朱大冕 胡代玉 劉潔 逄宇 羅明 沈靜 陳林
吡嗪酰胺(pyrazinamide,PZA)是目前被廣泛應(yīng)用于結(jié)核病治療的4種一線藥物之一,其可以抑制酸性環(huán)境中處于半休眠期的結(jié)核分枝桿菌(Mycobacteriumtuberculosis,MTB)。PZA是一種前藥,需要MTB的pncA基因(蛋白編碼序列為561 bp)編碼的吡嗪酰胺酶(pyrazinamidase,PZase)將其轉(zhuǎn)化為酸性形式的吡嗪酸(pyrazinoic acid,POA)才能發(fā)揮作用[1]。有文獻(xiàn)報(bào)道,75%的PZA耐藥MTB存在pncA突變[2-3]。PZA的活性成分POA通過抑制核糖體蛋白R(shí)psA 的活性來抑制MTB的生長[4]。rpsA基因的超量表達(dá)使得MTB對(duì)PZA的最小抑菌濃度升高了5倍,并且在少數(shù)PZA低度耐藥株中存在rpsA基因的突變。因此,筆者對(duì)重慶地區(qū)耐多藥結(jié)核分枝桿菌(MDR-MTB)pncA基因和rpsA基因的突變特征及其與PZA耐藥性的相關(guān)性進(jìn)行研究,以期望建立快速檢測(cè)MTB的PZA耐藥性的分子診斷學(xué)方法[5]。
1.標(biāo)本來源:收集2014年11月至2016年2月重慶市結(jié)核病防治所“MTB耐多藥項(xiàng)目”中所屬39個(gè)區(qū)(縣)的133株MDR-MTB臨床分離菌株。MTB標(biāo)準(zhǔn)株H37Rv來自中國疾病預(yù)防控制中心結(jié)核病預(yù)防控制中心國家結(jié)核病參比實(shí)驗(yàn)室。
2.試劑:(1)1%標(biāo)準(zhǔn)比例法固體藥物敏感性試驗(yàn)(簡(jiǎn)稱“藥敏試驗(yàn)”)所采用的含藥及對(duì)照培養(yǎng)基,菌種鑒定所用對(duì)硝基苯甲酸(PNB)和噻吩-2-羧酸酰肼(TCH)培養(yǎng)基,均購于珠海貝索生物技術(shù)有限公司。含藥培養(yǎng)基的終濃度分別為:異煙肼(INH)0.2 μg/ml,利福平(RFP)4 μg/ml,鏈霉素(Sm)2 μg/ml,乙胺丁醇(EMB)40 μg/ml,氧氟沙星(Ofx)2 μg/ml,卡那霉素(Km)30 μg/ml,卷曲霉素(Cm)40 μg/ml,丙硫異煙胺(Pto)40 μg/ml,對(duì)氨基水楊酸(PAS)1 μg/ml,阿米卡星(Am)30 μg/ml。(2)PZA液體藥敏檢測(cè)采用BACTEC MGIT 960系統(tǒng),采用BACTEC MGIT 960 PZA藥敏試劑盒(包括PZA藥物和PZA添加劑),液體培養(yǎng)基為改良Middlebrook 7H9(pH=5.9),其中PZA含量100 μg/ml。
3. 1%標(biāo)準(zhǔn)比例法固體藥敏試驗(yàn)及鑒定:選用臨床初次分離的菌株(出現(xiàn)肉眼可見菌落后2~3周的新鮮菌落),用滅菌的接種環(huán)挑取改良羅氏培養(yǎng)基斜面上的菌落置于磨菌瓶中,渦旋振蕩10~20 s,以生理鹽水配成1麥?zhǔn)蠞舛?,并用生理鹽水稀釋至濃度為10-2mg/ml、10-4mg/ml的菌懸液。用22SWG標(biāo)準(zhǔn)接種環(huán)分別取1滿環(huán)(0.01 ml)稀釋好的菌懸液分別接種于對(duì)照和含藥培養(yǎng)基,直立放置,37 ℃培養(yǎng),待菌落長出時(shí)觀察結(jié)果,根據(jù)耐藥百分比判讀:耐藥百分比=(含藥培養(yǎng)基上生長的菌落數(shù)/對(duì)照培養(yǎng)基生長的菌落數(shù))×100%,若耐藥百分比大于1%,則認(rèn)為受試菌對(duì)該抗結(jié)核藥耐藥。菌種鑒定:操作同固體藥敏實(shí)驗(yàn),用生理鹽水稀釋至濃度為10-1mg/ml的菌懸液,用22SWG標(biāo)準(zhǔn)接種環(huán)分別取1滿環(huán)(0.01 ml)稀釋好的菌懸液接種于PNB和TCH培養(yǎng)基。
4. BACTEC MGIT 960系統(tǒng)法:每株菌需準(zhǔn)備2支MGIT 960培養(yǎng)管(1管為生長對(duì)照管,1管為加藥管),每管加0.8 ml的PZA添加劑,在標(biāo)記有PZA的培養(yǎng)管加入100 μl的PZA藥物。配置菌懸液同比例法,調(diào)節(jié)濁度為0.5麥?zhǔn)蠞舛龋迫?.5 ml此菌懸液至4.5 ml生理鹽水,做1∶10稀釋,混勻。加0.5 ml稀釋后的菌液至生長對(duì)照管,混勻。在PZA藥物管中加入0.5 ml未稀釋的菌液,混勻。將準(zhǔn)備好的MGIT管放入標(biāo)記好的藥敏試驗(yàn)試管架,并按照放管程序放入BACTE MGIT 960儀器,選擇PZA藥敏試驗(yàn)試管架。MGIT 960儀器會(huì)在4~13 d內(nèi),根據(jù)生長單位(growth unit)值,自動(dòng)報(bào)告藥敏試驗(yàn)結(jié)果。
5. DNA提?。翰捎媒臃N環(huán)(10 μl)從羅氏培養(yǎng)基斜面刮取適量菌苔至螺旋口離心管,加入0.5 ml去離子水,振蕩混勻,85 ℃金屬浴30 min滅活;12 000×g離心5 min,棄上清;加入0.5 ml 1×TE緩沖液重懸,100 ℃金屬浴20 min;12 000×g離心5 min,吸取上清作為DNA模板,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
6. 基因測(cè)序:耐藥相關(guān)基因測(cè)序使用引物見表1。引物由北京天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司合成。反應(yīng)體系為:25 μl 2×Master MIX,1 μl上游引物,1 μl下游引物,4 μl的DNA模板,19 μl去離子水。耐藥基因pncA的PCR反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃ 1 min,56 ℃ 1.5 min,72 ℃ 1 min,3個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。耐藥基因rpsA的PCR反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃ 1 min,54 ℃ 1.5 min,72 ℃ 1 min,35個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,100 V 35 min,應(yīng)用凝膠成像儀觀察并確保成功擴(kuò)增后,送北京擎科新業(yè)生物技術(shù)有限公司進(jìn)行雙向測(cè)序。其測(cè)序結(jié)果采用Mega 6.0軟件進(jìn)行比對(duì)和突變分析。
7.統(tǒng)計(jì)學(xué)分析:采用SPSS 17.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。采用描述性統(tǒng)計(jì)分析方法,計(jì)算MDR-MTB 菌株P(guān)ZA耐藥率,不同特征人群分離的MDR-MTB 菌株P(guān)ZA耐藥構(gòu)成比,以及耐藥基因突變率;采用單因素分析方法(卡方檢驗(yàn)),分析MDR-MTB 菌株P(guān)ZA耐藥影響因素;以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
1.藥敏試驗(yàn)結(jié)果:133株MDR-MTB菌株中83株 PZA耐藥、50株P(guān)ZA敏感,耐藥率為 62.4%。MDR-MTB菌株中包含38株前廣泛耐藥結(jié)核和17株廣泛耐藥結(jié)核。菌株來源患者中,包括男80例(60.2%),女53例(39.8%);年齡19~76歲,中位年齡42(31~53)歲。初治患者49例,占36.8%,復(fù)治患者84例,占63.2%,見表2。
2.耐藥基因測(cè)序分析結(jié)果:(1)pncA基因突變結(jié)果:MTB標(biāo)準(zhǔn)菌株H37Rv未檢測(cè)到pncA突變。對(duì)pncA基因及其上游調(diào)控序列進(jìn)行測(cè)序,序列分析顯示50株P(guān)ZA敏感株中4株發(fā)生pncA基因突變,突變率為8.0%;83株P(guān)ZA耐藥株中73株發(fā)生pncA基因突變,突變率為87.9%;PZA耐藥株的突變率明顯高于PZA敏感株,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=81.82,P=0.000)。PZA耐藥株中共有48種突變類型,突變形式包括堿基置換(55株)、移碼突變(16株)、整碼突變(2株)。堿基突變區(qū)域分別集中在位點(diǎn)20~40(10株)、136~146(6株)、185~226(10株)、392~408(15株)區(qū)域。9株在395位堿基發(fā)生G→A的單堿基突變,導(dǎo)致氨基酸由甘氨酸→天冬氨酸的改變;5株在185位堿基發(fā)生C→T單堿基突變,氨基酸改變?yōu)楦彼帷涟彼幔?株在啟動(dòng)子區(qū)-11位堿基發(fā)生A→G突變。同時(shí)發(fā)現(xiàn)有18種新的突變類型,包括7種點(diǎn)突變(T2C、T37G、T94G、C206T、G319A、C437T、T488C),8種插入突變(52插入GCC、130插入C、139插入CA、232插入C、243插入T、288插入A、393插入GGT、408插入CA),3種缺失突變(341缺失ACGCC、342缺失GCCAC、376缺失GATGAGGTC),見表3。PZA敏感株中4株發(fā)生了pncA基因突變,包括C184A、C185A、C200G、G461A,見表4。(2)rpsA基因突變結(jié)果:對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序后與NCBI H37Rv標(biāo)準(zhǔn)序列做比對(duì),標(biāo)準(zhǔn)菌株H37Rv未檢測(cè)到rpsA基因突變,133株MDR-MTB菌株未發(fā)現(xiàn)有rpsA基因突變。
表1 耐藥相關(guān)基因測(cè)序使用引物
表2 各因素對(duì)133株MDR-MTB菌株P(guān)ZA耐藥的影響分析
表3 對(duì)PZA耐藥的MDR-MTB菌株pncA基因突變情況
表4 PZA敏感的MDR-MTB菌株pncA基因突變情況
本研究通過對(duì)重慶地區(qū)133株MDR-MTB進(jìn)行檢測(cè)及相關(guān)資料分析,發(fā)現(xiàn)重慶地區(qū)MDR-MTB的PZA耐藥率較高(62.4%),復(fù)治是PZA耐藥的危險(xiǎn)因素之一。其中,PZA耐藥株pncA突變率為87.9%,明顯高于PZA敏感株pncA突變率(8.0%),且PZA耐藥株中未發(fā)現(xiàn)rpsA基因突變,此結(jié)果提示MDR-MTB菌株P(guān)ZA耐藥與pncA突變相關(guān)。
目前,重慶地區(qū)并未常規(guī)開展MTB的PZA藥敏試驗(yàn),本地區(qū)PZA耐藥情況未見相關(guān)報(bào)道。本研究結(jié)果顯示,重慶地區(qū)MDR-MTB菌株對(duì)PZA有較高耐藥率,這為臨床用藥尤其對(duì)于耐多藥結(jié)核病患者用藥有很大的指導(dǎo)作用。筆者對(duì)患者資料進(jìn)行單因素分析顯示,復(fù)治是PZA耐藥的危險(xiǎn)因素,這可能與復(fù)治患者中的耐多藥結(jié)核病患者比例高有關(guān)。盡管納入的患者中男性構(gòu)成比高于女性,且30~59歲的人數(shù)最多,但未發(fā)現(xiàn)不同性別和年齡患者的MDR-MTB菌株對(duì)PZA耐藥是否有影響。
研究證實(shí),PZase的失活是MTB對(duì)PZA產(chǎn)生耐藥的主要機(jī)制[6-7],而pncA作為PZase的編碼基因,其突變會(huì)使MTB的PZase活性降低或失活,從而使MTB產(chǎn)生對(duì)PZA的耐藥性。本研究中 PZA耐藥株pncA突變率為87.9%,與國外文獻(xiàn)報(bào)道的pncA基因突變率(69.0%~98.8%)相似[1,8-11],但高于國內(nèi)近幾年其他地區(qū)的報(bào)道結(jié)果[12-15]。PZA耐藥株中共有47種突變類型,主要以堿基置換為主。9株在395位堿基發(fā)生G→A的單堿基突變,這是本研究中最為常見的突變類型,也可能是重慶地區(qū)MDR-MTB菌株pncA基因特征性突變位點(diǎn)。但是,該突變導(dǎo)致PZase的改變從而導(dǎo)致耐藥產(chǎn)生的機(jī)制,需進(jìn)一步研究。4株菌株在啟動(dòng)子區(qū)-11位堿基發(fā)生A→G突變,也是其他國家報(bào)道過的突變類型[16-17],這提示pncA上游調(diào)控序列的改變同樣會(huì)影響PZase的活性從而導(dǎo)致PZA耐藥。堿基突變所集中的4個(gè)區(qū)域?yàn)槲稽c(diǎn)20~40、136~146、185~226、392~408,這些集中區(qū)域與以往的報(bào)道有所不同[1,18];對(duì)PZA耐藥菌株的pncA基因中發(fā)現(xiàn)有18種此前未報(bào)道的新突變類型,分別發(fā)生在19株菌株中[19-24],這些研究結(jié)果提示pncA基因突變具有多態(tài)性和地區(qū)差異性。因此,了解本地區(qū)MDR-MTB菌株pncA基因突變的特征對(duì)于PZA耐藥分子生物學(xué)診斷方法的研發(fā)和應(yīng)用非常必要。
PZA耐藥株有10株均未檢測(cè)到pncA基因或rpsA基因突變,除外PZA藥敏試驗(yàn)結(jié)果不準(zhǔn)確的因素外,提示可能還存在非pncA基因和rpsA基因突變的其他耐藥機(jī)制[25-26]。PZA耐藥株pncA基因突變位點(diǎn)比較分散,從核苷酸-11~515位均有出現(xiàn),隨機(jī)散布在整個(gè)pncA基因上包括調(diào)控序列,無固定的突變位點(diǎn),這與其他研究結(jié)果一致[1,27],提示pncA基因突變導(dǎo)致的任何一個(gè)氨基酸改變都可能影響PZase的活性,不能將PZA轉(zhuǎn)化成有活性的POA。
本研究中,PZA敏感株中有少量發(fā)生pncA基因突變。首先,PZA藥敏試驗(yàn)所采用的MGIT 960系統(tǒng)在做PZA藥敏試驗(yàn)時(shí)需用特殊的酸性培養(yǎng)基,臨床分離的菌株在酸性環(huán)境下生長會(huì)受到抑制,這就有可能得到錯(cuò)誤的藥敏試驗(yàn)結(jié)果[28]。其次,PZA敏感株中發(fā)生的突變與耐藥株的突變并不相同,這也提示這些位點(diǎn)的某些突變類型不能對(duì)PZase產(chǎn)生影響或是不會(huì)使PZase失去活性。
研究顯示,由rpsA基因編碼的核糖體蛋白質(zhì)S1(RpsA)是POA的一個(gè)作用靶蛋白,是與MTB菌株對(duì)PZA耐藥有關(guān)的蛋白質(zhì)[4]。此后該結(jié)論也得到Simons等[29]的證實(shí)。但本次研究中,133株MDR-MTB并未發(fā)現(xiàn)有rpsA基因突變,這可能與菌株數(shù)量較少有關(guān),但仍提示該基因的突變并不是PZA耐藥的常見機(jī)制,這與國內(nèi)外相關(guān)報(bào)道相符合[30-32]。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)重慶地區(qū)MDR-MTB中對(duì)PZA的耐藥率較高,且pncA基因突變是重慶地區(qū)MTB對(duì)PZA耐藥的主要機(jī)制,可通過對(duì)pncA基因進(jìn)行序列分析對(duì)重慶地區(qū)PZA耐藥株進(jìn)行快速篩查,及時(shí)為臨床治療提供參考。
[1] Scorpio A, Lindholm-Levy P, Heifets L, et al. Characterization ofpncAmutations in pyrazinamide-resistantMycobac-teriumtuberculosis. Antimicrob Agentd Chemother, 1997, 41(3): 540-543.
[2] Pérez-Osorio AC, Boyle DS, Ingham ZK, et al. Rapid identification of mycobacteria and drug-resistantMycobacteriumtuberculosisby use of a single multiplex PCR and DNA sequencing. J Clin Microbiol, 2012, 50(2): 326-336.
[3] Cheng SJ, Thibert L, Ssanchez T, et al.pncAmutations as a major mechanism of pyrazinamide resistantce inMycobacteriumtuberculosis: spread of a monoresistant strain in Quebec, Canada. Antimicrob Agents Chemother, 2000, 44(3): 528-532.
[4] Shi W, Zhang X, Jiang X, et al. Pyrazinamide inhibits trans-translation inMycobacteriumtuberculosis.Science, 2011, 333(6049): 1630-1632.
[5] 胡嚴(yán)杰, 黃海榮. 結(jié)核分枝桿菌對(duì)吡嗪酰胺耐藥的檢測(cè)方法研究與進(jìn)展. 中國防癆雜志, 2016, 38(9): 761-764.
[6] Singh P, Wesley C, Jadaun GP, et al. Comparative evaluation of L?wenstein-Jensen proportion method, BacT/ALERT 3D system, and enzymatic pyrazinamidase assay for pyrazinamide susceptibility testing ofMycobacteriumtuberculosis. J Clin Microbiol, 2007, 45(1): 76-80.
[7] Krishnamurthy A, Almeida D, Rodrigues C, et al. Comparison of pyrazinamide drug susceptibility ofM.tuberculosisby radiometric BACTEC and enzymatic pyrazinamidase assay. Indian J Med Microbiol, 2004, 22(3): 166-168.
[8] Muthaiah M, Jagadeesan S, Ayalusamy N, et al. Molecular epidemiological study of pyrazinamide-resistance in clinical isolates ofMycobacteriumtuberculosisfrom South India. Int J Mol Sci, 2010, 11(7): 2670-2680.
[9] Mirabal NC, Yzquierdo SL, Lemus D, et al. Evaluation of colorimetric methods using nicotinamide for rapid detection of pyrazinamide resistance inMycobacteriumtuberculosis. J Clin Microbiol, 2010, 48(8): 2729-2733.
[10] McCammon MT, Gillette JS, Thomas DP, et al. Detection by denaturing gradient gel electrophoresis ofpncAmutations associated with pyrazinamide resistance inMycobacteriumtuberculosisisolates from the United States-Mexico border region. Antimicrob Agents Chemother, 2005, 49(6): 2210-2217.
[11] Zimic M, Sheen P, Quiliano M, et al. Peruvian and globally reported amino acid substitutions on theMycobacteriumtuberculosispyrazinamidase suggest a conserved pattern of mutations associated to pyrazinamide resistance. Infect Genet Evol, 2010, 10(2): 346-349.
[12] 李洪敏, 吳雪瓊, 王巍, 等. 結(jié)核菌耐藥pncA和embB基因突變與臨床治療的研究. 中國醫(yī)師雜志, 2004, 6(6): 742-744.
[13] 姜英, 彭俊平, 楊帆, 等. 結(jié)核分枝桿菌耐吡嗪酰胺分子機(jī)制研究. 微生物學(xué)免疫學(xué)進(jìn)展, 2007, 35(1): 5-9.
[14] 何秀云, 莊玉輝, 李國利, 等. 耐吡嗪酰胺結(jié)核分枝桿菌基因突變研究. 中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志, 2008, 31(3): 301-304.
[15] 石潔, 李輝, 馬曉光, 等. 河南省結(jié)核分枝桿菌吡嗪酰胺耐藥基因pncA分析. 中國病原生物學(xué)雜志, 2013, 8(9): 796-798.
[16] Portugal I, Barreiro L, Moniz-Pereira J, et al.pncAmutations in pyrazinamide-resistantMycobacteriumtuberculosisisolates in Portugal. Antimicrob Agents Chemother, 2004, 48(7): 2736-2738.
[17] Park SK, Lee JY, Chang CL, et al.pncAmutations in clinicalMycobacteriumtuberculosisisolates from Korea. BMC Infect Dis, 2001, 1: 4.
[18] 曾濤, 朱中元. 結(jié)核分枝桿菌耐藥分子機(jī)制及檢測(cè)方法的研究進(jìn)展. 中國熱帶醫(yī)學(xué), 2008, 8(3): 481-484.
[19] Simons SO, van Ingen J, vail der Laan T, et al. Validation ofpncAgene sequencing in combination with the mycobacterial growth indicator tube method to test suseeptibilitv ofMycobacteriumtuberculosisto pyrazinamide. J Clin Microbiol, 2012, 50(2): 428-434.
[20] Rodrigues Vde F, Telles MA, Ribeiro MO, et al. Characteri-zation ofpncAmutations in pyrazinamide-resistantMycobac-teriumtuberculosisin Brazil. Antimicrob Agents Chemother, 2005, 49(1): 444-446.
[21] Lee KW, Lee JM, Jung KS, et al. Characterization ofpncAmutations of pyrazinamide-resistantMycobacteriumtuberculosisin Korea. J Korean Med Sci, 2001, 16(5): 537-543.
[22] Zimic M, Sheen P, Quiliano M, et al. Peruvian and globally reported amino acid substitutions on theMycobacteriumtuberculosispyrazinamidase suggest a conserved pattern of mutations associated to pyrazinamide resistance. Infect Genet Evol, 2010, 10(2): 346-349.
[23] Miotto P, Cabibbe AM, Feuerriegel S, et al.Mycobacteriumtuberculosispyrazinamide resistance determinants: a multicenter study. MBio, 2014, 5(5): e01819-14.
[24] Sheen P, Méndez M, Gilman RH, et al. Sputum PCR-single-strand conformational polymorphism test for same-day detection of pyrazinamide resistance in tuberculosis patients. J Clin Microbiol, 2009, 47(9): 2937-2943.
[25] Sreevatsan S, Pan X, Zhang Y, et al. Mutations associated with pyrazinamide resistance inpncAofMycobacteriumtuberculosiscomplex organisms. Antimicrob Agents Chemother, 1997, 41(3): 636-640.
[26] Hirano K, Takahashi M, Kazumi Y, et al. Mutation inpncAis a major mechanism of pyrazinamide resistance inMycobacteriumtuberculosis. Tuberc Lung Dis, 1997, 78(2): 117-122.
[27] Napiórkowska A, Augustynowicz-Kopec' E, Zwolska Z. Phenotypic characterization of pyrazinamide-resistantMycobacteriumtuberculosisisolated in Poland. Pneumonol Alergol Pol, 2010, 78(4): 256-262.
[28] 鄭惠文, 逄宇, 趙雁林. 結(jié)核分枝桿菌在不同pH值液體培養(yǎng)基中對(duì)吡嗪酰胺敏感度的研究. 中國防癆雜志, 2017, 39(2): 149-153.
[29] Simons SO, Mulder A, van Ingen J, et al. Role ofrpsAgene sequencing in diagnosis of pyrazinamide resistance. J Clin Microbiol, 2013, 51(1): 382.
[30] 胡族瓊, 蔡杏珊, 謝偉勝, 等. 吡嗪酰胺耐藥結(jié)核分枝桿菌pncA及rpsA基因突變特征分析. 中華檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志, 2014, 37(4): 285-289.
[31] Alexander DC, Ma JH, Guthrie JL, et al. Gene sequencing for routine verification of pyrazinamide resistance inMycobacteriumtuberculosis: a role forpncAbut notrpsA. J Clin Microbiol, 2012, 50(11): 3726-3728.
[32] Tan Y, Hu Z, Zhang T, et al. Role ofpncAandrpsAgene sequencing in detection of pyrazinamide inMycobacteriumtuberculosisisolates from Southern China. J Clin Microbiol, 2014, 52(1): 291-297.