劉文靜 孫養(yǎng)鵬 鄭有華 王周濤 張志光
顳下頜關(guān)節(jié)紊亂?。╰emporomandibular disorder,TMD)可引起關(guān)節(jié)區(qū)或頜面部疼痛、顳下頜關(guān)節(jié)彈響和下頜運(yùn)動(dòng)障礙等,嚴(yán)重時(shí)可影響患者的生活和工作?;涸诰S持關(guān)節(jié)的正常生理功能中發(fā)揮著十分重要的作用。對(duì)滑液中的不同介質(zhì)、促炎因子和自由基等的表達(dá)和改變一直在TMD發(fā)病機(jī)制的研究中備受關(guān)注。
前期研究中我們發(fā)現(xiàn)從TMD患者顳下頜關(guān)節(jié)滑液可分離培養(yǎng)獲得間充質(zhì)干細(xì)胞,并與滑液中存在的滑膜碎片培養(yǎng)獲得的間充質(zhì)干細(xì)胞進(jìn)行比較研究發(fā)現(xiàn)他們具有相似的間充質(zhì)干細(xì)胞特征,推測(cè)滑液間充質(zhì)干細(xì)胞(synovial fluid derived mesenchymal stem cells,SFMSCs)極有可能來源于滑膜,與滑膜成纖維細(xì)胞密切相關(guān)[1]。
然而,顳下頜關(guān)節(jié)內(nèi)存在的自體干細(xì)胞在TMD中為什么啟動(dòng)自行修復(fù)組織再生的能力有限?隨著TMD病程的發(fā)展發(fā)生組織破壞、關(guān)節(jié)盤穿孔,其復(fù)雜的炎性內(nèi)環(huán)境和異常的內(nèi)壓力可能使SFMSCs進(jìn)行組織修復(fù)再生的機(jī)制更為復(fù)雜。因此本研究擬以IL-1β刺激SFMSCs,模擬TMD關(guān)節(jié)內(nèi)微環(huán)境,檢測(cè)SFMSCs及細(xì)胞培養(yǎng)基中IL-6和 IL-8的表達(dá)情況及p38 MAPK炎癥通路的影響,為探討SFMSCs在關(guān)節(jié)致病機(jī)制中的作用提供依據(jù)。
胎牛血清、α-MEM細(xì)胞培養(yǎng)基、GlutaMAX(Gibco,美國(guó));rhIL-1β(PeproTech,美國(guó));p38 MAPK抑制劑 SB-203580(Santa Cruz Biotechnology,美國(guó));LDH細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒(Roche,美國(guó));RIPA裂解液(Cell Signaling Technology,美國(guó));Protease Inhibitor Cocktail Tablets、Phosphatase Inhibitor Cocktail Tablets(Roche,美國(guó));兔抗p-p38抗體、兔抗p38抗體、羊抗小鼠二抗、羊抗兔二抗(Cell Signaling Technology,美國(guó));小鼠抗GAPDH抗體(杭州聯(lián)科生物技術(shù)股份有限公司);PVDF膜(Millipore,美國(guó));總RNA提取試劑盒(Promega,美國(guó));Transcriptor First Strand cDNA Synthesis kit、LightCycler?480 SYBR Green I Master(Roche,美國(guó));CBA炎癥因子檢測(cè)試劑盒(BD,美國(guó));流式細(xì)胞儀(Beckman Coulter,美國(guó));電泳系統(tǒng)(上海天能公司)。
顳下頜關(guān)節(jié)滑液樣本來源于中山大學(xué)附屬口腔醫(yī)院顳下頜關(guān)節(jié)門診就診的TMD患者19例,年齡16~57歲,其中男4例,女15例。納入標(biāo)準(zhǔn):患者未接受過非甾體類抗炎藥物,肌松劑等或其他藥物治療,且無特異性炎癥,類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎、外傷史或腫瘤等其他全身系統(tǒng)性疾病患者?;颊咭騎MD診療需要進(jìn)行關(guān)節(jié)灌洗術(shù),術(shù)后獲得的灌洗液樣本進(jìn)行體外培養(yǎng)獲得原代SFMSCs[1],混合后進(jìn)行傳代擴(kuò)增。本實(shí)驗(yàn)已獲廣州中山大學(xué)附屬口腔醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(口腔[2016]倫審第(18)號(hào)),所有參與研究的患者均已簽署知情同意。
取96孔板,按Roche LDH細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒操作手冊(cè)將空白對(duì)照(培養(yǎng)基)組、陰性對(duì)照組、陽性對(duì)照組、實(shí)驗(yàn)組(分別加入處理因素IL-1β10 ng/ml和SB-203580 10μmol/L)加入96孔板,每組3個(gè)復(fù)孔。各孔加入100μl反應(yīng)混合液避光30 min后加入終止反應(yīng)液50μl混勻10 s后,酶標(biāo)儀檢測(cè)490 nm波長(zhǎng)吸光度值。對(duì) IL-1β10 ng/ml和 SB-203580 10μmol/L處理因素下SFMSCs細(xì)胞毒性進(jìn)行分析。
SFMSCs細(xì)胞按500個(gè)/cm2的濃度接種于6孔板中,在37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 d,更換完全培養(yǎng)基。分為對(duì)照組 (IL-1β0 ng/m l)和IL-1β處理組(加入IL-1β10 ng/ml 2 h)。將2組細(xì)胞去除培養(yǎng)基,加入含有酶抑制劑的RIPA裂解液100μl,在冰上充分刮取裂解30min,4℃離心(12 000 g離心30 min),取上清提取蛋白。BCA蛋白定量計(jì)算待測(cè)樣品中的蛋白濃度。蛋白上樣后SDS-PAGE凝膠電泳分離后轉(zhuǎn)膜,轉(zhuǎn)膜好的PVDF膜用PBST稍洗后室溫下在脫色搖床上于5%BSA封閉液中室溫封閉1 h。一抗(兔抗人p38,1∶1 000;兔抗人p-p38,1∶1 000;小鼠抗人GAPDH,1∶2 000),4℃冰上搖床孵育過夜,PBST室溫下脫色搖床上洗。二抗室溫孵育1 h,PBST室溫下脫色搖床上洗。取出膜浸入已配好的ECL發(fā)光液中反應(yīng)3 min后于化學(xué)發(fā)光成像分析系統(tǒng)中曝光成像并攝片。用Image J圖象分析軟件測(cè)定目的條帶的光密度值,并以p38的光密度值為參照進(jìn)行校正。
SFMSCs細(xì)胞按500個(gè)/cm2的濃度接種于6孔板中,在37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 d,更換完全培養(yǎng)基。分為 3組,分別為對(duì)照組(IL-1β0 ng/ml)、IL-1β處理組(加入 IL-1β10 ng/ml 2 h)和p38 MAPK抑制劑組(預(yù)先加入SB-203580 10μmol/L 1 h后,加入IL-1β10 ng/ml 2 h)。按時(shí)間點(diǎn)提取細(xì)胞RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。采用熒光定量qPCR檢測(cè)方法檢測(cè)基因IL-6和IL-8的表達(dá)情況。引物序列見表1。應(yīng)用2-ΔΔCt計(jì)算基因的相對(duì)表達(dá)水平,其中以GAPDH作為內(nèi)參基因,并計(jì)算擴(kuò)增效率。ΔΔCt=(Ct目的基因-Ct內(nèi)參基因)處理組-(Ct目的基因-Ct內(nèi)參基因)對(duì)照組。
表1 RT-PCR中待測(cè)基因的引物序列Tab 1 Primers used in RT-PCR
取經(jīng)過處理所得各組細(xì)胞的培養(yǎng)基,低溫離心3 000 g 10 min,各待測(cè)樣品取50μl分別放置各待測(cè)管中。將IL-6、IL-8捕獲微球充分渦旋混勻并混合后,每一檢測(cè)管中各加入50μl混合捕獲微球液;在每一個(gè)受測(cè)試管中加入人IL-6、IL-8PE檢測(cè)混合試劑各50μl;所有測(cè)試管在室溫避光孵育3 h,所有檢測(cè)管中加入850μl洗液,然后離心200 g,5 min,吸出上清重新加入1 ml洗液,懸浮微球。置入流式細(xì)胞儀中檢測(cè)各組待測(cè)樣本中細(xì)胞因子IL-6和IL-8的分泌量。
采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,應(yīng)用方差分析對(duì)各組進(jìn)行比較,以P<0.05具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
對(duì)培養(yǎng)擴(kuò)增獲得的SFMSCs進(jìn)行刺激因素細(xì)胞毒性檢測(cè)。記錄96孔板各組測(cè)得490 nm吸光度值,根據(jù)公式:細(xì)胞毒性(%)=(實(shí)驗(yàn)處理組吸光度值-陰性對(duì)照吸光度值)/(陽性對(duì)照吸光度值-陰性對(duì)照吸光度值)。測(cè)得IL-1β10 ng/ml處理組細(xì)胞毒性為0.11%,SB-203580 10μmol/L處理組細(xì)胞毒性為0.47%。結(jié)果顯示刺激因素處理對(duì)SFMSCs基本無毒性,可以繼續(xù)進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)。
實(shí)驗(yàn)通過Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn)p-p38 MAPK蛋白在IL-1β處理組明顯較對(duì)照組表達(dá)增強(qiáng)。以p38總蛋白的光密度值為參照進(jìn)行校正,顯示IL-1β處理組蛋白表達(dá)量約為對(duì)照組3.60倍(圖1)。
圖1 2組間SFMSCs細(xì)胞p38 MAPK信號(hào)蛋白表達(dá)檢測(cè)Fig 1 Western blot analysis of p38 MAPK in the 2 groups
通過RT-PCR檢測(cè)比較顯示IL-1β刺激下SFMSCs IL-6和IL-8基因的表達(dá)明顯升高(P<0.05),分別為61.42±2.23和 61.13±2.11。應(yīng)用 p38 MAPK抑制劑SB-203580組SFMSCs IL-6和IL-8基因表達(dá)水平明顯下降,IL-6和IL-8基因表達(dá)水平分別為13.65±0.57和18.85±0.15(圖 2)。
圖2 各組SFMSCs細(xì)胞因子基因表達(dá)分析(*:與對(duì)照組比較,P<0.05;#:與IL-1β組比較,P<0.05)Fig 2 Gene expression of IL-6 and IL-8 in different groups(*:vs control group,P<0.05;#:vs IL-1βgroup,P<0.05)
CBA檢測(cè)SFMSCs培養(yǎng)基中炎性細(xì)胞因子的表達(dá)發(fā)現(xiàn)SFMSCs可以分泌IL-6和IL-8,并在IL-1β刺激后IL-6和IL-8的含量持續(xù)增加,分別達(dá)到對(duì)照組的5.67倍和7.99倍。p38 MAPK抑制劑預(yù)處理組則顯示p38 MAPK抑制劑可部分抑制IL-6和IL-8的分泌,該組培養(yǎng)基中IL-6和IL-8的分泌量分別為對(duì)照組的1.86倍和3.32倍,進(jìn)一步證實(shí)p38 MAPK信號(hào)通路參與IL-1β介導(dǎo)的SFMSCs細(xì)胞炎性分泌(圖3)。
IL-1β是由單核巨噬細(xì)胞分泌,在IL-1家族中起關(guān)鍵作用的因子。在正常顳下頜關(guān)節(jié)滑液中IL-1β含量很少[2],而在骨關(guān)節(jié)病患者的關(guān)節(jié)液中IL-1β濃度升高,且隨著TMD病程的進(jìn)展,IL-1β的表達(dá)持續(xù)增高[3]。因而被認(rèn)為是顳下頜關(guān)節(jié)炎癥及關(guān)節(jié)組織損害發(fā)生發(fā)展中最重要的炎癥因子之一。IL-1β不僅主要分布在顳下頜關(guān)節(jié)骨關(guān)節(jié)病的滑膜襯里細(xì)胞層,同時(shí)也在關(guān)節(jié)盤及關(guān)節(jié)滑液中高表達(dá)。近來研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)IL-1β還是連接關(guān)節(jié)炎癥和血管再生的關(guān)鍵分子,可以促進(jìn)顳下頜關(guān)節(jié)盤組織細(xì)胞分泌血管生成因子,刺激新生血管組織中MMPs基因過度表達(dá),從而加速關(guān)節(jié)盤和髁突軟骨的降解[4]。前期研究中我們采用維生素B12作為內(nèi)對(duì)照,對(duì)顳下頜關(guān)節(jié)滑液中IL-1β的分泌水平定量檢測(cè)發(fā)現(xiàn)正常志愿者關(guān)節(jié)滑液中幾乎檢測(cè)不到或含有微量的IL-1β,而TMD患者關(guān)節(jié)滑液內(nèi)IL-1β的含量與其關(guān)節(jié)紊亂指數(shù)(Friction dysfunction index,DI)呈中等程度相關(guān)[3]。因此本實(shí)驗(yàn)中選用IL-1β作為刺激因素進(jìn)行初步探索。
圖3 各組SFMSCs細(xì)胞培養(yǎng)基CBA檢測(cè)Fig 3 Cytokine secretion by SFMSCs in different groups examined by CBA
間充質(zhì)干細(xì)胞能夠向損傷部位趨化并可自我更新多向分化進(jìn)行組織修復(fù),使其成為口腔疾病治療與組織修復(fù)的新熱點(diǎn)[5]。越來越多的研究也關(guān)注到MSCs的旁分泌功能在抗炎和修復(fù)如肺損傷[6]、腎疾?。?]、心肌梗塞[8]、中風(fēng)[9]或骨組織再生[10]中扮演的重要角色。但是,仍有其他因素可以改變逆轉(zhuǎn)這些特性從而發(fā)揮促炎作用。如BMSCs高表達(dá)Toll樣受體TLR-3和TLR4,它們與配體結(jié)合后下調(diào)Notch配體Jagged-1,繼而影響其免疫抑制能力[11]。不同組織來源的MSCs還可在炎性因子TNF-α或IFN-γ的刺激下產(chǎn)生其他炎性細(xì)胞因子,上調(diào)趨化因子受體和IDO表達(dá),從而影響其免疫抑制作用和MSCs遷移[12-13]。在急性炎癥的環(huán)境下,MSCs分泌增多的細(xì)胞因子可對(duì)局部微環(huán)境的炎性因子產(chǎn)生刺激作用,使得T細(xì)胞反應(yīng)和B細(xì)胞活性上調(diào)。MSCs還可在低濃度IFN-γ刺激下通過表達(dá)II型主要組織相容性復(fù)合體(Major Histocompatibility Complex,MHC)發(fā)揮抗原呈遞作用,而隨著 IFN-γ水平的增加,MHC-II表達(dá)則減少,從而加重炎癥反應(yīng)[14]。目前關(guān)于局部炎性因子刺激對(duì)MSCs特性的影響多關(guān)注在骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,然而不同微環(huán)境中MSCs分泌生物活性因子不同[15-16],不同組織來源的間充質(zhì)干細(xì)胞其轉(zhuǎn)錄本、蛋白表達(dá)及分化潛能都不同。Djouad等[17]研究報(bào)道BMSCs表達(dá)較高的神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白、胰島素樣生長(zhǎng)因子2、OX40L和激活素A,滑膜來源的MSCs則不同于BMSCs而表達(dá)較高的MIP2-α、IL-6和IL-8轉(zhuǎn)錄水平。因此進(jìn)一步了解SFMSCs的免疫分泌特性對(duì)臨床應(yīng)用治療顳下頜關(guān)節(jié)疾病及組織修復(fù)有重要的意義。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示IL-1β刺激下SFMSCs及其培養(yǎng)基中IL-6和IL-8的表達(dá)情況均明顯增加。在關(guān)節(jié)疾病的發(fā)病機(jī)制中已證實(shí)促炎因子如IL-6、IL-8、干擾素γ、單核細(xì)胞趨化蛋白是促進(jìn)骨關(guān)節(jié)炎的炎癥發(fā)展過程的重要因素[18]。炎癥化的SFMSCs可分泌炎性因子IL-6和IL-8,可能是TMD中一重要的炎性靶細(xì)胞。那么,IL-1β調(diào)節(jié)SFMSCs炎性因子分泌的作用機(jī)制,則可能是關(guān)節(jié)疾病中的另一重要致病機(jī)制。
MAPK信號(hào)通路在各種細(xì)胞生物學(xué)活動(dòng)中都有至關(guān)重要的作用,它包括ERK、JNK和p38信號(hào)通路。大量的文獻(xiàn)研究中已經(jīng)證實(shí)p38 MAPKs是參與調(diào)控炎癥反應(yīng)的重要機(jī)制,在炎性介質(zhì)如趨化因子、細(xì)胞因子或生長(zhǎng)因子刺激下激活相應(yīng)受體,從而產(chǎn)生一系列細(xì)胞生物學(xué)反應(yīng)[19]。因此本研究中通過 Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn)在IL-1β刺激下,p-p38 MAPK蛋白表達(dá)明顯增強(qiáng),進(jìn)一步通過p38 MAPK特異性抑制劑SB-203580作用下SFMSCs細(xì)胞基因和培養(yǎng)基中細(xì)胞因子含量證實(shí)抑制p38 MAPK可明顯影響IL-6和IL-8的表達(dá)和分泌,尤其是IL-6。有研究顯示IL-1β可通過活化p38 MAPK誘導(dǎo)髁突軟骨細(xì)胞凋亡[20]。因此,IL-1β可能通過p38 MAPK信號(hào)通路促進(jìn)SFMSCs分泌IL-6和IL-8,并參與介導(dǎo)關(guān)節(jié)軟骨破壞。
對(duì)炎性微環(huán)境下 SFMSCs的炎性分泌及 p38 MAPK信號(hào)通路作用的研究可能為探究顳下頜關(guān)節(jié)紊亂病中的炎癥及其引發(fā)骨關(guān)節(jié)退行性改變和功能障礙的免疫分子機(jī)制提供新的靶點(diǎn)。
[1]Sun YP,Zheng YH,Liu WJ,et al.Synovium fragment-de-rived cells exhibit characteristics similar to those of dissociatedmultipotent cells in synovial fluid of the temporomandibular joint[J].PLoSOne,2014,9(7):e101896.
[2]Kristensen KD,Alstergren P,Stoustrup P,et al.Cytokines in healthy temporomandibular joint synovial fluid[J].JOral Rehabil,2014,41(4):250-256.
[3]張新華,孫養(yǎng)鵬,劉文靜,等.IL-1β在顳下頜關(guān)節(jié)骨關(guān)節(jié)炎患者滑液中的分泌水平研究[J].現(xiàn)代口腔醫(yī)學(xué)雜志,2016,30(2):98-101.
[4]Xu J,Cai H,Meng Q,et al.IL-1β-regulating angiogenic factors expression in perforated temporomandibular disk cells via NF-κB pathway[J].JOral Pathol Med,2016,45(8):605-612.
[5]熊華翠,陳柯.組織工程牙髓的研究進(jìn)展[J].口腔疾病防治,2013,21(1):50-54.
[6]Zhao YF,XiongW,Wu XL,etal.Mesenchymal stem cellbased developmental endothelial locus-1 gene therapy for acute lung injury induced by lipopolysaccharide in mice[J].Mol Med Rep,2014,9(5):1583-1589.
[7]van Koppen A,Joles JA,van Balkom BW,et al.Human embryonic mesenchymal stem cell-derived conditioned medium rescues kidney function in rats with established chronic kidney disease[J].PLoSOne,2012,7(6):e38746.
[8]Timmers L,Lim SK,Hoefer IE,et al.Human mesenchymal stem cell-conditioned medium improves cardiac function followingmyocardial infarction[J].Stem Cell Res,2011,6(3):206-214.
[9]Locatelli F,Bersano A,Ballabio E,etal.Stem cell therapy in stroke[J].Cell Mol Life Sci,2009,66(5):757-772.
[10]Linero I,Chaparro O.Paracrine effect ofmesenchymal stem cells derived from human adipose tissue in bone regeneration[J].PLoSOne,2014,9(9):e107001.
[11]Liotta F,Angeli R,Cosmi L,et al.Toll-like receptors 3 and 4 are expressed by human bonemarrow-derived mesenchymal stem cells and can inhibit their T-cellmodulatory activity by impairing Notch signaling[J].Stem Cells,2008,26(1):279-289.
[12]Hemeda H,Jakob M,Ludwig AK,et al.Interferon-gamma and tumor necrosis factor-alpha differentially affect cytokine expression and migration properties of mesenchymal stem cells[J].Stem Cells Dev,2010,19(5):693-706.
[13]Prasanna SJ,Gopalakrishnan D,Shankar SR,etal.Pro-inflammatory cytokines,IFNgamma and TNFalpha,influence immune properties of human bonemarrow and Wharton jelly mesenchymal stem cells differentially[J].PLoS One,2010,5(2):e9016.
[14]Chan JL,Tang KC,Patel AP,et al.Antigen-presenting property ofmesenchymal stem cells occurs during a narrow window at low levels of interferon-gamma[J].Blood,2006,107(12):4817-4824.
[15]Lee MJ,Kim J,Kim MY,et al.Proteomic analysis of tumor necrosis factor-alpha-induced secretome of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells.[J].J Proteome Res,2010,9(4):1754-1562.
[16]Yl?stalo JH,Bartosh TJ,Coble K,etal.Humanmesenchymal stem/stromal cells cultured as spheroids are self-activated to produce prostaglandin E2 that directs stimulated macrophages into an anti-inflammatory phenotype[J].Stem Cells,2012,30(10):2283-2296.
[17]Djouad F,Bony C,H?upl T,et al.Transcriptional profiles discriminate bone marrow-derived and synovium-derived mesenchymal stem cells[J].Arthritis Res Ther,2005,7(6):R1304-R1315.
[18]Hoff P,Buttgereit F,Burmester GR,et al.Osteoarthritis synovial fluid activates pro-inflammatory cytokines in primary human chondrocytes[J].Int Orthop,2013,37(1):145-151.
[19]Clark AR,Dean JL.The p38 MAPK Pathway in Rheumatoid Arthritis:A Sideways Look[J].Open Rheumatol J,2012,6:209-219.
[20]羅銳,張瑞智,龔正林,等.IGF-1對(duì)體外培養(yǎng)髁突軟骨細(xì)胞增殖與凋亡的影響[J].實(shí)用口腔醫(yī)學(xué)雜志,2016,32(6):810-814.