孫冠男,于雪峰,陳水林,徐軼爾,孫貴才*
(1.道外區(qū)人民醫(yī)院,黑龍江 哈爾濱 150020;2.南昌大學(xué)第四附屬醫(yī)院,江西 南昌 330003; 3.哈藥集團藥物研究院,黑龍江 哈爾濱 150025)
豨薟草為常用中草藥,是一年生草本植物豨薟(SiegesbeckiaorientalisL),腺梗豨薟(S.pubescensMak)或毛梗豨薟(S.glabrescensMak)的全草;又名豨薟、稀薟草、火薟、豬膏莓等。豨薟草味辛、苦、寒,具有祛風(fēng)濕、利關(guān)節(jié)和解毒之功效,主要用于治療風(fēng)濕痹癥,關(guān)節(jié)疼痛,筋骨無力,腰膝酸軟等[1]。我們前期研究發(fā)現(xiàn)以豨薟草為主藥的復(fù)方豨薟草膠囊能夠明顯降低痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎模型大鼠血清中腫瘤壞死因子水平、明顯降低炎性因子的釋放,降低NF-κB的轉(zhuǎn)錄,明顯改善痛風(fēng)性關(guān)節(jié)癥狀[2-3]。
急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎發(fā)作是尿酸鈉(monosodium urate,MSU)微晶體在關(guān)節(jié)內(nèi)及關(guān)節(jié)周圍組織沉積引起的急性炎癥反應(yīng),是出現(xiàn)痛風(fēng)的臨床癥狀的直接原因[4]。沉積的關(guān)節(jié)周圍的尿酸鈉微晶體在人體內(nèi)能夠與中性粒細胞、單核巨噬細胞、T淋巴細胞和關(guān)節(jié)滑膜細胞等發(fā)生反應(yīng),釋放IL-1、IL-8和TNF-α等炎性因子,炎性因子之間相互作用進一步影響痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的發(fā)生發(fā)展[5-6]。研究發(fā)現(xiàn)最新研究發(fā)現(xiàn)氧化應(yīng)激在急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎發(fā)生發(fā)展過程中也扮演著重要的作用[7]。大量氧自由基(ROS)和脂質(zhì)過氧化物的產(chǎn)生均能夠?qū)е玛P(guān)節(jié)的損傷,進而出現(xiàn)劇烈疼痛和功能障礙,丙二醛(MDA)是脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物,含量的變化能過代表脂質(zhì)過氧化水平和對機體的損傷程度,超氧化物歧化酶(SOD)是一種超氧陰離子和氧自由基清除劑,具有明顯的抗炎癥、抗感染和抑制脂質(zhì)過氧化作用,在疾病和炎癥的發(fā)生和發(fā)展中發(fā)揮著重要作用[8]。并且臨床研究發(fā)現(xiàn)痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎患者體內(nèi)存在SOD含量降低,是多方面因素共同影響的結(jié)果,說明SOD的表達失調(diào)參與了痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的發(fā)病過程[9]。
以往的研究發(fā)現(xiàn)尿酸鈉結(jié)晶沉積在關(guān)節(jié)后,能夠激活多種信號通路參與GA炎癥的發(fā)生發(fā)展,其中抗氧化能力動態(tài)失衡也是痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎發(fā)病因素之一。核轉(zhuǎn)錄因子E2相關(guān)因子2(NF-E2-relatedfactor2,Nrf2)作為重要的轉(zhuǎn)錄因子[10],能夠與核內(nèi)ARE結(jié)合,進一步調(diào)控抗氧化基因 HO-1)表達,研究發(fā)現(xiàn)Nrf2-ARE是調(diào)節(jié)細胞內(nèi)抗氧化防御體系的重要信號通路,抵抗氧化應(yīng)激損傷方面發(fā)揮著重要的作用[11-12]。機體內(nèi)源性抗氧化信號通路最近被發(fā)現(xiàn):Nrf2/HO-1 信號通路具有抵抗內(nèi)外界氧化和化學(xué)物質(zhì)刺激所產(chǎn)生的氧化應(yīng)激損傷,使生物體抵抗各種外來損傷中起著非常重要的作用,是生物體內(nèi)最重要的內(nèi)源性抗氧化信號通路,是現(xiàn)今氧化應(yīng)激研究領(lǐng)域的熱點內(nèi)容[13]。因此,本實驗以Nrf2/HO-1信號通路為基礎(chǔ),探討痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的發(fā)生發(fā)展與Nrf2/HO-1信號通路之間的關(guān)系及中藥豨薟草干預(yù)機制影響。
豨薟草購于哈爾濱市同仁堂大藥房;青霉素和鏈霉素、DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清和胰酶購于Hyclone公司, 尿酸鈉( Uric acid sodium salt,U2875-5G) 購自美國Sigma 公司;大鼠白細胞介素IL-1、白細胞介素IL-8和腫瘤壞死因子TNF-α酶聯(lián)免疫試劑盒購于美國R&D公司;ROS、SOD和MDA試劑盒購于DECO;PCR引物由上海生工生物工程有限公司合成;實驗動物由黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)實驗動物中心提供。
將SD大鼠脫臼處死,置于75%的乙醇中浸泡15 min,沿膝關(guān)節(jié)正中縱向切開,剝離肌肉和膝蓋骨,可見平滑光亮的滑膜組織,分離滑膜組織并去除脂肪組織,用含青霉素200 kU/L和鏈霉素200 mg/L的D-Hank’s液漂洗3次,將滑膜組織用眼科剪刀剪碎1 500 r/min,離心10 min,離心洗滌2次,去除上清液,加入100 μL的FBS混勻,將混勻的滑膜組織平鋪培養(yǎng)瓶中,放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)15 min,使之自然貼壁,在加入3 mL含20%FBS的DMEM培養(yǎng)液,37℃,5% CO2培養(yǎng)5~7 d,更換培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),傳代培養(yǎng)第三代用于本實驗的研究,倒置顯微鏡下觀察細胞生長狀況。
將豨薟草藥材40℃烘干,粉碎成干粉,然后加入10倍水于80℃提取2次,每次提取30 min。過濾,棄去濾渣,合并濾液,過濾,將溶液濃縮至100 mL,離心2 000 r/min ,10 min,取上清液,將濃度調(diào)整為250 mg/mL備用。取24只SD健康大鼠,隨機分為4組,每組6只。依據(jù)《藥理實驗方法學(xué)》[14]中不同物種間給藥劑量換算公式,大鼠灌胃給予豨薟草低、中、高劑量分別為1 g/kg,2 g/kg,4 g/kg,對照組灌胃給予同體積的生理鹽水;每日分2次,連續(xù)給藥14 d。各組均于末次給藥后1 h采集靜脈血漿,室溫靜置2 h,離心,取上清,將同一組的血漿混合后56℃水浴30 min滅活補體,0.22 μm無菌濾器過濾除菌、分裝,制備高、中、低的劑量豨薟草含藥血清及大鼠空白血清。以上血清均-70 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
將第三代滑膜細胞平鋪于24孔培養(yǎng)板,待細胞融合至80%左右,加入相應(yīng)濃度的豨薟草。對照組、模型組、豨薟草高劑量組(4 g/kg)、豨薟草中劑量組(2 g/kg)和豨薟草低劑量組(1 g/kg)除對照組外各實驗組中加入尿酸鈉(0.1 mg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)24 h,培養(yǎng)結(jié)束后,棄上清液,按照DECO試劑盒說明書要求對滑膜細胞進行處理,測定滑膜細胞中ROS、SOD和MDA含量。
將第三代滑膜細胞平鋪于24孔培養(yǎng)板,待細胞融合至80%左右,加入相應(yīng)濃度豨薟草。對照組、模型組、豨薟草高劑量組(4 g/kg)、豨薟草中劑量組(2 g/kg)和豨薟草低劑量組(1 g/kg)的滑膜細胞,除對照組外各實驗組中加入尿酸鈉(0.1 mg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)24 h,棄上清液,PBS洗兩次,收集不同組別的滑膜細胞加入Trizol裂解液,提取總RNA,并按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明將提取的總mRNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,并應(yīng)用cDNA用于實時定量PCR檢測,引物序列有上海生工生物工程有限公司合成,引物序列:HO-1上游引物:5′-AGCCCCACCAAGTTCAAACA-3′,下游引物:5′-TGCCAACAGGA AGCTGA GAG-3′,Nrf2上游引物:5′-CCATTCCCAGTTACAGTGTCTT-3′, 下游引物:5′-GATCGATGAGTAAAAATGGTA′, β-actin上游引物:5′-GAGACCTTCAACAC CCCAGC-3′,下游引物:5′-CCACAGGATTCCATACCCAA-3′。
采用SPSS19.0進行統(tǒng)計學(xué)分析,所有數(shù)據(jù)用χ2表示,P<0.05表示具有顯著性差異,P<0.01具有極顯著性差異。
滑膜細胞貼壁5~7 d,在光學(xué)顯微鏡下觀察,可見組織塊周圍有少量細胞生長,細胞形態(tài)不規(guī)則,但都以長梭形為主;9~11 d,可見大量細胞生長,以長梭形細胞為主,但仍有少量圓形和多角形的細胞存在;繼續(xù)培養(yǎng)至90%細胞融合時,用胰酶消化,傳代繼續(xù)培養(yǎng),傳至第三代可見成纖維細胞樣細胞,呈長梭形均勻分布,見圖1。
圖1 光鏡下滑膜細胞形態(tài)注:A表示培養(yǎng)5~7 d的滑膜細胞;B表示培養(yǎng)9~11 d的滑膜細胞;C表示傳至第三代的滑膜細胞
如表1所示,與對照組比較,尿酸鈉處理滑膜細胞中ROS和MDA含量明顯增加,豨薟草高、中、低組都能夠明顯降低ROS和MDA含量,且豨薟草高、中、低組均可以使SOD含量明顯升高,且呈劑量依賴性,表明豨薟草能夠抑制滑膜細胞發(fā)生氧化應(yīng)激從而起到保護滑膜細胞正常生理功能的作用。
表1 豨薟草對尿酸鈉處理滑膜細胞氧化應(yīng)激損傷影響
注:與空白組比較,#P<0.05;與模型組比較,*P<0.05
如表2所示,與對照組比較,不同濃度豨薟草處理的滑膜細胞中Nrf2和HO-1 mRNA的表達明顯增加(P<0.05),且隨著豨薟草濃度的增加Nrf2和HO-1表達也逐漸增加。
表2 豨薟草對尿酸鈉處理滑膜細胞中Nrf2 和HO-1表達影響
注:與空白組比較,#P<0.05;與模型組比較,*P<0.05
痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎是一種以劇烈疼痛為特點的無菌性炎癥反應(yīng),發(fā)病率逐年升高,給社會和患者帶來了嚴重的經(jīng)濟負擔,痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的發(fā)病機制十分復(fù)雜,關(guān)節(jié)腔內(nèi)尿酸鈉析出,觸發(fā)機體固有免疫反應(yīng),導(dǎo)致關(guān)節(jié)及周圍組織的急性反應(yīng),但具體的發(fā)病機制還不清楚。
生理狀態(tài)下機體組織內(nèi)自由基的產(chǎn)生與消除維持在動態(tài)平衡,有效的抗氧化防御系統(tǒng)能夠使自由基的濃度控制在一定范圍內(nèi),當機體組織過度產(chǎn)生自由基或抗氧化系統(tǒng)功能受損,機體發(fā)生氧化應(yīng)激[15]。氧化應(yīng)激損傷主要由活性氧物質(zhì)(ROS)所致,有害的活性氧自由基可通過脂質(zhì)過氧化誘導(dǎo)細胞損傷。超氧化物歧化酶(SOD)含量變化間接反映機體清除氧自由基的能力,丙二醛(MDA)是脂質(zhì)過氧化的產(chǎn)物,MDA含量可以表明脂質(zhì)過氧化水平,本研究發(fā)現(xiàn)不同濃度的尿酸鈉處理滑膜細胞后ROS和MDA的含量明顯增加,SOD的含量明顯降低,表明尿酸鈉誘導(dǎo)滑膜細胞發(fā)生氧化應(yīng)激。正常生理狀態(tài)下,生物體內(nèi)產(chǎn)生和消除活性氧自由基的能力處于動態(tài)平衡狀態(tài),病理狀態(tài)下,生物體內(nèi)生成過量的活性氧自由基由此抑制抗氧化防御系統(tǒng),繼而激發(fā)活性氧自由基的生成和消除的動態(tài)平衡受到破壞,繼而產(chǎn)生大量的活性氧,發(fā)生脂質(zhì)過氧化,改變生物大分子的結(jié)構(gòu)和功能,引起氧化應(yīng)激損傷。
當機體受到氧化應(yīng)激刺激時能夠激活Keap1-Nrf2/ARE 信號,激活下游靶蛋白表達[16]。靶蛋白被激活后調(diào)節(jié)生物體內(nèi)抗氧化能力,使體內(nèi)從氧化應(yīng)激狀態(tài)恢復(fù)到正常的生理狀態(tài)。核因子E2相關(guān)因子 2調(diào)控的目的蛋白主要有血紅素加氧酶-1(heme oxygenase-1,HO-1)、超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)。今年研究發(fā)現(xiàn)外源性有毒的物質(zhì)和ROS能促進核因子E2相關(guān)因子 2入核。SOD是生物體中最重要的酶之一,是機體內(nèi)氧自由基的頭號殺手, SOD 與疾病的發(fā)生發(fā)展都有著密切聯(lián)系,具有抗炎、抗病毒及抗衰老等作用[17]。實驗研究表明激活的核因子E2相關(guān)因子 2能夠促進SOD的表達,從而可降低體內(nèi)的氧化應(yīng)激損傷,表明促進核因子E2相關(guān)因子2下游的抗氧化蛋白的表達,對滑膜細胞具有一定的保護作用。研究發(fā)現(xiàn)Nrf2誘導(dǎo)激活HO-1表達被認為是抗氧化應(yīng)激最重要機制之一[18]與本實驗結(jié)果相符。
本實驗研究發(fā)現(xiàn):模型組滑膜細胞中ROS和MDA含量明顯增加,SOD含量明顯降低,豨薟草高、中、低組都能夠明顯降低ROS和MDA含量,SOD含量明顯升高; 表明豨薟草具有抗氧化作用,且可以通過調(diào)節(jié)Nrf2/HO-1通路促進下游抗氧化基因 HO-1 的表達起到抗氧化作用,從而減少氧化應(yīng)急對滑膜細胞損傷,使生物體內(nèi)產(chǎn)生和消除活性氧自由基的能力處于動態(tài)平衡狀態(tài)進而維持正?;ぜ毎砉δ堋?/p>
[1] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(一部)[M].北京:中國醫(yī)藥出版社,2010:345.
[2] 于雪峰,李登宇,孫貴才,等.復(fù)方豨薟草膠囊降血尿酸及對腎損害的保護作用[J].中醫(yī)藥學(xué)報,2007,35(2):18-20.
[3] 徐軼爾,孫貴才,鄭春雨,等.豨薟草對尿酸鈉引起痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎IL-1β、TNF-α、NF-κB表達的影響[J].風(fēng)濕病與關(guān)節(jié)炎,2015,4(1):9-13.
[4] 佟穎,陳德欣,李延,等.痹寧湯治療急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的臨床研究[J].中醫(yī)藥學(xué)報,2016,44(3):64-66.
[5] 李寶龍,韓玉生,劉旭,等.丹溪痛風(fēng)加減方對MSU致家兔急性痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎的防治作用[J].中醫(yī)藥學(xué)報,2011,39(3):45-47.
[6] Masseoud D, Rott K, Liu-Bryan R, et al. Overview of hyperuricaemia and gout[J].Current pharmaceutical design,2005(11):4117-4124.
[7] Zamudio-Cuevas Y, Hernandez-Diaz C, Pineda C, et al. Molecular basis of oxidative stress in gouty arthropathy[J].Clin Rheumatol,2015,34(10):1667-1672.
[8] Harijith A, Ebenezer DL, Natarajan V . Reactive oxygen species at the crossroads of inflammasome and inflammation[J].Front Physiol,2014,5352.
[9] 宋倩,劉健,忻凌,等.痛風(fēng)性關(guān)節(jié)炎患者超氧化物歧化酶的變化及關(guān)聯(lián)規(guī)則挖掘[J].中國臨床保健雜志,2017,20(1):77-80.
[10] González Del Alba Aránzazu,Arranz Joséngel,Puente Javier, et al. Recent advances in genitourinary tumors: A review focused on biology and systemic treatment[J].Crit Rev Oncol Hematol,2017(113):171-190.
[11] Kaspar JW, Niture SK, Jaiswal AK. Nrf2:INrf2(Keap1) signaling in oxidative stress[J]. Free Radic Biol Med, 2009,47(9):1304-1309.
[12] Wang Tuanjie,Zhang Jian,Xiao Aiju, et al. Melittin ameliorates CVB3-induced myocarditis via activation of the HDAC2-mediated GSK-3β/Nrf2/ARE signaling pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2016,480(1):126-131.
[13] Batliwala Shehzad,Xavier Christy,Liu Yang, et al. Involvement of Nrf2 in Ocular Diseases[J].Oxid Med Cell Longev,2017,2017:1703810.
[14] 徐叔云.藥理實驗方法學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2010:56-68.
[15] Zamudio-Cuevas Y, Hernandez-Diaz C, Pineda C, et al. Molecular basis of oxidative stress in gouty arthropathy[J]. Clin Rheumatol,2015,34(10):1667-1672.
[16] Krajka-Ku?niak Violetta,Paluszczak Jaroslaw,Baer-Dubowska Wanda. The Nrf2-ARE signaling pathway:An update on its regulation and possible role in cancer prevention and treatment[J].Pharmacol Rep,2017,69(3):393-402.
[17] Vnukov V V,Gutsenko O I,Milyutina N P, et al. SkQ1 Regulates Expression of Nrf2, ARE-Controlled Genes Encoding Antioxidant Enzymes, and Their Activity in Cerebral Cortex under Oxidative Stress[J].Biochemistry Mosc,2017,82(8):942-952.
[18] Huang Ting-Ting,Hao Dong-Lin,Wu Bo-Na,et al. Uric acid demonstrates neuroprotective effect on Parkinson's disease mice through Nrf2-ARE signaling pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2017,493(4):1443-1449.