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        大豆根瘤共生固氮分子機制研究進展

        2017-12-12 00:32:58侯云龍高淑芹馬曉萍陳健邱紅梅王躍強
        農(nóng)業(yè)與技術(shù) 2017年21期
        關(guān)鍵詞:機制研究進展

        侯云龍++高淑芹++馬曉萍++陳健++邱紅梅++王躍強

        摘 要:大豆的共生固氮能力得益于根瘤,根瘤數(shù)與固氮效率是典型的數(shù)量性狀受多基因調(diào)控。目前,已經(jīng)在大豆中克隆到結(jié)瘤因子(Nodular Factor,NF)的關(guān)鍵受體,以及一些在結(jié)瘤信號傳導(dǎo)途徑中的分子組分,這些組分涉及到結(jié)瘤基因、肽類激素、受體激酶和小的信號代謝產(chǎn)物。其中部分基因的功能及作用機理得以闡明,參與的共生固氮途徑及部分節(jié)點也已明晰。

        關(guān)鍵詞:大豆根瘤;共生固氮;機制研究;進展

        中圖分類號:S-1 文獻標(biāo)識碼:A DOI:10.11974/nyyjs.20171132011

        共生固氮是一個極其復(fù)雜的生物過程,它是由根瘤菌與寄主植物互作產(chǎn)生的,主要過程為寄主根部產(chǎn)生類黃酮,吸引根瘤菌附著于根毛,產(chǎn)生并釋放NF,被寄主的NF受體識別,產(chǎn)生鈣峰信號—結(jié)瘤信號,根毛變形彎曲包裹根瘤菌,根瘤菌侵入后通過宿主植物中所形成的一些管狀結(jié)構(gòu)達到宿主根的皮層,形成侵入線。隨后,皮層細胞進行有絲分裂,繼而形成根瘤原基。經(jīng)過發(fā)育,成熟的根瘤即可固氮,當(dāng)根瘤達到一定數(shù)量時寄主會產(chǎn)生信號“Q”,傳導(dǎo)到莖,莖部受體接收信號,產(chǎn)生細胞分裂素,傳導(dǎo)回根部,終止結(jié)瘤[1]。在這個過程中,涉及到寄主植物的多個基因,主要包括調(diào)控根瘤原基形成的基因、參與根瘤發(fā)育的基因、根瘤自我調(diào)控途徑基因以及固氮相關(guān)的基因。

        1 調(diào)控根瘤元基形成的基因

        經(jīng)過攻關(guān)已初步解析了豆科植物根瘤形成的遺傳機制?,F(xiàn)已在百脈根、苜蓿、大豆中克隆了NF受體1(NFR1)和受體5(NFR5)基因,為編碼跨膜的Lys-M-型絲氨酸/蘇氨酸受體激酶。在百脈根中發(fā)現(xiàn)一個與NFR5互作的小GTP酶ROP6,其對侵入線形成及結(jié)瘤過程均具有正調(diào)控作用[2,3]。NFR1和NFR5形成異源二聚體接收NF,啟動一系列的下游信號轉(zhuǎn)導(dǎo)級聯(lián)反應(yīng),包括質(zhì)膜上受體激酶(DMI2、SYM19、NORK)的表達,以及離子通道蛋白(DMI1)等的表達,從而誘導(dǎo)鈣峰的產(chǎn)生以及根毛的彎曲變形[4,5]。依賴鈣離子蛋白的激酶(DMI3)和GRAS-家族轉(zhuǎn)錄因子NSP1和NSP2基因也被克隆,處于NFR和DM2、DM1等基因的下游對胞質(zhì) Ca2+濃度變化產(chǎn)生響應(yīng)[6]。轉(zhuǎn)錄因子NIN也在侵染線和根瘤原基中起著重要的作用,它可能與NSP1和NSP2聯(lián)合在一起,共同調(diào)節(jié)表皮中結(jié)瘤基因的表達和結(jié)瘤過程[7]。

        除了鈣離子通道蛋白參與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)外,在百脈根中發(fā)現(xiàn)共生信號鉀離子通道蛋白基因:2個同源基因Castor和Pollux,它們可以彌補鉀離子滲透所產(chǎn)生的電荷不平衡,是細胞核周圍鈣離子激增所必需的,其中Castor 定位于核膜上[8]。這項成果表明:除了上述根瘤共生體信號通路元件,還存在其他與共生體相關(guān)的信號元件。無論結(jié)瘤信號怎樣傳導(dǎo),最終都會使早期結(jié)瘤基因ENOD40表達,進而形成根瘤。ENOD40基因編碼含12個氨基酸的多肽A和24個氨基酸的多肽B。多肽A 通過二硫鍵共價與蔗糖合酶93ku亞基上的一個半胱氨酸結(jié)合,多肽B的結(jié)合位點尚不清楚。蔗糖合酶是蔗糖代謝的重要組成部分,蔗糖的裂解是植物固氮的關(guān)鍵一步,也是根瘤形成的先決條件[9]。

        2 參與根瘤發(fā)育的基因

        根瘤原基形成后,通過發(fā)育可以分別形成無效根瘤和有效根瘤。Rj2控制大豆與根瘤菌USDA7、USDA14和USDA112發(fā)育形成無效根瘤。無效結(jié)瘤Rj2基因廣泛存在于我國東北大豆中,無效結(jié)瘤率為64%,導(dǎo)致大豆植株干重及根瘤固氮酶活性下降,并產(chǎn)生缺綠病。顯性基因Rj4也控制大豆與根瘤菌USDA33發(fā)育形成無效根瘤。目前通過精細定位及原位克隆已獲得該基因Glyma.01g165800-D,其編碼類甜蛋白。通過CRISPR/Cas9-based基因編輯敲除該基因,有效根瘤數(shù)顯著增加[10]。通過對大豆基因組分析及根瘤不同發(fā)育時期轉(zhuǎn)錄組測序,周新安課題組(2016, 2017)獲得了調(diào)控根瘤發(fā)育基因Glyma.15G227500[11]和延遲根瘤衰老的基因Glyma18g12240[12],均編碼半胱氨酸蛋白酶抑制劑(Cystatin)。通過基因過表達分析,轉(zhuǎn)Glyma.15G227500的植株根瘤數(shù)增加,轉(zhuǎn)Glyma18g12240的根瘤衰老減慢。

        目前已在百脈根中克隆到的調(diào)控根瘤發(fā)育的基因,包括硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白、錨蛋白重復(fù)結(jié)構(gòu)域蛋白、無效結(jié)瘤基因、高檸檬酸合成酶、鐵轉(zhuǎn)運蛋白、突觸融合蛋白、檸檬酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白、外排蛋白等基因 [13,14]。但基因間的互作及調(diào)控機制仍未知。在苜蓿中克隆到的調(diào)控根瘤發(fā)育基因分別為Kruppel-like 鋅指蛋白、HLH類轉(zhuǎn)錄因子、ERF類轉(zhuǎn)錄因子Mt-EFD、C2H2類轉(zhuǎn)錄因子Mt-RSD [15]。其中,Mt-RSD在苜蓿結(jié)瘤后6d在根瘤中特異表達,且在的侵染區(qū)的表達量最高。苜蓿rsd-1和rsd-2突變體的Mt-RSD基因不能正常表達翻譯,導(dǎo)致根瘤原基不能發(fā)育為成熟的根瘤。Mt-RSD通過抑制突觸小泡膜基因Mt-VAMP721a(Medtr4g022570)的表達,而調(diào)控根瘤的發(fā)育。

        3 根瘤自我調(diào)控途徑基因

        根瘤形成會耗費寄主能量,數(shù)目過多將對其生長造成不利的影響。因此,在長期進化中已經(jīng)發(fā)展出1套自主調(diào)控機制(Autoregulation of Nodulation,AON)。AON是在根瘤發(fā)育過程中通過合成一個衍生于根的信號“Q”來參與從根—莖的長距離信號傳遞。最近的研究表明,Q可能是一種屬于CLAVATA3/ Endosperm-surrounding region (CLE)家族多肽[16]。根瘤達到一定數(shù)量時,CLE基因表達,形成小多肽分子,自根向地上運輸,并作為富含亮氨酸受體激酶(LRR-RLK)的配體在莖部與LRR-RLK互作并使之激活。目前已知的LRR-RLK家族成員主要有GmNARK、LjHAR1和MtSUNN,與擬南芥CLV1有著極高的序列同源性。激活態(tài)的類受體蛋白激酶可能介導(dǎo)合成相應(yīng)的信號分子,這些信號分子通過韌皮部被運送至根部,調(diào)控根部結(jié)瘤的數(shù)量和發(fā)生位置。endprint

        Yan等(2013)發(fā)現(xiàn)過表達mi R172或預(yù)測的靶基因可以相應(yīng)地增加或減少結(jié)瘤的數(shù)目和固氮酶的活性,從而證明了 mi R172 在大豆根系結(jié)瘤及共生固氮過程中的重要生物學(xué)功能[17]。遺傳學(xué)實驗證明了mi R172c正向調(diào)控大豆結(jié)瘤的早期侵染、根瘤原基發(fā)生發(fā)育和最終的結(jié)瘤數(shù)目。Wang等(2014)發(fā)現(xiàn)mi R172c 主要是通過剪切其關(guān)鍵的靶基因GmNNC1發(fā)揮作用。GmNNC1編碼一個AP2 家族的轉(zhuǎn)錄抑制子,直接結(jié)合在1個重要的早期結(jié)瘤基因ENOD40的啟動子上,調(diào)控其轉(zhuǎn)錄活性,實現(xiàn)對結(jié)瘤數(shù)目的調(diào)控。實驗結(jié)果證明,miR172c 不僅是NF信號通路中的關(guān)鍵調(diào)控組分,其表達還受到一個AON信號通路的抑制。mi R172c有可能是整合NF和AON信號通路的關(guān)鍵節(jié)點。

        4 固氮相關(guān)的基因

        在固氮開始時和之后,表達的植物基因稱為晚期結(jié)瘤基因。如豆血紅蛋白(Lb)、谷氨酰胺合成酶(GS)等基因與固氮密切相關(guān)。研究最多的是豆血紅蛋白基因,為固氮過程中固氮酶兼氧所需?,F(xiàn)已鑒定出了4個Lb基因,基因結(jié)構(gòu)已解析,但調(diào)控機制未知。Lb基因及別的晚期結(jié)瘤基因,都只特異的在根瘤中轉(zhuǎn)錄,并且多數(shù)晚期結(jié)瘤基因似乎與豆血紅蛋白是協(xié)同表達的。GS催化氮素同化反應(yīng)的第一步,在氮素同化中起著極為關(guān)鍵的作用。根瘤固氮首先是在類菌體中將N2還原為NH4+,在GS的作用下,將植物吸收的無機態(tài)氨轉(zhuǎn)變成有機態(tài)的谷氨酸和谷氨酰胺,并在一系列酶的作用下形成酰脲向地上運輸,因此GS基因是根瘤固氮的關(guān)鍵酶基因之一。目前,僅有GS基因在不同施肥條件下的表達分析,未見其固氮效率調(diào)控機制的報道。

        除以上兩類基因外,共生血紅蛋白也與共生固氮有關(guān)。共生血紅蛋白是血紅蛋白的1種,在促進氧擴散的同時又能保持類菌體周圍的低氧環(huán)境,從而保護對氧敏感的固氮酶活性,缺少豆血紅蛋白的根瘤沒有固氮活性。

        目前,對宿主植物根瘤原基形成的遺傳分析(NF信號體系)、根瘤發(fā)育基因的克隆、AON途徑的解析及固氮相關(guān)基因的分離,為共生固氮分子遺傳機制的研究打開了一扇大門。但是,大部分基因在共生固氮過程中的具體作用并不完全清楚。而且,目前對參與共生固氮的調(diào)控基因仍然知之甚少。無疑包括共生早期信號分子的分離及其功能研究仍將繼續(xù)是共生領(lǐng)域的研究熱點,而隨后的共生過程如侵入線形成、根瘤菌的進入與釋放、根瘤的發(fā)育、共生固氮等現(xiàn)象的探明也非常令人期待,這將為最終建立1個完整明確的共生固氮的分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò)提供依據(jù)。

        參考文獻

        [1]丑敏霞,魏新元.豆科植物共生結(jié)瘤的分子基礎(chǔ)和調(diào)控研究進展[J].植物生態(tài)學(xué)報,2010,34(7):876–888.

        [2] Wang Y N,Wang L X,Zou Y M,et al.Soybean miR172c targets the repressive AP2 transcription factor NNC1 to activate ENOD40 expression and regulate nodule initiation[J].The Plant Cell,2014(26):4782–4801.

        [3] Ke D X,F(xiàn)ang Q,Chen C F,et al.The small GTPase ROP6 interacts with NFR5 and is involved in nodule formation in lotus japonicus[J].Plant Physiology,2012(159): 131-143.

        [4] Indrasumunar A,Kereszt A,Searle I,et al.Inactivation of duplicated nod factor receptor 5 (NFR5) genes in recessiveloss-of-function non-nodulation mutants of allotetraploid soybean (Glycine max L.Merr.) [J].Plant Cell Physiology,2010(2):201-214.

        [5] Indrasumunar A,Wilde J,Hayashi S,et al.Functional analysis of duplicated Symbiosis Receptor Kinase (Sym RK) genes during nodulation and mycorrhizal infection in soybean (Glycine max) [J].Plant Physiology,2015,176:157-168

        [6] Charpentier M,Vaz M T,Granqvist E,et al.The role of DMI1 in establishing Ca (2+) oscillations in legume symbioses[J].Plant Signal Behavior,2013(8):e22894.

        [7] Oldroyd G E,Murray J D,Poole P S,et al.The rules of engagement in the legume-rhizobial symbiosis[J].Annual Review of Genetics,2011(45):119-144.

        [8] Charpentier M,Bredemeier R,Wanner G,et al.Lotus japonicus CASTOR and POLLUX are ion channels essential for perinuclear calcium spiking in legume root endosymbiosis[J].Plant Cell,2008(20):3467-3479.endprint

        [9] Djordjevic M A,Mohd-Radzman N A,Nijat I.Small- peptidesignals that control root nodule number, development,and symbiosis[J].Journal of Experimental Botany,2015,66(17):5171–5181.

        [10] Tang F,Yang S M,Liu J G,et al.Rj4,a gene controlling nodulation specificity in soybeans,encodes a thaumatin-like protein but not the one previously reported[J].Plant Physiology,2016(170):26-32.

        [11] Yuan S L,Li R,Wang L,et al.Search for nodulation and nodule development-related cystatin genes in the genome of soybean(Glycine max)[J].Frontiers in plant science, 2016(7):1595.

        [12] Yuan S L,Li R,Chen H F,et al.RNA-Seq analysis of nodule development at five different developmental stages of soybean (Glycine max) inoculated with Bradyrhizobium japonicum strain 113-2[J].Scientific Reports,2017(7):42248.

        [13] Hakoyama T,Oi R,Hazuma K,et al.The SNARE protein SYP71 expressed in vascular tissues is involved in symbiotic nitrogen fixation in Lotus japonicus nodules[J].Plant Physiology,2012(160):897–905.

        [14] Takanashi K,Yokosho K,Saeki K,et al.LjMATE1:A citrate transporter responsible for iron supply to the nodule infection zone of Lotus japonicus[J].Plant Cell Physiology,2013(54):585–594.

        [15] Godiard L,Lepage A,Moreau S,et al.MtbHLH1,a bHLH transcription factor involved in medicago truncatula nodule vascular patterning and nodule to plant metabolic exchanges[J].New Physiology,2011(191):391–404.

        [16] Hastwell A H,Gresshoff P M,F(xiàn)erguson B J,et al.Genome-wide annotation and characterization of CLAVATA/ESR (CLE) peptide hormones of soybean (Glycine max) and common bean (Phaseolus vulgaris),and their orthologues of Arabidopsis thaliana[J].Journal of Experimental Botany,2015,66(17):5271–5287.

        [17] Yan Z,Hossain M S,Wang J,et al.MiR172 regulates soybean nodulation[J].Mol Plant Microbe Interact, 2013(26):1371-1377.

        作者簡介:侯云龍(1982-),男,吉林省公主嶺市,助理研究員,大專,主要從事大豆種質(zhì)資源鑒定與創(chuàng)新研究。endprint

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