圖5分別為不同濃度蒙花苷、刺槐素、木犀草素與300μmol/L淀粉相互作用的SPR實時動力學曲線圖。
圖3 淀粉與蒙花苷相互作用的動力學曲線圖Fig.3 SPR kinetic curves of immobilized starch binding buddleoside
圖4 淀粉與刺槐素相互作用的動力學曲線圖Fig.4 SPR kinetic curves of immobilized starch binding acacein
圖5 淀粉與木犀草素相互作用的動力學曲線圖Fig.5 SPR kinetic curves of immobilized starch binding luteolin
可以看出,隨著黃酮濃度的增大,SPR動力學曲線也有明顯的變化。根據(jù)理論1∶1模型可得到蒙花苷、刺槐素和木犀草素與淀粉相互作用的結(jié)合速率(Ka)、解離速率(Kd)和平衡解離常數(shù)(KD)。這些動力學常數(shù)在表2中有詳細給出。圖6為不同濃度情況下,3種黃酮與淀粉相互作用的SPR響應值比較圖,隨著黃酮濃度的增大,它們與淀粉相互作用的SPR響應值也隨之增強,木犀草素與淀粉相互作用能力最強,刺槐素次之,蒙花苷最弱。
表2為通過SPR自帶軟件(version 2.2.0)對動力學曲線進行擬合得到的動力學常數(shù)。
圖6 不同濃度下3種黃酮與淀粉相互作用的SPR響應值比較圖Fig.6 The SPR response of the different concentration of three flavonoids with starch
表2 蒙花苷、刺槐素和木犀草素與淀粉相互作用的動力學參數(shù)Table 2 Kinetic parameters for buddleoside,acacetin and luteolin binding to immobolized starch
由表2可知,蒙花苷、刺槐素和木犀草素與淀粉作用的 KD值分別為 (4.822 4±0.06)、(3.441 3±0.06)、(2.367 6±0.25)mmol/L。如圖1所示,對比木犀草素,發(fā)現(xiàn)蒙花苷和刺槐素B環(huán)的C-5’位缺少一個羥基,并且在C-4’羥基甲氧基化。而蒙花苷結(jié)構與刺槐素結(jié)構相似,但是在A環(huán)C-7位羥基被糖苷取代后,分子大小和極性都增加,結(jié)構轉(zhuǎn)移到非平面上,位阻的增大削弱了蒙花苷與淀粉之間的結(jié)合[18-20]。所以,3種黃酮與淀粉作用的親和力大小為:木犀草素>刺槐素>蒙花苷。結(jié)果表明,羥基基團的數(shù)目和位置對于黃酮與淀粉的結(jié)合至關重要。
阿卡波糖是一種用于治療糖尿病的新型口服降糖劑,它能減少多糖和蔗糖在腸道內(nèi)分解為葡萄糖,從而減少糖的吸收,達到降低人體餐后血糖水平的效果。圖7為不同濃度下,3種野菊花黃酮以及阿卡波糖對淀粉消化的抑制效果圖。
如圖7所示,阿卡波糖對淀粉消化的抑制能力最強。但是,阿卡波糖使糖類在小腸內(nèi)的分解和吸收受到障礙而停留時間過長,腸道細菌的發(fā)酵會產(chǎn)生更多的氣體,會導致機體產(chǎn)生腹脹、腹痛和腹瀉等不適癥狀[21-23]。因此,被證實相對安全的黃酮類化合物可能是另一種選擇。3種野菊花黃酮對淀粉消化的抑制能力相差不大,隨著黃酮濃度的增大,它們對淀粉消化能力的抑制能力也逐漸增強,并且,抑制能力:木犀草素>刺槐素>蒙花苷。當木犀草素的濃度為100 μmol/L時,其對淀粉消化的抑制率為26.7%。
圖7 蒙花苷、刺槐素、木犀草素和阿卡波糖對淀粉消化的抑制效果Fig.7 The inhibition effect of buddleoside,acacetin,luteolin and acarbose on starch digestion
黃酮類化合物大多具有較高的抗氧化活性[24]。本試驗采用DPPH自由基清除法評價了3種野菊花黃酮與淀粉相互作用后,黃酮抗氧化能力的變化情況。表3為淀粉對3種黃酮清除DPPH自由基的抑制作用。
表3 淀粉對3種黃酮清除DPPH自由基的抑制作用Table 3 Inhibition of starch on scavenging DPPH·capacity of three flavonoids
由表3所示,比較3種野菊花黃酮清除DPPH自由基的半抑制率濃度IC50,它們對DPPH自由基有不同程度的清除作用,且木犀草素>刺槐素>蒙花苷。在加入一定濃度淀粉溶液之后,發(fā)現(xiàn)3種黃酮清除DPPH自由基的能力下降。并且,淀粉對它們清除DPPH自由基的抑制作用為:木犀草素>刺槐素>蒙花苷。這個結(jié)果與2.2、2.3結(jié)果一致,進一步證實了這3種黃酮抗氧化能力與其本身的羥基數(shù)目和位置有關,B環(huán)是黃酮類化合物抗氧化能力的重要活性部位[25]。
利用SPR技術,建立了一種快速、高靈敏的分析方法以實時監(jiān)測3種野菊花黃酮與淀粉的相互作用,獲得了它們相互作用的動力學參數(shù),木犀草素與淀粉相互作用能力最強,刺槐素次之,蒙花苷最弱,并且初步探討了它們相互作用的構效關系;研究了3種野菊花黃酮對淀粉消化的影響,為野菊花黃酮在富含淀粉類食品中的應用提供了理論依據(jù);評價了3種野菊花黃酮與淀粉作用后,其抗氧化活性的變化情況。野菊花黃酮與淀粉發(fā)生相互作用后,不僅影響淀粉的消化,同時自身的生物活性也會受到影響。
參考文獻:
[1]American Diabetes Association.Diagnosis and classification of diabetes mellitus[J].Diabetes care,2014,37(Supplement 1):S81-S90
[2]Priscilla D H,Roy D,Suresh A,et al.Naringenin inhibits αglucosidase activity:a promising strategy for the regulation of postprandial hyperglycemia in high fat diet fed streptozotocin induced diabetic rats[J].Chem Biol Interact,2014,210:77-85
[3]Guariguata L,Whiting D R,Hambleton I,et al.Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035[J].Diabetes Research&Clinical Practice,2014,103(2):137-149
[4]Cho N H.Q&A:Five questions on the 2015 IDF Diabetes Atlas[J].Diabetes Research&Clinical Practice,2016,115:157-159
[5]Ceriello A,Esposito K,Piconi L,et al.Oscillating Glucose Is More Deleterious to Endothelial Function and Oxidative Stress Than Mean Glucose in Normal and Type 2 Diabetic Patients[J].Diabetes,2008,57(5):1349-1354
[6]Ceriello A,Hanefeld M,Leiter L,et al.Postprandial glucose regulation and diabetic complications[J].Archives of Internal Medicine,2004,164(19):2090-2095
[7]Shen W,Xu Y,Lu Y H.Inhibitory Effects of Citrus Flavonoids on Starch Digestion and Antihyperglycemic Effects in HepG2 Cells[J].Journal of Agricultural&Food Chemistry,2012,60(38):9609-9619
[9]Lee B H,Eskandari R,Jones K,et al.Modulation of starch digestion for slow glucose release through“toggling”of activities of mucosal α-glucosidases[J].Journal of Biological Chemistry,2012,287(38):31929-31938
[10]Cheng W,Li J T,Hu C.Anti-inflammatory and immunomodulatory activities of the extracts from the inflorescence of Chrysanthemum indicum Linne[J].Journal of Ethnopharmacology,2005,101(1/3):334-337
[11]馮子明.野菊花化學成分及生物活性研究[D].北京:北京協(xié)和醫(yī)學院,中國醫(yī)學科學院,2009
[12]Ke M,Yun C,Shi J,et al.Effects of Chrysanthemum indicum,Polysaccharide and Its Phosphate on Anti-Duck Hepatitis A Virus and Alleviating Hepatic Injury[J].International Journal of Biological Macromolecules,2017,102:813-821
[13]Xia L,Fang L,Li P,et al.Investigation of the interaction for three Citrus flavonoids and α-amylase by surface plasmon resonance[J].Food Research International,2017,97:1-6
[14]楊俊鵬.竹葉黃酮類成分對淀粉消化及肝糖吸收的調(diào)節(jié)研究[D].上海:華東理工大學,2015
[15]石艷賓.金銀花、銀杏葉總黃酮協(xié)同清除DPPH自由基作用研究[J].食品研究與開發(fā),2017,38(5):43-46
[16]Myszka D G.Improving biosensor analysis[J].Journal of Molecular Recognition,1999,12(5):279-284
[17]Roden L D,Myszka D G.Global analysis of a macromolecular interaction measured on BIAcore[J].Biochemical&Biophysical Research Communications,1996,225(3):1073-1077
[18]Cao H,Chen X.Structures required of flavonoids for inhibiting digestive enzymes[J].Anti-Cancer Agents in Medicinal Chemistry(Formerly Current Medicinal Chemistry-Anti-Cancer Agents),2012,12(8):929-939
[19]Lu Y,Zhou W,Feng Y,et al.Acteoside and Acyl-Migrated Acteoside,Compounds in Chinese Kudingcha Tea,Inhibit α-Amylase In Vitro[J].Journal of Medicinal Food,2017,20(6):577-585
[20]Luo F,Liu X,She Y,et al.Three Citrus flavonoids retard the digestion of starch and its working mechanisms[J].International Journal of Food Science&Technology,2018,53(2):365-371
[21]Semaan D G,Igoli J O,Young L,et al.In vitro anti-diabetic activity of flavonoids and pheophytins from Allophylus cominia Sw.on PTP1B,DPPIV,alpha-glucosidase and alpha-amylase enzymes[J].Journal of Ethnopharmacology,2017,203:39-46
[22]Shah M A,Khalil R,Ul-Haq Z,et al.α-Glucosidase inhibitory effect of rhinacanthins-rich extract from Rhinacanthus nasutus leaf and synergistic effect in combination with acarbose[J].Journal of Functional Foods,2017,36:325-331
[23]Jacinta Collado-González,Clara Grosso,Patricia Valent?o,et al.Inhibition of α-glucosidase and α-amylase by Spanish extra virgin olive oils:The involvement of bioactive compounds other than oleuropein and hydroxytyrosol[J].Food Chemistry,2017,235:298-307
[24]劉科梅,聶挺,潘棟梁,等.4種異黃酮抗氧化活性的構效關系[J].食品科學,2016,37(23):1-6
[25]Li Q,Wei Q,Yuan E,et al.Interaction between four flavonoids and trypsin:effect on the characteristics of trypsin and antioxidant activity of flavonoids[J].International Journal of Food Science&Technology,2014,49(4):1063-1069