吳小苑,范文冬
(1.廣東省職業(yè)病防治院 廣東 廣州 510300;2.中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院心內(nèi)科,廣東 廣州 510080)
血流切應(yīng)力決定著動脈粥樣硬化斑塊的非隨機分布,對維持血管內(nèi)皮細胞(endothelial cells,ECs)結(jié)構(gòu)與功能的穩(wěn)定起關(guān)鍵作用。生理范圍內(nèi)的血流切應(yīng)力保護ECs,阻抑動脈粥樣硬化病變的分子與生物力學(xué)機制仍不十分清楚[1]。新近研究發(fā)現(xiàn),生理切應(yīng)力能誘導(dǎo)ECs的microRNAs(miRNAs)表達譜發(fā)生改變,并通過miRNAs調(diào)控ECs的功能[2-5],但目前只有miR-19a[4]、miR-23b[5]及miR-21[2]等少數(shù)幾個切應(yīng)力誘導(dǎo)miRNAs的功能得到部分闡明。
隨著研究的不斷深入,動脈粥樣硬化被認為是一種慢性炎癥反應(yīng)性疾病[6]。近年來,miRNA調(diào)控動脈粥樣硬化炎癥反應(yīng)機制的研究正逐漸成為心血管研究領(lǐng)域的熱點。當(dāng)前研究表明生理切應(yīng)力誘導(dǎo)miR-27b[2,4-5]、miR-143/145[7]、miR-195[2,4]、miR-19a[4]、miR-23b[5]及miR-10a[8]等表達上調(diào);誘導(dǎo)miR-92a[9]、miR-221[5]、miR-20a[5]及 miR-182[4]等表達下調(diào)。其中miR-27b、miR-143/145及miR-195等在ECs中的功能還不清楚,而miR-195與ECs炎癥反應(yīng)的關(guān)系目前國內(nèi)外未見有相關(guān)報道,本研究進一步驗證它們的確受到生理切應(yīng)力的調(diào)控以及miR-195與ECs炎癥的相關(guān)關(guān)系。
人臍靜脈內(nèi)皮細胞(human umbilical vein endothelial cells,HUVEC)。MicroRNA mimics及inhibitors:miR-27b、miR-143/145、miR-195、miR-126 mimics、miR-195 inhibitors及相應(yīng)對照(NC)和inhibitor-NC(INC)(廣州,銳博生物)。
驗證生理切應(yīng)力調(diào)節(jié)ECs miRNAs的表達:15 dyne/cm2的生理切應(yīng)力處理HUVEC,24 h后利用實時熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測內(nèi)皮細胞miR-27b、miR-143/145及miR-195等的表達變化。①miRNAs的逆轉(zhuǎn)錄:使用Life Technology的TaqMan? MicroRNA Assays試劑盒,按照其說明書的介紹,用miRNAs特異性引物進行逆轉(zhuǎn)錄;②qRTPCR檢測:置于LightCycler?480儀器中,以U6作為內(nèi)參,按照說明書介紹的方法擴增45個循環(huán),每個樣品做3個重復(fù)。
這個系統(tǒng)由切應(yīng)力處理腔室(μ-Slide I 0.4 Luer,ibidi),蠕動泵,以及各種導(dǎo)管組成。HUVEC細胞生長在μ-Slide I 0.4 Luer中,形成單細胞層后,在超凈臺中將培養(yǎng)液輸送導(dǎo)管與裝有培養(yǎng)基的透氣廣口瓶以及蠕動泵相連。由蠕動泵驅(qū)動培養(yǎng)基流經(jīng)生長有細胞的μ-Slide I 0.4 Luer腔室,整個系統(tǒng)置于二氧化碳CO2培養(yǎng)箱中。切應(yīng)力與流速的關(guān)系可根據(jù)μ-Slide I 0.4 Luer腔室供應(yīng)商ibidi所供的公式計算:
miRNAs mimics及inhibitors轉(zhuǎn)染HUVEC細胞:分別用125μl的opti-MEM培養(yǎng)基稀釋小分子RNA和Lipofectamine RNAiMAX試劑,將上述2種溶液混合并用移液器輕輕混勻,室溫放置25 min。在等待的過程中給細胞更換新鮮的內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基(endothelial cell medium,ECM)。達到孵育時間后,將250μl opti-MEM、RNA及轉(zhuǎn)染試劑的混合液,逐滴加入12孔板的相應(yīng)孔中,輕輕搖動12孔板以混勻轉(zhuǎn)染混合物,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)8 h后更換新鮮ECM完全培養(yǎng)基,細胞轉(zhuǎn)染48~72 h后按實驗需要處理細胞。
體外轉(zhuǎn)染miR-195等 mimics及inhibitors至HUVEC,通過Western blot檢測ECs中p65的磷酸化(P-p65)水平及內(nèi)皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)、кB抑制蛋白(IкBα)等炎癥相關(guān)因子的表達。Western blot方法包括:SDS PAGE電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉、孵育一抗、孵育二抗、ECL顯色,結(jié)果掃描后用Quantity One(biorad)軟件分析灰度值。
體外轉(zhuǎn)染miR-195 mimics及inhibitors至HUVEC,通過免疫熒光檢測miR-195對ECs的炎癥控制水平,主要檢測轉(zhuǎn)錄因子核因子кB(NF-κB)的核轉(zhuǎn)運情況。免疫熒光方法中所用抗體名稱NF-κB,CST抗體編號為4764(兔抗)。一抗稀釋比例,1︰50左右;二抗1︰5 000。HUVEC經(jīng)過細胞固定、免疫染色后行熒光顯微鏡觀察。
采用GraphPad Prism 5.0和SPSS 18.0軟件進行數(shù)據(jù)分析。分子生物學(xué)實驗的結(jié)果用均數(shù)±標準差(±s)表示,組間差異兩組時用t檢驗,多組時采用單因素方差分析,P<0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1.1切應(yīng)力誘導(dǎo)HUVEC形態(tài)的改變 為分析切應(yīng)力對ECs miRNAs表達的影響,首先建立一套體外切應(yīng)力發(fā)生裝置。采用15 dyne/cm2的切應(yīng)力處理HUVEC,24 h后用顯微鏡觀察細胞形態(tài)。結(jié)果表明:在生理切應(yīng)力作用下,HUVEC排列成梭形并沿著切應(yīng)力作用的方向排列;而未用切應(yīng)力處理的HUVEC排列不規(guī)則,并且有少量死亡的細胞漂浮。上述結(jié)果證明切應(yīng)力發(fā)生裝置構(gòu)建成功,可用于研究切應(yīng)力對ECs miRNAs的表達的影響[1]。見圖1。
2.1.2生理切應(yīng)力誘導(dǎo)miR-195等表達上調(diào) 由于miR-126不受切應(yīng)力的影響[7],因此以miR-126作為陰性對照,U6作為miRNAs表達的內(nèi)參,運用TaqMan? MicroRNA Assays試劑盒驗證生理切應(yīng)力是否調(diào)控上述miRNAs的表達。結(jié)果表明:15 dyne/cm2的生理切應(yīng)力處理HUVEC,24 h后miR-27b、miR-143/145及miR-195等表達上調(diào)(t=4.080、2.145、2.106、2.079,P=0.000、0.020、0.028 及 0.037),而miR-126的表達不受切應(yīng)力的影響(t=1.655,P=0.103)。見圖 2。
圖1 切應(yīng)力誘導(dǎo)HUVEC形態(tài)的改變
圖2 生理切應(yīng)力誘導(dǎo)ECs miRNAs的表達
2.2.1過表達miR-195抑制P-p65的表達NF-κB為1個轉(zhuǎn)錄因子蛋白家族,包括:Rel(cRel),p65(RelA和 NF-κB3),RelB 和 p50(NF-κB1),p52(NF-κB2)。在細胞核內(nèi),p65識別并結(jié)合特定的DNA序列,控制炎癥基因的轉(zhuǎn)錄。p65的磷酸化(P-p65)促進NF-κB的活性,促進炎癥,為探究miRNA-195介導(dǎo)了ECs炎癥反應(yīng),本研究首先建立了一套有效的體外轉(zhuǎn)染miRNAs至HUVEC的方法,通過Western blot證實了在ECs中過表達miR-195抑制了P-p65的表達(t=2.664,P=0.021)(見圖3)。為了探索在內(nèi)皮細胞激活的狀況下miR-195發(fā)揮的功能,在轉(zhuǎn)染miRNAs的同時,加入炎癥刺激因子腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α),結(jié)果與無TNF-α共處理情況一致。
2.2.2抑制內(nèi)源性的miR-195抑制IкBα的表達水平IкBα通過與NF-κB p65結(jié)合抑制NF-κB的核轉(zhuǎn)運,抑制炎癥。本研究發(fā)現(xiàn),采用miRNA inhibitors抑制內(nèi)源性的miR-195抑制了IкBα的表達水平(t=3.492,P=0.003)。見圖 4。
2.2.3miR-195在ECs中的可能功能 過表達miR-195對ECs eNOS的表達沒有影響,生理切應(yīng)力誘導(dǎo)上調(diào)的miR-23b及生理切應(yīng)力誘導(dǎo)下調(diào)的miR-92a對eNOS的表達影響差異無統(tǒng)計學(xué)意義(F=1.786,P=0.07)。而采用miRNA inhibitors抑制內(nèi)源性的miR-195抑制了eNOS的表達水平(t=3.650,P=0.002)(見圖5)。這提示著miR-195可能對于維持eNOS的穩(wěn)定起關(guān)鍵作用,但其作用機制不明確,有待進一步的研究。
2.2.4MiR-195抑制NF-κB的核轉(zhuǎn)運NF-κB的核轉(zhuǎn)位在維持細胞正常生理功能方面發(fā)揮著重要作用,在促炎細胞因子刺激下,NF-κB轉(zhuǎn)位到細胞核中并激活炎癥基因的表達。免疫熒光結(jié)果顯示(見圖6):加入TNF-α促進了NF-κB的核轉(zhuǎn)運。在ECs中過表達miR-195抑制了NF-κB的核轉(zhuǎn)運,表現(xiàn)為無NF-κB核聚集或者核聚集量非常少,細胞質(zhì)泛紅(miR-195 VS NC)。INC與 miR-195-inhibitor比 較,可見細胞質(zhì)里面也紅色充滿多一些(INC VS miR-195-inhibitor),而miR-195-inhibitor組細胞核內(nèi)可見泛紅熒光,說明抑制miR-195可能促進了NF-κB的核轉(zhuǎn)運,促進炎癥。
圖3 過表達miR-195抑制P-p65的表達
圖4 抑制內(nèi)源性的miR-195抑制IкBα的表達水平
圖5 miR-195的抑制劑抑制ECs eNOS的表達
圖6 miR-195抑制NF-κB的核轉(zhuǎn)運
血流切應(yīng)力是與血流方向一致的血流對ECs的摩擦力,決定著動脈粥樣硬化斑塊的非隨機分布,對維持ECs功能的穩(wěn)定起關(guān)鍵作用[1]。越來越多的證據(jù)表明,miRNAs參與切應(yīng)力對ECs功能的調(diào)控作用,然而許多切應(yīng)力誘導(dǎo)miRNAs在ECs中的功能還未被闡明。
動脈粥樣硬化是一種炎癥性疾病,炎癥的其中1個關(guān)鍵調(diào)節(jié)器為轉(zhuǎn)錄因子核因子кB(NF-κB),很長一段時間以來,一直被視為促動脈粥樣硬化的因素,主要因為它調(diào)控著許多涉及動脈粥樣硬化的促炎基因。NF-κB作為促炎和抗炎基因的直接調(diào)節(jié)者以及在細胞存活和增殖方面的調(diào)控角色,可能在維護動脈粥樣硬化過程的微妙平衡中發(fā)揮重要作用[10-11]。轉(zhuǎn)錄因子(NF)-κB家族成員是ECs炎癥反應(yīng)的重要調(diào)節(jié)因子。在細胞核內(nèi),RelA(p65)識別并結(jié)合特定的DNA序列,控制炎癥基因的轉(zhuǎn)錄。
近年來,microRNA調(diào)控As炎癥反應(yīng)機制的研究逐漸成為心血管研究領(lǐng)域的熱點。本研究首先建立了一套有效的體外轉(zhuǎn)染miRNAs至HUVEC的方法,借助該套方法能夠?qū)崿F(xiàn)在ECs中過表達或是下調(diào)相關(guān)miRNAs的水平,從而分析它們在ECs中的功能。接著又成功構(gòu)建了體外切應(yīng)力模擬發(fā)生裝置,利用該套系統(tǒng)成功的實現(xiàn)了生理切應(yīng)力對ECs形態(tài)方面的調(diào)控。在證實了該套系統(tǒng)的可靠性后,本研究用該系統(tǒng)所產(chǎn)生的15 dyne/cm2生理切應(yīng)力處理HUVEC,24 h后miR-27b、miR-143/145及miR-195等表達上調(diào),而miR-126的表達則不受切應(yīng)力的影響,這印證了相關(guān)文獻的報道[7]。為探究miRNA-195介導(dǎo)了ECs炎癥反應(yīng),本研究通過Western blot證實了在ECs中過表達miR-195抑制了P-p65的表達。在靜息情況下,NF-κB二聚體與1個抑制蛋白(кB抑制劑,IкB)結(jié)合保持非活性狀態(tài)。IкBα通過與NF-κB p65結(jié)合抑制NF-κB的核轉(zhuǎn)運,抑制炎癥。本研究發(fā)現(xiàn),采用miRNA inhibitors抑制內(nèi)源性的miR-195抑制了IкBα的表達水平。
eNOS在ECs、心肌細胞、血小板等多種細胞上均有表達,在一氧化氮NO的生成過程中也具有重要作用[12-13]。病理狀態(tài)時,eNOS生成障礙或者表達降低,不僅會使血管內(nèi)皮舒張受損,還會加重動脈粥樣硬化等的血管炎癥[14]。本研究采用miRNA inhibitors抑制內(nèi)源性的miR-195也抑制了eNOS的表達水平。NF-κB的核轉(zhuǎn)位在維持細胞正常生理機能方面發(fā)揮著重要作用。在促炎細胞因子刺激下,NF-κB轉(zhuǎn)位到細胞核中并激活炎癥基因的表達。免疫熒光結(jié)果顯示:加入TNFα促進了NF-κB的核轉(zhuǎn)運。在ECs中過表達miR-195抑制了NF-κB的核轉(zhuǎn)運,而抑制miR-195可能促進了NF-κB的核轉(zhuǎn)運,促進炎癥。因此,生理切應(yīng)力誘導(dǎo)的miR-195功能可以歸納為兩點:①抑制Phospho-NF-κB p65亞基,Ser536位點的磷酸化,抑制NF-κB的活性,從而抑制炎癥。②雖然不能夠促進但卻能夠穩(wěn)定eNOS的表達。
MiRNA通過與靶標基因mRNA的完全匹配結(jié)合,促使mRNA發(fā)生降解,或通過不完全地與靶mRNA的3’非編碼區(qū)(3’UTR)互補結(jié)合抑制靶mRNA的翻譯[15-16],將蛋白控制在生命活動所需的最佳水平上。根據(jù)miRNA的作用方式,通過生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn)BTRCIRAK2MAP3K7等可能為miRNA-195的潛在靶標。因此,可推測生理切應(yīng)力誘導(dǎo)miR-195表達上調(diào),可能通過負調(diào)節(jié)潛在靶標的表達,抑制NF-κB通路,從而影響動脈粥樣硬化炎癥反應(yīng)。本文較全面地探索了生理切應(yīng)力誘導(dǎo)的miR-195的血管內(nèi)皮保護功能,有助于進一步闡明動脈粥樣硬化發(fā)生的分子和生物力學(xué)機制,為動脈粥樣硬化相關(guān)病變的預(yù)防提供理論依據(jù)。
參 考 文 獻:
[1]FAN W, FANG R, WU X, et al. Shear-sensitive microRNA-34a modulates flow-dependent regulation of endothelial in fl ammation[J]. J Cell Sci, 2015, 128(1): 70-80.
[2]WEBER M, BAKER M B, MOORE J P, et al. MiR-21 is induced in endothelial cells by shear stress and modulates apoptosis and eNOS activity[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2010, 393(4):643-648.
[3]SEARLES C D, MOORE J, BAKER M, et al. Endothelial cell microRNA expression in response to laminar shear stress(abstract)[J]. Circulation, 2008, 118(18): S298.
[4]QIN X, WANG X, WANG Y, et al. MicroRNA-19a mediates the suppressive effect of laminar flow on cyclin D1 expression in human umbilical vein endothelial cells[J]. PNAS, 2010, 107(7):3240-3244.
[5]WANG K C, GARMIRE L X, YOUNG A, et al. Role of microRNA-23b in fl ow-regulation of Rb phosphorylation and endothelial cell growth[J]. PNAS, 2010, 107(7): 3234-3239.
[6]ROSS R. Atherosclerosis--an inflammatory disease[J]. N Engl J Med, 1999 Jan 14, 340(2): 115-126.
[7]HERGENREIDER E, HEYDT S, TREGUER K, et al.Atheroprotective communication between endothelial cells and smooth muscle cells through miRNAs[J]. Nat Cell Biol, 2012, 14:249-256.
[8]FANG Y, SHI C, MANDUCHI E, et al. MicroRNA-10a regulation of proin fl ammatory phenotype in athero-susceptible endothelium in vivo and in vitro[J]. PNAS, 2010, 107(30): 13450-13455.
[9]WU W, XIAO H, LAGUNA-FERNANDEZ A, et al. Flowdependent regulation of kruppel-like factor 2 is mediated by microRNA-92a[J]. Circulation, 2011, 124: 633-641.
[10]WU X Y, FAN W D, FANG R, et al. Regulation of microRNA-155 in endothelial in fl ammation by targeting nuclear factor (NF) -κB P65[J]. J Cell Biochem, 2014 Nov, 115(11): 1928-1936.
[11]DE WINTHER M P, KANTERS E, KRAAL G, et al. Nuclear factor kappaB signaling in atherogenesis[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2005 May, 25(5): 904-914.
[12]ALDERTON W K, COOPER C E, KNOWLES R G. Nitric oxide synthases: structure, function and inhibition[J]. Biochem J, 2001 Aug 1, 357(3): 593-615.
[13]DUDZINSKI D M, IGARASHI J, GREIF D, et al. The regulation and pharmacology of endothelial nitric oxide synthase[J]. Annu Rev Pharmacol Toxicol, 2006, 46: 235-276.
[14]SESSA W C. eNOS at a glance[J]. J Cell Sci, 2004, 117(12):2427-2429.
[15]AMBROS V. The functions of animal microRNAs[J]. Nature,2004 (431): 350-355.
[16]BARTEL D P. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions[J]. Cell, 2009(136): 215-233.