彭燦陽(yáng) 郭松長(zhǎng) 柳 序 徐明明 曲湘勇
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南畜禽安全生產(chǎn)協(xié)同創(chuàng)新中心,長(zhǎng)沙 410128)
烏骨雞因具有極高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值及藥用價(jià)值而深受消費(fèi)者青睞,消費(fèi)者一般以烏骨雞烏色度的深淺來(lái)評(píng)判其品質(zhì)的優(yōu)劣,而烏骨雞機(jī)體黑色素沉積的程度決定其烏色度的深淺。也有相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),烏骨雞的滋補(bǔ)作用主要基于其黑色素含量[1]。除了一般常規(guī)經(jīng)濟(jì)性狀外,烏骨雞烏色度,即黑色素的沉積是選育工作的核心目標(biāo)。黑色素是由黑色素細(xì)胞合成并運(yùn)輸?shù)郊?xì)胞外,并在其附近組織中沉積。脊椎動(dòng)物黑色素細(xì)胞源自于神經(jīng)嵴,在胚胎發(fā)育早期成黑色素細(xì)胞由神經(jīng)嵴細(xì)胞分化、遷移至體節(jié)中胚層,并進(jìn)入外胚層形成表皮黑色素細(xì)胞,使得黑色素細(xì)胞在胚胎內(nèi)能夠廣泛分布[2]。烏骨雞黑色素的沉積是受多因子共同調(diào)控的復(fù)雜過(guò)程。本文綜述了烏骨雞黑色素的發(fā)生、沉積規(guī)律及其候選基因的研究進(jìn)展,以期為今后的相關(guān)研究工作提供參考。
在早期原腸胚階段神經(jīng)系統(tǒng)形成時(shí)期,神經(jīng)嵴細(xì)胞經(jīng)背側(cè)途徑,沿體節(jié)和外胚層遷移,分化為成黑色素細(xì)胞,最后進(jìn)入外胚層,在真皮層甚至表皮層形成黑色素細(xì)胞;后續(xù)研究又發(fā)現(xiàn)神經(jīng)嵴干細(xì)胞分化為雪旺細(xì)胞前體,通過(guò)腹側(cè)途徑遷向皮膚,最終發(fā)育分化為黑色素細(xì)胞[3-4]。禽類(lèi)軀干部神經(jīng)細(xì)胞體外的培養(yǎng)結(jié)果表明,具有成黑色素潛質(zhì)的神經(jīng)嵴細(xì)胞要在6 h后才逐漸遷移[5]。雞胚胎發(fā)育第12~13期,神經(jīng)嵴細(xì)胞開(kāi)始遷移,在胚胎第20期,成黑色素細(xì)胞從神經(jīng)嵴出發(fā),開(kāi)始背側(cè)遷移[6]。神經(jīng)嵴細(xì)胞的遷移途徑、分化趨勢(shì)會(huì)受到其他各種因子的調(diào)控影響,繼而影響黑色素細(xì)胞的生成及在組織中的分布。某些因子對(duì)黑色素細(xì)胞的生成、遷移具有抑制作用。叉頭框(fork head box,F(xiàn)ox)家族成員之一FOxD3,是一種干細(xì)胞關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子,能調(diào)控神經(jīng)嵴細(xì)胞的生成、遷移和分化;研究還發(fā)現(xiàn),F(xiàn)oxD3在雞神經(jīng)管中異位表達(dá),能抑制神經(jīng)嵴和神經(jīng)嵴分化衍生物的形成[7],F(xiàn)oxD3還能抑制黑色素原的形成。Kos等[8]曾報(bào)道,F(xiàn)oxD3抑制神經(jīng)嵴細(xì)胞向成黑色素細(xì)胞分化,并抑制成黑色素細(xì)胞的遷移。而黑色素細(xì)胞的生成及遷移也會(huì)受機(jī)體其他因子的促進(jìn);小眼畸形相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子(microphthalmia transcription factor,Mitf)調(diào)控成黑色素細(xì)胞分化、發(fā)育,是神經(jīng)嵴細(xì)胞定向發(fā)育分化成黑色素細(xì)胞發(fā)生標(biāo)志之一;研究發(fā)現(xiàn),Mitf通過(guò)其螺旋-環(huán)-螺旋-亮氨酸拉鏈(basic helix-loop-helix leucine zipper,bHLHZip)結(jié)構(gòu)識(shí)別位于靶基因啟動(dòng)子區(qū)上高度保守的E盒子(E-box)或M盒子(M-box)序列,啟動(dòng)下游靶基因的轉(zhuǎn)錄而參與黑色素細(xì)胞分化與發(fā)育[9]。配對(duì)框3(paired box,Pax3)轉(zhuǎn)錄因子對(duì)黑色素細(xì)胞的遷移、分化、抗凋亡等過(guò)程中也起到了重要的調(diào)控作用,神經(jīng)細(xì)胞黏著分子1(neuralcell adhesion molecule 1,NCAM1)的主要作用是促進(jìn)細(xì)胞間的黏附,而Pax3能直接抑制NCAM1的表達(dá)或間接使NCAM1在合成后迅速磷酸化后失去黏附功能,促進(jìn)細(xì)胞的遷移[10-11]。Pax3與性別決定基因同源盒基因10(SRY-box containing gene 10,Sox10)協(xié)同作用促進(jìn)Mitf的表達(dá),促使黑色素細(xì)胞的分化;在胚胎期,Pax3通過(guò)抑制p53依賴(lài)性細(xì)胞凋亡,以保證黑色素細(xì)胞完成發(fā)育[12]。
成黑色素細(xì)胞的分化及遷移主要發(fā)生在胚胎期,黑色素細(xì)胞在動(dòng)物機(jī)體的分布情況在一定程度上決定了動(dòng)物機(jī)體黑色素的沉積量。田穎剛等[13]對(duì)泰和烏骨雞皮膚和肌肉組織進(jìn)行切片、染色觀察發(fā)現(xiàn),皮膚組織中黑色素細(xì)胞在真皮層分布密度大于表皮層;肌肉組織中黑色素細(xì)胞主要分布在肌外膜及部分肌束膜中,肌纖維中黑色素細(xì)胞分布較少,使得泰和烏骨雞胸肌肌肉外側(cè)比內(nèi)部黑。蔣明[14]在廣西烏骨雞上也有同樣的發(fā)現(xiàn)。烏骨雞不同個(gè)體間烏色度的差異、不同組織中黑色素沉積量的差異,可能是由于黑色素細(xì)胞數(shù)量的差異所造成。影響機(jī)體中黑色素細(xì)胞數(shù)量的因素較多,其選育空間也較大,而烏骨雞黑色素細(xì)胞的增殖、衰老及不同生長(zhǎng)周期組織中黑色素細(xì)胞的分布情況未見(jiàn)報(bào)道,有必要進(jìn)行深入的研究,以期找到影響烏骨雞黑色素細(xì)胞分布的關(guān)鍵分子標(biāo)記物,加快烏骨雞烏色度選育進(jìn)程。
黑色素小體是成熟的黑色素細(xì)胞合成與儲(chǔ)存黑色素的特定細(xì)胞器,包括合成黑色、棕色的真黑色素小體與合成紅色、黃色、褐色的偽黑色素小體。酪氨酸(tyrosine,Tyr)是黑色素合成的主要前體物質(zhì),在酪氨酸酶(tyrosinase,TYR)的作用下,催化形成多巴醌,再經(jīng)一系列氧化、聚化反應(yīng)形成多巴色素,多巴色素在酪氨酸相關(guān)蛋白2(tyrosinase-related proteins2,TYRP2)的作用下被羥化為5,6-二羥基吲哚-2-羧酸(5,6-dihydroxyindole-2-carboxylic acid,DHICA)。DHICA有2種反應(yīng)途徑,一是被酪氨酸相關(guān)蛋白1(tyrosinase-related protein 1,TYRP1)催化形成5,6-吲哚醌羧酸,5,6-吲哚醌羧酸是一種中等可溶的褐色物質(zhì);二是脫羧成5,6-二羥基吲哚(5,6-dihydroxyindole,DHI),DHI再經(jīng)過(guò)TYR的催化下快速氧化、聚合,形成5,6-吲哚醌,5,6-吲哚醌是一種高分子質(zhì)量的可溶性暗褐色或黑色多聚物。5,6-吲哚醌羧酸和5,6-吲哚醌都是真黑色素。偽黑色素是一種含硫物質(zhì),與真黑色素合成不同,半胱氨酸(cysteine,Cys)或谷胱甘肽(glutataione,GSH)參與進(jìn)來(lái)與多巴醌結(jié)合,經(jīng)一系列反應(yīng)生成偽黑色素[15]。
黑色素的合成要經(jīng)過(guò)一系列復(fù)雜的反應(yīng)過(guò)程,受到多種信號(hào)分子調(diào)控。TYR是黑色素合成的第一限速酶,TYR活性決定著黑色素合成的速度與產(chǎn)量,TYR活性低,會(huì)使過(guò)量的GSH參與黑色素的合成,形成大量偽黑色素。TYRP1和TYRP2與TYR有40%同源,在黑色素合成過(guò)程中也發(fā)揮重要的功能作用[16]。腺苷酸環(huán)化酶(adenylatecyclase,AC)通路是黑色素合成過(guò)程中的重要信號(hào)通路,α-黑色素細(xì)胞刺激素(α-melanocyte stimulating hormone,α-MSH)與黑色素皮質(zhì)素受體1(melanocortin-1 receptor,MC1R)結(jié)合激活A(yù)C通路,使環(huán)磷酸腺苷(cyclic adenosine monophosphate,cAMP)含量提高,進(jìn)而提高黑色素細(xì)胞TYR活性,促進(jìn)黑色素合成[17-18]。鼠灰色蛋白(agouti signaling protein,ASIP)是MC1R拮抗劑,能與a-MSH競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合MC1R,導(dǎo)致cAMP含量降低,TYR活性下降,偽黑色素生成量增多[19-20]。Mitf也能與TYR、TYRP1、TYRP2基因啟動(dòng)子結(jié)合,刺激基因的表達(dá),促進(jìn)黑色素的合成。烏骨雞烏色度的深淺也由真黑色與偽黑色素的量決定,由此可知,提高TYR、TYRP1及TYRP2活性,可促進(jìn)真黑色的生成量,提高烏骨雞烏色度。
黑色素細(xì)胞通過(guò)其樹(shù)突和細(xì)胞-細(xì)胞結(jié)構(gòu)與周?chē)?0多個(gè)角質(zhì)形成細(xì)胞相互接觸形成1個(gè)黑色素單位,并向其輸送黑色素。黑色素的運(yùn)輸實(shí)質(zhì)是黑色素小體的轉(zhuǎn)運(yùn),包括細(xì)胞內(nèi)的轉(zhuǎn)運(yùn)及細(xì)胞間的轉(zhuǎn)運(yùn)。細(xì)胞內(nèi)的轉(zhuǎn)運(yùn)指黑色素小體從細(xì)胞核周?chē)貥?shù)突運(yùn)送至外圍活性區(qū)域,并將黑色素固定在細(xì)胞膜附近,此過(guò)程需要微管、微絲以及馬達(dá)蛋白的協(xié)同作用下完成[21]。微絲馬達(dá)蛋白首先要與黑色素小體固定,肌球蛋白利用水解三磷酸腺苷(ATP)產(chǎn)生的能量與微絲結(jié)合并向其鉤狀末端短程移動(dòng),三磷酸鳥(niǎo)苷結(jié)合蛋白(RAB27A)、肌球蛋白5a(myosin 5a,MYO5A)和黑素親和素(melanophilin,MLPH)形成復(fù)合結(jié)構(gòu)連接肌球蛋白和黑色素小體,協(xié)助黑色素小體的轉(zhuǎn)運(yùn)[22-24]。研究發(fā)現(xiàn)在這3種基因發(fā)生突變的小鼠體內(nèi),其黑色素細(xì)胞中黑色小體集聚在核周?chē)?,無(wú)法達(dá)到細(xì)胞膜附近[25]。黑色素小體到達(dá)細(xì)胞膜附近后才能被轉(zhuǎn)運(yùn)至周?chē)琴|(zhì)細(xì)胞,關(guān)于黑色素小體在細(xì)胞間轉(zhuǎn)運(yùn)的形態(tài)和機(jī)制研究很少,其可能的方式有3種。第1種是基底角質(zhì)細(xì)胞通過(guò)吞噬黑色素細(xì)胞的突出末端來(lái)獲得黑色素;第2種是黑色素細(xì)胞分泌黑色素胞及角質(zhì)細(xì)胞的吞噬作用;第3種是2種細(xì)胞相互融合,形成共同通道轉(zhuǎn)運(yùn)[26-27],而有相關(guān)報(bào)道,黑色素小體轉(zhuǎn)運(yùn)方式并不是單一的,而是幾種機(jī)制共同存在[28]。大量研究表明,黑色素運(yùn)輸機(jī)制的障礙也是導(dǎo)致動(dòng)物皮膚、被毛著色稀釋的主要原因[29-31]。Xu等[32]研究發(fā)現(xiàn),安義瓦灰雞具有“五灰”表現(xiàn)型,即灰羽、灰腳、灰皮、灰喙和灰冠,此外其肌肉顏色和骨膜也呈現(xiàn)灰色,通過(guò)對(duì)“五灰”機(jī)制的研究,發(fā)現(xiàn)其主要原因是MLPH基因突變導(dǎo)致的黑色素轉(zhuǎn)運(yùn)障礙。烏骨雞皮膚、肌肉黑色素深淺會(huì)直接影響其品質(zhì),而關(guān)于黑色素轉(zhuǎn)運(yùn)對(duì)烏骨雞皮膚、肌肉黑色素沉積影響的報(bào)道還較少,有待進(jìn)一步深入研究。
TYR、TYRP1、TYRP2和前黑色素小體蛋白17(pre-melanosomal prtein17,Pmel17)是TYR基因家族的4個(gè)成員,均來(lái)源于1個(gè)共同祖先基因。研究發(fā)現(xiàn),家禽黑色羽毛中TYR基因的表達(dá)量顯著高于白色羽毛[33-34]。雞TYR基因是復(fù)等位基因,位于1號(hào)染色體的長(zhǎng)臂4區(qū)4帶[35]。鄭嫩珠等[36]研究報(bào)道,在白絨烏骨雞皮膚、肌肉及內(nèi)臟組織中,TYR基因的表達(dá)量與黑色素的含量呈顯著正相關(guān),說(shuō)明TYR基因的過(guò)度表達(dá)有利于黑色素的沉積。TYR基因在我國(guó)地方雞品種,尤其是烏骨雞中具有豐富的變異資源。陳志強(qiáng)等[37]在雞TYR基因上游調(diào)控區(qū)序列-641~-2 125 bp發(fā)現(xiàn)3個(gè)單核苷酸多態(tài)(SNP)位點(diǎn),與雞的脛色和皮膚顏色顯著相關(guān)。TYRP1基因所編碼的TYRP1是一種跨膜糖蛋白,在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中合成并轉(zhuǎn)運(yùn)至黑色素細(xì)胞內(nèi)部。在人類(lèi)研究中,TYR基因在黑膚色類(lèi)型人的黑色素細(xì)胞中表達(dá)與白膚色類(lèi)型人無(wú)顯著差異,而TYRP1基因的表達(dá)量有明顯提高[38]。Li等[39]研究發(fā)現(xiàn)TYRP1基因在黑馬中的表達(dá)量是灰馬6.54倍;劉薇[40]研究發(fā)現(xiàn),在絲毛烏骨雞胚胎除眼睛外的組織中,黑色素可見(jiàn)的時(shí)間都晚于組織中TYRP1開(kāi)始表達(dá)的時(shí)間。由此可見(jiàn),TYRP1對(duì)黑色素的合成起重要作用。TYRP2又稱(chēng)多巴色素異構(gòu)酶(DT),能使多巴色素轉(zhuǎn)化為DHICA,控制黑色素細(xì)胞中DHICA和DHI的比例,加速真黑色素的合成,是影響動(dòng)物毛色的重要蛋白[41]。Pmel17基因編碼的蛋白質(zhì)與TYR基因家族其他3個(gè)成員編碼的蛋白質(zhì)的一級(jí)結(jié)構(gòu)非常相似,故也將它作為T(mén)YR基因家族的第4個(gè)成員,參與黑色素生成途徑終末步驟的調(diào)節(jié)。Pmel17是在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中合成的Ⅰ型跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)糖蛋白,轉(zhuǎn)運(yùn)到黑色素小體內(nèi),經(jīng)前蛋白轉(zhuǎn)化酶及一系列酶參與的解朊作用裂解并組成淀粉樣纖維結(jié)構(gòu),促進(jìn)黑色素小體結(jié)構(gòu)的形成[42-43],以利于黑色素的合成和沉積。Pmel17基因含11個(gè)外顯子,研究發(fā)現(xiàn)小鼠Pmel17基因1個(gè)終止密碼子突變[44],以及1個(gè)單核苷酸插入造成額外12個(gè)氨基酸的突變[45]都可產(chǎn)生銀色毛表現(xiàn)型。馬Pmel17基因p.Arg618Cys位點(diǎn)突變也可產(chǎn)生銀色毛表型[46];雞Pmel17基因p.R618C位點(diǎn)突變產(chǎn)生紅褐色羽毛表型、第10外顯子一個(gè)9 bp片段的插入會(huì)產(chǎn)生顯性白色羽毛表型[47]。Pmel17基因突變會(huì)影響黑色素小體的成熟,導(dǎo)致黑色素合成、沉積障礙,關(guān)于Pmel17基因?qū)豕请u皮膚、肌肉組織中黑色素沉積的影響還未見(jiàn)報(bào)道,進(jìn)一步的深入研究對(duì)了解烏骨雞黑色素沉積原理具有重要意義。
雞MC1R基因由擴(kuò)展黑色(extendeds black,E)位點(diǎn)所編碼[48],是調(diào)節(jié)黑色素合成的關(guān)鍵基因。MC1R是位于黑色素細(xì)胞表面的G蛋白耦合受體,有7個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)域,為最小的G蛋白耦合受體,在AC通路中作為α-MSH的受體,對(duì)黑色素合成發(fā)揮重要作用[49]。鄭嫩珠等[33]研究MC1R基因在半番鴨和番鴨黑白羽中表達(dá)差異,結(jié)果顯示,MC1R基因在半番鴨黑羽中表達(dá)量是白羽的9.08倍,在番鴨黑羽中表達(dá)量是白羽中的3.13倍,而且差異都達(dá)到了極顯著的程度。杜曉明[50]研究相同日齡、生長(zhǎng)環(huán)境和營(yíng)養(yǎng)狀況下的黑色邊雞和灰白色邊雞皮膚、肝臟和羽髓組織中的MC1R基因的表達(dá)的情況,結(jié)果表明該基因在黑色邊雞中的以上各組織中表達(dá)量均顯著高于灰白雞。楊永升等[51]在雞MC1R基因的編碼區(qū)檢測(cè)到3個(gè)SNP,發(fā)現(xiàn)與膚色、肉色、脛色顯著相關(guān);研究發(fā)現(xiàn),雞MC1R基因的E92K和M7IT 2個(gè)位點(diǎn)突變會(huì)使雞產(chǎn)生全黑的羽毛,H215P位點(diǎn)突變會(huì)抑制黑色素沉積[52]。遲良等[53]利用反轉(zhuǎn)錄PCR克隆烏骨雞MC1R基因,結(jié)果顯示烏骨雞MC1R基因全長(zhǎng)945 bp,編碼314個(gè)氨基酸,有4個(gè)明顯的突變位點(diǎn),分別為M71T、E92K、S124G和H215P,推測(cè)S124G位點(diǎn)突變是造成烏骨雞烏皮、烏肉、烏骨,而具有純白色羽毛的原因,其具體機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
Mitf基因是黑色素合成通路中的關(guān)鍵調(diào)控基因,不但影響黑色素細(xì)胞的分化和發(fā)育,還直接調(diào)控酪氨酸基因家族的表達(dá),影響黑色素的生成[54]。Zhu等[55]研究發(fā)現(xiàn)Mitf基因在羊駝棕色被毛皮膚組織中的表達(dá)量顯著高于白色被毛皮膚;在鳥(niǎo)類(lèi)中,Mitf基因表達(dá)量與羽色具有一定相關(guān)性。Li等[56]研究發(fā)現(xiàn)Mitf基因在鴨子的黑色毛球中有比較高的表達(dá)量,而在白色毛球中幾乎不表達(dá);Minvielle等[57]研究發(fā)現(xiàn),Mitf基因突變會(huì)導(dǎo)致純合子的日本鵪鶉表現(xiàn)為銀白羽色。Wang等[58]也發(fā)現(xiàn)Mitf基因編碼區(qū)1 109 bp位點(diǎn)上的堿基突變與浙東白鵝白羽性狀高度相關(guān)。鄭嫩珠等[59]克隆了白絨烏雞Mitf基因的cDNA序列,長(zhǎng)度為1 431 bp,編碼468個(gè)氨基酸,并且發(fā)現(xiàn),在白絨烏骨雞不同組織中,Mitf基因的表達(dá)量與黑色素含量呈顯著正相關(guān),說(shuō)明Mitf基因表達(dá)有助于烏骨雞黑色素沉積。
MLPH參與黑色素細(xì)胞中成熟黑色素小體的轉(zhuǎn)運(yùn),使黑色素小體在黑色素細(xì)胞樹(shù)突末梢聚集,調(diào)控動(dòng)物皮膚和被毛的顏色。MLPH基因的突變會(huì)導(dǎo)致色素沉著減少,出現(xiàn)被毛稀釋表現(xiàn)型。國(guó)內(nèi)外大量研究發(fā)現(xiàn),貓、狗、兔子、鵪鶉和美國(guó)水貂MLPH基因的突變,都導(dǎo)致毛色變淡,出現(xiàn)毛色稀釋表型[30-31,60-62]。劉杰等[63]研究發(fā)現(xiàn),MLPH基因在20周齡浙東白鵝母鵝中的表達(dá)存在組織特異性,在黑化部位眼睛中表達(dá)量最高,在背部皮膚、腹部皮膚及腳蹼中表達(dá)量較低,而在心臟、肝臟等部位未檢測(cè)到表達(dá),這種表達(dá)規(guī)律與鵝的黑色素沉著規(guī)律一致,進(jìn)一步證明了MLPH基因與黑色素沉積有關(guān)。
烏骨雞是我國(guó)特有的地方雞品種,其最大的經(jīng)濟(jì)與藥用價(jià)值在于黑色素的沉積。黑色素性狀的常規(guī)選育主要通過(guò)觀察(肉眼)烏色度深淺,進(jìn)展較為緩慢,利用分子標(biāo)記輔助選育十分必要。關(guān)于動(dòng)物被毛黑色素沉積機(jī)理方面已有大量研究,在此基礎(chǔ)上,研究與烏骨雞黑色素沉積相關(guān)的基因具有重要意義。從黑色素細(xì)胞的發(fā)生、遷移,黑色素的合成、轉(zhuǎn)運(yùn),以及黑色素在組織中是否會(huì)發(fā)生降解等多個(gè)方面去研究影響烏骨雞烏色度的主要因素,探明基因調(diào)控黑色素沉積的具體機(jī)制,尋找影響烏骨雞黑色素沉積的主效基因及分子標(biāo)記物,并在生產(chǎn)中利用分子標(biāo)記物對(duì)黑色素性狀進(jìn)行早期選擇,提高烏骨雞烏色度,加快選育進(jìn)度。
[1] 李瑞成,尚永彪,管俊峰.烏骨雞黑色素及其研究進(jìn)展[J].肉類(lèi)研究,2010(10):54-59.
[2] REEDY M V,FARACO C D,ERICKSON C A.Specification and migration of melanoblasts at the vagal level and in hyperpigmented silkie chickens[J].Developmental Dynamics,1998,213(4):476-485.
[3] ADAMEYKO I,LALLEMEND F,AQUINO J B,et al.Schwann cell precursors from nerve innervation are a cellular origin of melanocytes in skin[J].Cell,2009,139(2):366-379.
[4] MOTOHASHI T,KUNISADA T.Chapter three-extended multipotency of neural crest cells and neural crest-derived cells[J].Current Topics in Developmental Biology,2015,111:69-95.
[5] HENION P D,WESTON J A.Timing and pattern of cell fate restrictions in the neural crest lineage[J].Development,1997,124(21):4351-4359.
[6] LORING J F,ERICKSON C A.Neural crest cell migratory pathways in the trunk of the chick embryo[J].Developmental Biology,1987,121(1):220-236.
[7] DOTTORI M,GROSS M K,LABOSKY P,et al.The winged-helix transcription factor Foxd3 suppresses interneuron differentiation and promotes neural crest cell fate[J].Development,2001,128(21):4127-4138.
[8] KOS R,REEDY M V,JOHNSON R L,et al.The winged-helix transcription factor FoxD3 is important for establishing the neural crest lineage and repressing melanogenesis in avian embryos[J].Development,2001,128(8):1467-1479.
[9] MARTINA J A,DIAB H I,LI H Q,et al.Novel roles for the Mitf/TFE family of transcription factors in organelle biogenesis,nutrient sensing,and energy homeostasis[J].Cellular and Molecular Life Sciences,2014,71(13):2483-2497.
[10] MAYANIL C S K,GEORGE D,MANIA-FARNELL B,et al.Overexpression of murine Pax3 increases NCAM polysialylation in a human medulloblastoma cell line[J].Journal of Biological Chemistry,2000,275(30):23259-23266.
[11] 周洋,崔英霞.PAX3對(duì)黑色素細(xì)胞形成的調(diào)控[J].中國(guó)優(yōu)生與遺傳雜志,2012,20(3):10-11,128.
[12] PANI L,HORAL M,LOEKEN M R,et al.Rescue of neural tube defects in Pax-3-deficient embryos by p53 loss of function:implications for Pax-3-dependent development and tumorigenesis[J].Genes & Development,2002,16(6):676-680.
[13] 田穎剛,徐德利,廖春艷.泰和烏骨雞黑色素細(xì)胞形態(tài)與分布特征[J].中國(guó)家禽,2015,37(1):5-8.
[14] 蔣明.烏雞黑色素沉積機(jī)理及分子標(biāo)記篩選的研究[D].碩士學(xué)位論文.長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2016:11-16.
[15] PARK H Y,KOSMADAKI M G,YAAR M,et al.Cellular mechanisms regulating human melanogenesis[J].Cellular and Molecular Life Sciences,2009,66(9):1493-1506.
[16] 熊渺.α-MSH和cAMP對(duì)泰和烏骨雞黑色素細(xì)胞增殖及黑色素合成的影響研究[D].碩士學(xué)位論文.南昌:江西農(nóng)業(yè)大學(xué),2014:2-5.
[17] TAPIA J C D,BAGUTTI C,COTTI R,et al.Induction of constitutive melanogenesis in amelanotic mouse melanoma cells by transfection of the human melanocortin-1 receptor gene[J].Journal of Cell Science,1996,109(8):2023-2030.
[18] THODY A J.α-MSH and the regulation of melanocyte function[J].Annals of the New York Academy of Sciences,1999,885(1):217-229.
[19] FURUMURA M,SAKAI C,ABDELMALEK Z A,et al.The interaction of agouti signal protein and melanocyte stimulating hormone to regulate melanin formation in mammals[J].Pigment Cell Research,1996,9(4):191-203.
[20] SAKAI C,OLLMANN M M,KOBAYASHI T,et al.Modulation of murine melanocyte functioninvitroby agouti signal protein[J].The EMBO Journal,1997,16(12):3544-3552.
[21] 楊朋坤.雞真皮黑色素抑制基因精細(xì)定位及相關(guān)質(zhì)量性狀分子標(biāo)記鑒定研究[D].博士學(xué)位論文.鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學(xué),2014:7-11.
[22] HARA M,YAAR M,BYERS H R,etal.Kinesin participates in melanosomal movement along melanocyte dendrites[J].Journal of Investigative Dermatology,2000,114(3):438-443.
[23] WESTBROEK W,LAMBERT J,NAEYAERT J M.TheDilutelocus and griscelli syndrome:gateways towards a better understanding of melanosome transport[J].Pigment Cell Research,2001,14(5):320-327.
[24] WESTBROEK W,LAMBERT J,DE SCHEPPER S,et al.Rab27b is up-regulated in human griscelli syndrome type Ⅱ melanocytes and linked to the actin cytoskeleton via exon F-myosin Va transcripts[J].Pigment Cell Research,2004,17(5):498-505.
[25] WEI Q,WU X F,HAMMER J A.The predominant defect in dilute melanocytes is in melanosome distribution and not cell shape,supporting a role for myosin V in melanosome transport[J].Journal of Muscle Research and Cell Motility,1997,18(5):517-527.
[26] SEIBERG M.Keratinocyte-melanocyte interactions during melanosome transfer[J].Pigment Cell Research,2001,14(4):236-242.
[27] GREATENS A,HAKOZAKI T,KOSHOFFER A,et al.Effective inhibition of melanosome transfer to keratinocytes by lectins and niacinamide is reversible[J].Experimental Dermatology,2005,14(7):498-508.
[28] VAN DEN BOSSCHE K V,NAEYAERT J M,LAMBERT J,et al.The quest for the mechanism of melanin transfer[J].Traffic,2006,7(7):769-778.
[29] VAEZ M,FOLLETT S A,BED’HOM B,et al.A single point-mutation within the melanophilin gene causes the lavender plumage colour dilution phenotype in the chicken[J].BMC Genetics,2008,9(1):7.
[30] BED’HOM B,VAEZ M,COVILLE J,et al.The lavender plumage colour in Japanese quail is associated with a complex mutation in the region ofMLPHthat is related to differences in growth,feed consumption and body temperature[J].BMC Genomics,2012,13:442.
[31] CIRERA S,MARKAKIS M N,CHRISTENSEN K,et al.New insights into the melanophilin (MLPH) gene controlling coat color phenotypes in American mink[J].Gene,2013,527(1):48-54.
[32] XU J G,XIE M G,ZOU S Y,et al.Interactions of allele E of theMC1Rgene with FM and mutations in theMLPHgene cause the five-gray phenotype in the Anyi tile-like gray chicken[J].Genetics and Molecular Research,2016,15(2),doi:10.4238/gmr.15027633.
[33] 鄭嫩珠,辛清武,繆中緯,等黑色素基因在半番鴨及番鴨不同羽色中的差異表達(dá)研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2013,28(5):427-431.
[34] XU Y,ZHANG X H,PANG Y Z,et al.Association of tyrosinase (TYR) and tyrosinase-related protein 1 (TYRP1) with melanic plumage color in Korean quails (Coturnixcoturnix)[J].Asian-Australasian Journal of Animal Sciences,2013,26(11):1518-1522.
[35] DENOVAN-WRIGHT E M,RAMSEY N B,MCCORMICK C J,et al.Nucleotide sequence of transferrin cDNAs and tissue-specific expression of the transferrin gene in Atlantic cod (Gadusmorhua)[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part B:Biochemistry and Molecular Biology,1996,113(2):269-273.
[36] 鄭嫩珠,李麗,辛清武,等.酪氨酸酶(TYR)、小眼畸形相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子(Mitf)和刺鼠信號(hào)蛋白(ASIP)基因?qū)Π捉q烏骨雞黑色素沉積的遺傳效應(yīng)[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2015,23(8):1076-1083.
[37] 陳志強(qiáng),鄧學(xué)梅,周軍,等.雞的酪氨酸酶基因5′調(diào)控區(qū)的單鏈構(gòu)象多態(tài)性分析[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2005,13(2):191-194.
[38] ALALUF S,BARRETT K,BLOUNT M,et al.Ethnic variation in tyrosinase andTYRP1 expression in photoexposed and photoprotected human skin[J].Pigment Cell Research,2003,16(1):35-42.
[39] LI B,HE X L,ZHAO Y P,et al.Tyrosinase-related protein 1 (TYRP1) gene polymorphism and skin differential expression related to coat color in Mongolian horse[J].Livestock Science,2014,167:58-64.
[40] 劉薇.絲羽烏骨雞BAC文庫(kù)的構(gòu)建和黑色素相關(guān)基因TYRP1和ID的研究[D].博士學(xué)位論文.北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué),2004:78-82.
[41] 劉甲斐,仇雪梅.黑色素及其相關(guān)基因的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2007(4):55-58.
[42] RAPOSO G,MARKS M S.Melanosomes-dark organelles enlighten endosomal membrane transport[J].Nature Reviews Molecular Cell Biology,2007,8(10):786-797.
[43] HELLSTR?M A R,WATT B,FARD S S,et al.Inactivation ofPmelalters melanosome shape but has only a subtle effect on visible pigmentation[J].PLoS Genetics,2011,7(9):e1002285.
[44] KWON B S,HALABAN R,PONNAZHAGAN S,et al.Mouse silver mutation is caused by a single base insertion in the putative cytoplasmic domain of Pmel17[J].Nucleic Acids Research,1995,23(1):154-158.
[46] BRUNBERG E,ANDERSSON L,COTHRAN G,et al.A missense mutation inPmel17 is associated with the Silver coat color in the horse[J].BMC Genetics,2006,7(1):46-55.
[47] KERJE S,SHARMA P M,GUNNARSSON U,et al.TheDominantwhite,Dun andSmokycolor variants in chicken are associated with insertion/deletion polymorphisms in thePmel17 gene[J].Genetics,2004,168(3):1507-1518.
[48] TAKEUCHI S,SUZUKI H,YABUUCHI M,et al.Molecular cloning and sequence analysis of the chick melanocortin-1 receptor gene[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA):Gene Structure and Expression,1996,1306(2/3):122-126.
[49] LU D,WILLARD D,PATEL I R,et al.Agouti protein is an antagonist of the melanocyte-stimulating hormone receptor[J].Nature,1994,371(6500):799-802.
[50] 杜曉明.邊雞MC1R和TYR基因序列及mRNA表達(dá)研究[D].碩士學(xué)位論文.太谷:山西農(nóng)業(yè)大學(xué),2013:29-41.
[51] 楊永升,鄧學(xué)梅,李寧,等.MC1R是控制雞黑色素形成的候選主效基因[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2004,31(6):500-505.
[52] LING M K,LAGERSTR?M M C,FREDRIKSSON R,et al.Association of feather colour with constitutively active melanocortin 1 receptors in chicken[J].The FEBS Journal,2003,270(7):1441-1449.
[53] 遲良,李蘭,潘慶杰,等.烏骨雞黑色素皮質(zhì)激素受體-1基因的克隆、序列分析與原核表達(dá)[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,45(5):966-972.
[55] ZHU Z,HE J,JIA X,et al.MicroRNA-25 functions in regulation of pigmentation by targeting the transcription factor Mitf in Alpaca (Lamapacos) skin mel-anocytes[J].Domestic Animal Endocrinology,2010,38(3):200-209.
[56] LI S J,WANG C,YU W H,et al.Identification of genes related to white and black plumage formation by RNA-Seq from white and black feather bulbs in ducks[J].PLoS One,2012,7(5):e36592.
[57] MINVIELLE F,BED’HOM B,COVILLE J,et al.The “silver” Japanese quail and theMitfgene:causal mutation,associated traits and homology with the “blue” chicken plumage[J].BMC Genetics,2010,11:15.
[58] WANG Y,LI S M,HUANG J,et al.Mutations ofTYRandMitfgenes are associated with plumage colour phenotypes in geese[J].Asian-Australasian Journal of Animal Sciences,2014,27(6):778-783.
[59] 鄭嫩珠,辛清武,朱志明,等.白絨烏雞Mitf基因的cDNA克隆、表達(dá)及其對(duì)黑色素沉積的影響[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,48(18):3711-3718.
[60] ISHIDA Y,DAVID V A,EIZIRIK E,et al.A homozygous single-base deletion inMLPHcauses the dilute coat color phenotype in the domestic cat[J].Genomics,2006,88(6):698-705.
[61] PHILIPP U,HAMANN H,MECKLENBURG L,et al.Polymorphisms within the canineMLPHgene are associated with dilute coat color in dogs[J].BMC Genetics,2005,6:34.
[62] FONTANESI L,SCOTTI E,ALLAIN D,et al.A frameshift mutation in themelanophilingene causes the dilute coat colour in rabbit (Oryctolaguscuniculus) breeds[J].Animal Genetics,2014,45(2):248-255.
[63] 劉杰,劉毅,王翠,等.鵝MLPH基因分子克隆、組織表達(dá)及SNP檢測(cè)[J].中國(guó)家禽,2016,38(12):4-9.
*Corresponding author, professor, E-mail: quxy99@126.com
動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào)2018年1期