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漢坦病毒HV(hantavirus)為布尼亞病毒科漢坦病毒屬分節(jié)段的負(fù)鏈RNA病毒,其基因組分為大(L)、中(M)、小(S)3個基因片段,分別編碼RNA 依賴的 RNA 聚合酶,糖蛋白前體(GPC蛋白),核蛋白(N蛋白)[1]。HV目前有41個型別(基因型/血清型),不同基因型的HV又可分很多基因亞型,新的基因型或基因亞型的漢坦病毒不斷被發(fā)現(xiàn)使得HV的進(jìn)化和發(fā)生比預(yù)期更復(fù)雜[2-3]。HTNV是漢坦病毒的代表基因型,因其引起臨床癥狀重、死亡率高的腎綜合征出血熱(Hemorrhagic fever with renal syndrome,HFRS)而被廣泛關(guān)注。在我國,HTNV分為9個基因亞型[4],宿主動物是以黑線姬鼠為代表的室外鼠。在前期研究中我們發(fā)現(xiàn)江西省可能存在新亞型的HTNV[5-6],為了能明確江西省的HTNV基因特征和基因亞型,本研究對分離到的1株HTNV進(jìn)行了全基因組測序,結(jié)果報(bào)告如下:
1.1標(biāo)本來源 AYW89-15株為本實(shí)驗(yàn)室采用Vero-E6細(xì)胞從江西省安義縣黑線姬鼠中分離的。
1.2主要試劑 QIAcube HT 核酸提取試劑盒(Qiagen)、One-Step RT-PCR 試劑盒(Qiagen)。
1.3引物設(shè)計(jì)與合成 毒株全S、M、L 基因分別分1、3、6段擴(kuò)增,根據(jù)GenBank中76-118株和Z10株基因序列,應(yīng)用Primer Primer5.0設(shè)計(jì)并由上海生工生物工程有限公司合成,引物序列見表1。
表1 HTNV全基因組分段RT-PCR擴(kuò)增引物
Tab.1 RT-PCR primers for amplifying the complete genen of HTNV
基因片段segement引物名稱Primername5'-3'位置location目的片段大小/bplengthSSFTAGTAGTAGACTCCCTAAAGA1~211699SRTAGTAGTAGTATGCTCCCTAA1698~1678MM1FTAGTAGTAGACTCCGCAAAAGA1~221198M1RCCCAGGACCAGATAAGACAC1198~1179M2FTGGGCTATTCCCTCAGTT1060~10771028M2RGAGCTGGAAGTCAGGGAG2088~2070M3FATCCTCTGGGCTGCAAGTG1964~19831653M3RCTAGTGTACATCCAGCATCCTT3616~3595LL1FTAGTAGTAGACTCCCTAAGTGACAA1~251324L1RGAGTTGATGGCTCAGTTATGTTC1324~1346L2FACATCATACAAACCTGCCACA939~9591622L2RACCATCCTCCTGGACTTGC2560~2542LF3ACGGCTATATGATGTGGGAGCTTCG2334~23581340LR3ACATCGGCTCTGTGCTGCTGC3673~3653L4FATGGGACTGACTGGTTCTTATTTG3372~33951296L4RAACTCCGTCTTTCATTGTCTTTAGG4667~4643L5FATAAGTTTGCTGTGACCGTGGAT4563~45851004L5RTTGCACGTAGTCCATCATCCTTTAC5567~5543L6FTGATGGATGAGGTTTCAAAGGAG5334~53561300L6RTAGTAGTAGTACGCTCCGGAAAAT6533~6510
1.4核酸擴(kuò)增和測序 采用全自動核酸提取儀(Qiagen)和QIAcube HT 核酸提取試劑盒進(jìn)行核酸提取。采用One-Step RT-PCR試劑進(jìn)行擴(kuò)增,RT反應(yīng):50 ℃ 30 min,95 ℃ 15 min;PCR循環(huán)如下:94 ℃ 1 min,55 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min 45 s,共擴(kuò)增35個循環(huán),72 ℃延伸 10 min。1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,目的片段擴(kuò)增產(chǎn)物送上海生物工程有限公司進(jìn)行TA克隆,挑取每個目的產(chǎn)物的3個陽性克隆子進(jìn)行測序。
1.5對測序結(jié)果進(jìn)行分析并構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹 運(yùn)用DNAStar 軟件(SeqMan)對測定的序列進(jìn)行拼接,運(yùn)用MEGA6.0軟件對核苷酸和氨基酸進(jìn)行比對分析,以鄰位相連法((neighbor-Joining,NJ))構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹。
2.1全基因擴(kuò)增 S、M、L基因擴(kuò)增電泳結(jié)果見圖1。一條S目的片段大小1 698 kb; M片段分3段擴(kuò)增(圖1B),目的片段大小分別為1 198 bp、1 023 bp、1 653 bp;L片段分6段擴(kuò)增,目的產(chǎn)物為1.0 kb ~1.6 kb。擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖與預(yù)期結(jié)果相符。
M:DL2000Marker; 1: S基因;2~4:M基因M1~M3;5~10:L基因L1~L6 M:DL2000 Marker; 1: S segment; 2~4:M segment M1~M3;5~10:Lsegment L1~L6 圖1 AYW89-15毒株RT-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖Fig.1 Electrophoresis patterns of RT-PCR products of AYW89-15
2.2全基因組序列分析 經(jīng)克隆、測序、序列拼接和分析,AYW89-15株全基因組共有11 848個核苷酸,其中S、M、L基因分別含1 699、3 616、6 533個核苷酸,分別編碼429、1 135、2 151個氨基酸。S、M、L基因序列均上傳至GenBank,登錄號分別為:KY978755、KY978756、KY978757。
S基因4種堿基的比例分別為31.19% A、25.78% T、19.60% C、23.43%G。S基因編碼區(qū)為37 nt~1 326 nt,5′端、3′末端分別含36個和373個核苷酸的非編碼區(qū)。
M基因4種堿基的比例分別為30.53% A、29.37% T、18.42% C、21.68%G。M基因編碼區(qū)為41 nt~3 448 nt,5′端、3′末端分別含40個和168個核苷酸的非編碼區(qū)。
L基因4種堿基的比例分別為33.19% A、29.17% T、16.72% C、20.92%G。L基因編碼區(qū)為38 nt~6 493 nt,5′端、3′末端分別含37個和40個核苷酸的非編碼區(qū)。
參考株名稱后括號內(nèi)為相應(yīng)的毒株基因的GenBank登錄號,SEOV:80-39株GenBank accession number of each reference strain is in the bracket behind the strain`s name; SEOV:80-39 strain圖2 AYW89-15 株S基因核苷酸系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig.2 Phylogenetic analysis of AYW89-15 based on the complete S segment
參考株名稱后括號內(nèi)為相應(yīng)的毒株基因的GenBank登錄號,SEOV:80-39株GenBank accession number of each reference strain is in the bracket behind the strain`s name; SEOV:80-39 strain圖3 AYW89-15 株 M基因核苷酸系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig.3 Phylogenetic analysis of AYW89-15 based on the complete M segment
參考株名稱后括號內(nèi)為相應(yīng)的毒株基因的GenBank登錄號,SEOV:80-39株GenBank accession number of each reference strain is in the bracket behind the strain`s name; SEOV:80-39 strain圖4 AYW89-15株 L基因核苷酸系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig.4 Phylogenetic analysis of AYW89-15 based on thecomplete L segment
2.3全基因組序列核苷酸系統(tǒng)進(jìn)化分析,核苷酸和推導(dǎo)氨基酸同源性分析 采用MEGA6.0軟件對核苷酸和氨基酸進(jìn)行比對分析,以NJ法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹。S、M、L3個基因的核苷酸系統(tǒng)進(jìn)化分析分別見圖2、圖3、圖4。AYW89-15的3個基因在系統(tǒng)進(jìn)化樹中都分布在HTNV型并且獨(dú)立分支。M基因進(jìn)化樹分亞型結(jié)果(圖3)顯示,AYW89-15不在HTNV的9個亞型中,獨(dú)立分支。AYW89-15 株S基因與HTNV標(biāo)準(zhǔn)株76-118株核苷酸同源性87.3%,氨基酸同源性96.7%,與GenBank中21株HTNV比較核苷酸同源性為83.4%~87.3%,氨基酸同源性為96.5%~98.4%,與漢城型漢坦病毒(Seoul virus, SEOV)核苷酸同源性71.8%,氨基酸同源性82.3%,S基因有一個氨基酸位點(diǎn)發(fā)生了變化(Ile75Leu)。
M基因與HTNV標(biāo)準(zhǔn)株76-118株核苷酸同源性84.7%,氨基酸同源性96.5%,與GenBank中25株HTNV核苷酸同源性為79.7%~84.7%,氨基酸同源性為92.3%~96.5%,M基因有6個氨基酸位點(diǎn)發(fā)生了變化,分別是: Trp 4 Leu、Tyr43His, Asp262Glu、Ile337Val、His348 Tyr、Val664 Ile。AYW89-15M基因存在6個潛在的天門冬酰氨糖基化位點(diǎn)分別為(第N134、235、347、399、609、928位),與76-118株相比缺少了一個第N766位的糖基化位點(diǎn)。
L基因與HTNV標(biāo)準(zhǔn)株76-118株核苷酸同源性83.6%,氨基酸同源性97.1%,與GenBank中12株HTNV核苷酸同源性為80.5%~84.1%,氨基酸同源性為95.8%~97.5%。
過去10年全國共報(bào)告HFRS病例112 177例,死亡病例1 116例[7]。 江西省于1961年報(bào)告首例HFRS病例,至今每年都有HFRS病例報(bào)告,2005-2013年HFRS病例報(bào)告數(shù)位居全國前10位(共30個省市自治區(qū)報(bào)告病例)[8]。流行病學(xué)和分子生物學(xué)研究都表明江西省為HTNV和SEOV的混合疫區(qū)。關(guān)于江西省SEOV分離株的研究有相關(guān)的報(bào)道,全片段基因分析提示,該型病毒基因變異較小[9];然而,對來源于鼠肺標(biāo)本的HV部分基因研究顯示江西地區(qū)HTNV與國內(nèi)外其他HTNV差異較大,推測可能為新亞型的HTNV[6]。目前尚未有江西省HTNV的病毒分離株全片段基因組序列信息的報(bào)道。為了更全面的了解江西HTNV的基因特征和基因亞型,本研究對HTNV分離株AYW89-15株進(jìn)行了全基因測序分析。
國際病毒分類委員會(ICTV)對基因分型的建議:確定一個型別,基因序列上N蛋白和GPC蛋白氨基酸序列與其他HV氨基酸序列比較至少有7%不同[10]。 確定一個亞型,在其一個基因片段中至少應(yīng)有5%~24%的核苷酸序列不同;確定為同一亞型,在所有3個基因片段的核苷酸序列差異應(yīng)小于4%[11]?;蚍中偷臉?biāo)準(zhǔn)主要是依據(jù)病毒核苷酸序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)生樹中的位置來確定。依據(jù)核苷酸序列以NJ法或最大簡約法(maximum parsimony,MP)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹是目前HV基因分型或研究病毒間發(fā)生關(guān)系最常用的方法。張永振等[12]認(rèn)為漢坦病毒的基因分型及系統(tǒng)發(fā)生分析時,NJ 法優(yōu)于 MP法,用M片斷的Gl核苷酸序列可以替代M與S片斷全序列進(jìn)行基因分型及系統(tǒng)發(fā)生分析。2002年王世文等[4]采用分子生物學(xué)方法對HV部分M基因測序和系統(tǒng)發(fā)生分析HTNV分為9個亞型。隨著分子生物學(xué)發(fā)展,不斷有新的基因型和新基因亞型HV的報(bào)道。Xu等[13]對我國蝙蝠中的HV全基因組序列分析發(fā)現(xiàn)新基因型的HV。Li等[14]通過對湖北分離的HV004株進(jìn)行全基因組測序和系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn),HV004株與國內(nèi)外HTNV核苷酸和氨基酸差異同源性為83%~90%,氨基酸同源性95%~99%,HV004株在基因進(jìn)化樹上獨(dú)立分支,確定HV004株為HTNV新的基因亞型。本研究AYW89-15株的全基因與國內(nèi)外HTNV比較,核苷酸序列同源性為79.7%~87.3%,氨基酸序列同源性為92.3%~98.4%。與其他HTNV相比AYW89-15核苷酸和氨基酸差異度均大于HV004株。以NJ法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹表明AYW89-15分布在HTNV分支,但是3個基因在系統(tǒng)進(jìn)化樹上均獨(dú)立分支?;谌玀片段進(jìn)化樹分亞型結(jié)果顯示AYW89-15不在現(xiàn)有HTNV的9個亞型中。因此,我們認(rèn)為AYW89-15株為HTNV新的基因亞型,江西省存在新基因亞型的HTNV。
N蛋白是漢坦病毒的主要抗原蛋白,N蛋白的氨基末端在漢坦病毒感染體液免疫反應(yīng)中起著重要的作用,引起體液免疫反應(yīng)的抗原域被認(rèn)為是位于氨基末端[15]。糖蛋白前體經(jīng)切割為G1和G2糖蛋白,可誘導(dǎo)中和抗體。在G1和G2區(qū)的糖基化位點(diǎn)對蛋白質(zhì)折疊、細(xì)胞內(nèi)運(yùn)輸及細(xì)胞融合非常重要[13]。與其他HTNV相比,AYW89-15 N蛋白第75位氨基酸發(fā)生了變化。AYW89-15株 G1、G2區(qū)保守的6個糖基化位點(diǎn)和其他HTNV相同,與76-118株相比,因第768位氨基酸發(fā)生變異導(dǎo)致缺少N766位的糖基化位點(diǎn)。整個GPC蛋白氨基酸存在6個氨基酸變異。N蛋白和GPC蛋白氨基酸位點(diǎn)的變異對AYW89-15株生物學(xué)特征的影響還需進(jìn)一步研究。
[1] Vaheri A, Strandin T, Hepojoki J, et al. Uncovering the mysteries of hantavirus infections[J]. Nat Rev Microbiol, 2013, 11(8): 539-550.
[2] Castel G,Tordo N,Plyusnin A. Estimation of main diversification time-points of hantaviruses using phylogenetic analyses of complete genomes[J]. Virus Res, 2017, 233(2): 60-69.
[3] Holmes EC, Zhang Y. The evolution and emergence of hantaviruses[J]. Curr Opin Virol, 2015, 10(10): 27-33.
[4] Wang SW, Hang CS, Wang H, et, al. Genotype and clade distribution of Hantaviruses in China[J]. Chin J Virol, 2002, 18(3): 211-216. (in Chinese)
王世文,杭長壽,王華,等.我國漢坦病毒基因型和基因亞型的分布研究[J].病毒學(xué)報(bào), 2002, 18 (3):211-216.
[5] Liu SW, Gong T, Shi Y, et al. Isolation and characterization of a Hantaan virus in Jiangxi Province[J]. Mod Prevent Med, 2016, (18): 3394-3397. (in Chinese)
劉師文,龔甜,施勇,等.江西省1株漢灘型漢坦病毒的分離與鑒定[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué), 2016(18): 3394-3397.
[6] Liu SW, Xu G, Gong T, et, al. Genetic characteristic analysis of Hantavirus from rodents in Jiangxi province[J]. Chin J Vector Bio Ctrl, 2015, 26(5): 475-479. (in Chinese)
劉師文,徐剛,龔甜,等.江西省鼠類攜帶漢坦病毒基因特征研究[J].中國媒介生物學(xué)及控制雜志, 2015, 26(5).475-479.
[7] Papa A, Vaheri A, LeDuc JW, et al. Meeting report: Tenth International Conference on Hantaviruses[J]. Antiviral Res, 2016. DOI: 10.1016/j.antiviral. 2016.08.015
[8] Liu X, Zhang T, Xie C, et al. Changes of HFRS incidence caused by vaccine intervention in Yichun City, China, 2005-2013[J]. Med Sci Mon, 2015, 22: 295-301.
[9] Liu SW, Xu G, Shi Y, et, al. Hantavirus isolation and the complete S,M segments genetic analysis of the isolates in Jiangxi province[J].Chin J Zoonoses, 2015,31(12):1157-1162. DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2015.12.014(in Chinese)
劉師文,徐剛,施勇,等.江西省漢坦病毒分離及其S和M基因特征分析[J].中國人獸共患病學(xué)報(bào),2015,31(12),1157-1162.
[10] Straková P, Pdufkova L,irmarová J, et, al, Novel hantavirus identified in European bat speciesNyctalusnoctula[J]. Infect Genet Evol, 2017, 48: 127-130.
[11] Zhou JH, Zhang HL. Advances in hantavirus typing and pathogenicity[J]. Intl J Virol, 2008, 25(2): 37-41. (in Chinese)
周濟(jì)華,張海林.漢坦病毒分型及致病性的研究進(jìn)展[J].國際病毒學(xué)雜志, 2008, 15(2).37-41.
[12] Zhang YZ, Qu YG, Yang DM. The genotypes and phylogenetic analysis of Hantavirus[J]. Chin J Zoonoses, 2006, 22(3): 193-197. (in Chinese)
張永振,屈勇剛,楊東明,等.漢坦病毒系統(tǒng)發(fā)生分析及其基因分型的研究[J].中國人獸共患病學(xué)報(bào), 2006, 22(3):193-197.
[13] Xu L, Wu J, He B, et al. Novel hantavirus identified in black-bearded tomb bats, China[J]. Infect Genet Evol, 2015, 31: 158-160.
[14] Li JL, Ling JX, Liu DY, et al. Genetic characterization of a new subtype of Hantaan virus isolated from a hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) epidemic area in Hubei Province, China[J]. Arch Virol, 2012, 157(10): 1981-1987.
[15] Elgh F, Ke L, Alexeyev OA, et al. A major antigenic domain for the human humoral response to Puumala virus nucleocapsid protein is located at the amino-terminus[J]. J Virol Methods,1996, 59(1/2): 161-172.